电泳切胶的小窍门
一些注意事项1.电泳的buffer和gel都是新制的，切胶的台子清理干净，刀片最好洗净灭菌，总之一句话就是保证切下的带没有外源dna污染。2.切胶是要把整个目的片断所在位置的胶全部回收。为了减少胶的体积，可以用相对比较薄的胶来做，只要够点样即可，也可采用薄而宽的梳子来跑胶。3.关于防护，在一般有机玻璃后就足够了，戴上防护面具以保护眼睛，如果你戴树脂眼镜就可以了。要是非常害怕紫外照射，或者对于胶有特殊要求，例如要求不含EB，你可以采用点marker和带刻度的尺子一起照相的方法来确定目的条带在胶上的位置进行切胶。按照正常程序点marker跑胶，然后切下有marker的胶，EB染色，紫外灯下与带刻度的尺子一起照相。由于要回收的带与marker间的相对位置已知，根据尺子来衡量未染色胶上目的带的位置即可。如果觉得很难判断，可以直接在marker边点少量的样，这样位置就容易确定了。......阅读全文
实验室分析方法关于胶回收切胶的一点注意事项
1. 电泳的buffer和gel都是新制的，切胶的台子清理干净，刀片最好洗净灭菌，总之一句话就是保证切下的带没有外源dna污染。 2. 切胶是要把整个目的片断所在位置的胶全部回收。为了减少胶的体积，可以用相对比较薄的胶来做，只要够点样即可，也可采用薄而宽的梳子来跑胶。 3. 关于防护，在一般
水平电泳槽灌胶过程方法
水平电泳槽水平电泳槽由于一般使用琼脂糖凝胶，又称“琼脂糖”水平电泳槽；同时因凝胶需浸没在缓冲液内，也称“潜水式”或“浸没式”水平电泳槽。 水平凝胶在核酸分析方面有许多优势，是分子生物学研究的主要工具，可鉴定、分离、制备DNA，并可以测定DNA的分子量
DNA电泳（agarose胶）操作方法
一、 试剂与材料：1、 琼脂糖2、 电泳缓冲液（1×TAE）3、 10mg/ml溴化乙锭4、 上样缓冲液5、 电泳仪和水平电泳漕6、 透射紫外灯7、 胶带纸 二、 操作方法 按1～2%的琼脂糖浓度（据DNA样品分子量不同而定）配胶100ml ↓ 置于微波炉内加热搅拌，至琼脂糖完全溶解
酶切电泳条带拖尾的原因
建议你做如下改进：1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题；2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul （双酶切时另一种酶也加0.1ul ）,buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1
pcr产物酶切后电泳不出条带
如果是空的什么也没有，可以考虑：1、PCR产物有问题；2、电泳跑反了或者跑久了，DNA跑出了胶；3、制胶的问题，如忘加EB等，或加EB等时胶温度过高。其中PCR产物问题可以考虑原因：引物是否正确、程序设置的退火温度是否过高、样本提取等原因。
水平电泳槽的制胶步骤介绍
主要特征: ·模具一次成型，耐冲击、耐高温、耐腐蚀、不漏液。 ·缓冲容量充足，既可以起到良好的冷却效果，又可以使电泳过程中PH值保持稳定。 ·可拆卸电极架，使电极的维修及更换更加方便、快捷、安全。 ·有效防止槽内液体挥发或触电的透明上盖，开盖自动断电，确保操作安全。·配备制胶槽，省去胶带封胶的繁琐操
跑电泳时为什么总是漏胶？
1）每次电泳完后，洗净玻璃、胶条和其它附件，下次用之前，用75％酒精擦拭玻璃和胶条，能有效防漏，且利于剥胶。2）避免玻璃边缘（与胶条接触处）破损很重要，尤其是下面和胶条接触的地方3）关键是找一块很平的桌面，使两块玻璃底面非常齐就行了4）胶条一定要干，跑完电泳后，胶条就放在实验台上晾着。5）下面的胶条
关于DNA酶切及凝胶电泳的简介
限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类：Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰（甲基化）作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，而Ⅲ类酶在识别位点上切割DNA分子，然
电泳分离技术配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS-PAGE不连续电泳中,制胶缓冲液使用的是Tris-HCL缓冲系统,浓缩胶是pH6.7,分离胶pH8.9;而电泳缓冲液使用的Tris-甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中,其pH环境呈弱酸性,因此甘氨酸解离很少,其在电场的作用下,泳动效率低;而CL离子却很高,两者之间形成导电性较低的区带,蛋白分子就介
变性条件下的凝胶电泳实验——梯度胶凝胶电泳
实验方法原理在凝胶电泳中使用丙烯酰胺梯度胶比使用线性胶有两大优点。一是在高浓度丙烯酰胺条件下可以增加蛋白质的分子筛作用，从而使低分子量蛋白质形成淸晰的条带。另一是梯度胶可以在块胶内分离分子量范围更大的蛋白质（如 5％～20％ 的凝胶可以分离 15 kDa～200 kDa 的蛋白质；而 3％～30％
选购仪器小窍门
一、首先应需要考虑测试材料（待检测的样品）的力值 样品需要检测的力值范围不同，决定了试验机机结构的不一样，但我们在选择机型前应该要给自己所需要的仪器留一定的空间，不是刚好能做试验的就行，例如：检测某材料的zui大力是1200N，但我们在选择配置的时候就一定不能选刚好是1200N，我们
移液器操作小窍门
移液器的的操作是有一些窍门的，如何选择量程和控制吸液方面的操作是困扰操作新手的几个常见问题，下面是移液器重点注意事项： 安装移液器吸头： 在移液器的套柄zui下端进入吸头后，如果在吸头盒内操作，在轻轻向下压的同时左右晃动移液器或稍稍转动移液器(仅单道移液器可旋转)1-2秒即可;如果是用散装吸头，
DNA酶切及凝胶电泳（gel－electrophoresis）
材料、设备及试剂 一、 材料 λDNA: 购买或自行提取纯化; 重组T-vector质料或pUC19质粒; EcoRI酶及其酶切缓冲液: 购买成品; HindⅢ酶及其酶切缓冲液: 购买成品;琼脂糖(Agarose): 进口或国产的电泳用琼脂糖均可。 二、 设备 水平式电泳装置,电泳仪,台式高
质粒酶切前后电泳结果有什么不同
如果是单酶切，超螺旋质粒会变成开链DNA，开链的DNA在凝胶中泳动速度慢于超螺旋质粒，因此条带会偏大，这是酶切充分的情况。如果不充分，就会有大小有差距的几条带；如果是双酶切，而且片段大小适中，可以看见酶切的片段和载体，还有未切开的质粒。能不能区分超螺旋质粒和开链质粒，和所用琼脂糖凝胶的浓度，电泳时间
质粒酶切前后电泳结果有什么不同
如果是单酶切，超螺旋质粒会变成开链DNA，开链的DNA在凝胶中泳动速度慢于超螺旋质粒，因此条带会偏大，这是酶切充分的情况。如果不充分，就会有大小有差距的几条带；如果是双酶切，而且片段大小适中，可以看见酶切的片段和载体，还有未切开的质粒。能不能区分超螺旋质粒和开链质粒，和所用琼脂糖凝胶的浓度，电泳时间
电泳分离技术－浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡的影响
一般对电泳不会有太大的影响。浓缩胶与分离胶断裂，主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致;板间有气泡，是由于在解除制胶的夹子后,板未压紧而致空气进入引起的。
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCl缓冲系统，浓缩胶是pH=6.7，分离胶pH=8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而Cl-离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCL缓冲系统，浓缩胶是pH6.7，分离胶pH8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而CL离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分子就介
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCl缓冲系统，浓缩胶是pH=6.7，分离胶pH=8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而Cl-离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCl缓冲系统，浓缩胶是pH=6.7，分离胶pH=8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而Cl-离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分
浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡对电泳有影响吗？
这主要出现在初学者中，一般对电泳不会有太大的影响。前者主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致；后者是由于在解除制胶的夹子后，板未压紧而致空气进入引起的。
地磅维修的几个小窍门
电子地磅也被称为汽车衡，是大宗货物计量的主要称重设备。 地磅按秤体结构可分为：U型钢地磅、槽钢地磅、工字钢地磅、钢筋混凝土地磅；按传感器类型可分为数字式地磅、模拟式地磅。1、显示漂移现象：仪表显示不稳定，少则几十kg，多则成百上千kg不停地变动。原因：仪表模拟部分损坏，电源故障，传感器、接线盒、电缆
化学实验中的小窍门
实验室中常常会遇到一些意想不到的“小麻烦”，如瓶塞粘固打不开，仪器上的污垢难以除去，分液时发生乳化现象等等。如能采取适当方法或技巧加以处理，这些麻烦就会迎刃而解。 1．打开粘固的玻璃磨口 当玻璃仪器的磨口部位因粘固而打不开时，可采取以下几种方法进行处理。
SDSPAGE蛋白电泳配胶不凝固
我分析原因是过硫酸胺失效，过硫酸氨最好是先用现配，如果怕麻烦而且跑胶的频率很高的话，那么用完之后ap要放在4℃保存，一周之后必须新配。另外可以适当的增加temed的量，从5μl提高到8μl并无大碍。如你所说，是不是就是ap失效呢，还有，我强烈建议你复查一边浓缩胶，分离胶各各buffer的组分是否配制
蛋白电泳胶跑得不好怎么办
是不是发生在从压缩胶要进分离胶的时候？有没有发现“漏样”的现象？就是某一个或几个孔的样品在分离胶和压缩胶交界处漏了，可以看到横向的一条线不管是不是这种情况，我建议你把配胶的buffer换掉，如果还不行，上样缓冲液和lysis buffer都要换
westernbloting电泳胶可以4度过夜吗
跑westernblot时电泳时的条带呈斜行原因很多主要可能是电泳凝胶配制时未搅拌均匀，造成条带未能直线跑完电泳凝胶中混入气泡，造成条带被挤压倾斜也可能是样品缓冲液有干扰，造成条带迁移率不统一另外上样量过大，被其他泳道挤压也有可能
RNA琼脂糖变性胶电泳分析
一、原理RNA分子是以单链形式存在的，但在局部仍有双链结构形成。由于这种局部双链结构的干扰，使得在非变性凝胶上对RNA分子完整性的鉴定及其分子量大小的检测，变得不十分可靠。通过加入乙二醛一二甲基亚砜、氢氧化甲基汞、甲醛等变性剂进行变性处理，使其局部双链变为单链。再进行电泳，RNA的泳动距离与其片段大
1％琼脂凝胶电泳怎么制胶
操作步骤如下：1.制备1%琼脂糖凝胶(大胶用70ml,小胶用50ml):称取0.7 g(0.5 g)琼脂糖置于锥形瓶中,加入70 ml(50ml)1×TAE,瓶口倒扣小烧杯.微波炉加热煮沸3次至琼脂糖全部融化,摇匀,即成1.0%琼脂糖凝胶液.2.胶板制备:取电泳槽内的有机玻璃内槽(制胶槽)洗干净,晾
蛋白质SDSPAGE电泳分离胶和浓缩胶的浓度如何确定
1,看目的蛋白的大小一般actin以下的可以跑12胶红线左右可以用12或10跑几百的很大的用6的胶小蛋白12的10的一般都能跑如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看2，看样品浓度多少，以及你想用几次通常我们是定到4微每微，总量100微，用10次如果浓度小的话定到2用5次
DNA酶切及凝胶电泳之一：概述
一. DNA的限制性内切酶酶切分析限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，而Ⅲ类酶