酶切电泳条带拖尾的原因
建议你做如下改进：1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题；2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul （双酶切时另一种酶也加0.1ul ）,buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1%；电泳的缓冲液最好也是新鲜配制的,电泳电压适当.1KB的条带拖尾严重,可能是凝胶不新鲜,或者是电泳时电压过高,或者是酶切时间过长.上述建议中已经给出解决方法.至于你说的奇怪现象,可能质粒已经降解,也可能是酶切过久导致降解,也可能是枪头或者离心管等器材污染,总之保证一切是新鲜的,再做一次.......阅读全文
DNA酶切及凝胶电泳
第一节 概 述 一. DNA的限制性内切酶酶切分析 限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处
DNA酶切及凝胶电泳
实验概要本文介绍了DNA酶切及凝胶电泳的实验原理、仪器试剂和操作步骤等。实验原理DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电荷在电场中向正极移动。由于糖－磷酸骨架在结构上的重复性质，相同数量的双链DNA几乎具有等量的净电荷，因此他们能以相同的速度向正
质粒酶切电泳注意事项
仅条带看不清，连marker都看不清。牢记，否则你会认为自己的实验失败。我还认为是EB加少了。2 1％agrose 凝胶的配制， 50*TAE BUFFER.稀释成1×。0.3g 加30ml,微波炉中 40s, 不能太长，否则液体会蒸发， 量会减少。 等待融化的胶冷却之后，再加1ul 的EB.扑
DNA酶切及凝胶电泳
一. DNA的限制性内切酶酶切分析限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上,并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA,而Ⅲ类酶
pcr产物酶切后电泳不出条带
如果是空的什么也没有，可以考虑：1、PCR产物有问题；2、电泳跑反了或者跑久了，DNA跑出了胶；3、制胶的问题，如忘加EB等，或加EB等时胶温度过高。其中PCR产物问题可以考虑原因：引物是否正确、程序设置的退火温度是否过高、样本提取等原因。
DNA酶切及凝胶电泳（gel－electrophoresis）
材料、设备及试剂 一、 材料 λDNA: 购买或自行提取纯化; 重组T-vector质料或pUC19质粒; EcoRI酶及其酶切缓冲液: 购买成品; HindⅢ酶及其酶切缓冲液: 购买成品;琼脂糖(Agarose): 进口或国产的电泳用琼脂糖均可。 二、 设备 水平式电泳装置,电泳仪,台式高
酶切电泳条带拖尾的原因
建议你做如下改进：1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题；2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul （双酶切时另一种酶也加0.1ul ）,buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1
质粒酶切前后电泳结果有什么不同
如果是单酶切，超螺旋质粒会变成开链DNA，开链的DNA在凝胶中泳动速度慢于超螺旋质粒，因此条带会偏大，这是酶切充分的情况。如果不充分，就会有大小有差距的几条带；如果是双酶切，而且片段大小适中，可以看见酶切的片段和载体，还有未切开的质粒。能不能区分超螺旋质粒和开链质粒，和所用琼脂糖凝胶的浓度，电泳时间
质粒酶切前后电泳结果有什么不同
如果是单酶切，超螺旋质粒会变成开链DNA，开链的DNA在凝胶中泳动速度慢于超螺旋质粒，因此条带会偏大，这是酶切充分的情况。如果不充分，就会有大小有差距的几条带；如果是双酶切，而且片段大小适中，可以看见酶切的片段和载体，还有未切开的质粒。能不能区分超螺旋质粒和开链质粒，和所用琼脂糖凝胶的浓度，电泳时间
关于DNA酶切及凝胶电泳的简介
限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类：Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰（甲基化）作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，而Ⅲ类酶在识别位点上切割DNA分子，然
DNA酶切及凝胶电泳之一：概述
一. DNA的限制性内切酶酶切分析限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，而Ⅲ类酶
DNA酶切及凝胶电泳（gel－electrophoresis）2
三、试剂 1、5×TBE电泳缓冲液：配方见第一章。 2、6×电泳载样缓冲液：0.25% 溴粉蓝，40%(w/v) 蔗糖水溶液，贮存于 4℃。 3、溴化乙锭(EB)溶液母液:将EB配制成10mg/ml，用铝箔或黑纸包裹容器，储于 室温即可。 第三节 操作步骤 一、
DNA酶切及凝胶电泳（gel－electrophoresis）1
第一节 概 述 一. DNA的限制性内切酶酶切分析 限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上，并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰(甲基化)作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位
内切酶的特性、酶解与琼脂糖凝胶电泳
学习和掌握限制性内切酶的特性、酶解和琼脂糖凝胶电泳的操作方法，理解限制性内切酶是DNA重组技术的关键工具，琼脂糖凝胶电泳是分离鉴定DNA片段的有效方法。限制性核酸内切酶：是一类能识别双链DNA分子特异性核酸序列的DNA水解酶。是体外剪切基因片段的重要工具，所以常常与核酸聚合酶、连接酶以及末端修饰酶等
DNA酶切
一、 DNA酶切反应 1、 将清洁干燥并经灭菌的eppendorf管(最好0.5ml)编号,用微量移液枪分别加入DNA 1μg和相应的限制性内切酶反应10×缓冲液2μl,再加入重蒸水使总体积为19μl,将管内溶液混匀后加入1μl酶液,用手指轻弹管壁使溶液混匀,也可用微量离心机甩一下,使溶液集中在
DNA酶切
一、 DNA酶切反应 1、 将清洁干燥并经灭菌的eppendorf管(最好0.5ml)编号,用微量移液枪分别加入DNA 1μg和相应的限制性内切酶反应10×缓冲液2μl,再加入重蒸水使总体积为19μl,将管内溶液混匀后加入1μl酶液,用手指轻弹管壁使溶液混匀,也可用微量离心机甩一下,使溶
质粒DNA的限制性酶切及电泳分析
原理 限制性核酸内切酶能特异地识别和切割双链DNA中的碱基顺序，本实验中所用的pBS-SK质粒分子总长约2.9kb，经酶HindⅢ切割后，闭合环状质粒DNA即变成线性DNA分子。 不同大小、不同形状和不同构象的DNA分子在琼脂糖凝胶中有不同的电泳迁移率，因而可通过电泳使其分离。
植物基因组DNA提取、酶切及电泳分析
实验概要掌握植物基因组DNA提取的一般方法及注意事项。大分子量DNA分子的酶切分析。实验原理十六烷基三乙基溴化胺（CTAB）是一种去污剂，可溶解细胞膜，它能与核酸形成复合物，在高盐溶液中（0.7mol/L NaCl）是可溶的,当降低溶液盐浓度到一定程度(0.3 mol/L NaCl)时,从溶液中
关于DNA酶切及凝胶电泳的影响因素分析
1、 DNA的分子大小: 线状双链DNA分子在一定浓度琼脂糖凝胶中的迁移速率与DNA分子量对数成反比，分子越大则所受阻力越大，也越难于在凝胶孔隙中蠕行，因而迁移得越慢。 2、 琼脂糖浓度 一个给定大小的线状DNA分子,其迁移速度在不同浓度的琼脂糖凝胶中各不相同。DNA电泳迁移率的对数与凝胶
植物基因组DNA提取、酶切及电泳分析
一、目的 掌握植物基因组DNA提取的一般方法及注意事项。大分子量DNA分子的酶切分析。 二、原理 十六烷基三乙基溴化胺是一种去污剂，可溶解细胞膜，它能与核酸形成复合物，在高盐溶液中（0.7mol/L NaCl）是可溶的，当降低溶液盐浓度到一定程度(0.3 mol/L
比较酶切前后dna电泳现象的不同并讲述原因
酶切后DNA根据条带大小在电泳中迁移率不同，一般不同浓度琼脂糖、缓冲体系不同，都会影响迁移率，所以每块胶都需要参照marker，一般琼脂糖凝胶电泳后酶蛋白是可以除去的，直接切下想要的条带纯化回收即可。
台式高速离心机DNA酶切及凝胶电泳
一、DNA的限制性内切酶酶切分析 限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上,并切割双链DNA。它可分为三类:Ⅰ类和Ⅲ类酶在同一蛋白质分子中兼有切割和修饰（甲基化）作用且依赖于ATP的存在。Ⅰ类酶结合于识别位点并随机的切割识别位点不远处的DNA，
质粒的酶切后琼脂糖凝胶电泳检测
最好的酶切结果当然是只有两条条带，如果旁边再跑一个没有酶切的质粒和一个空载（同样的载体但是没有目的片段的质粒）作为对照那会很好说明问题：这两条条带应该是一条很明亮，位置较高（酶切下的线性载体），粗一些，理论上是下面那条比较细的条带（切下的目的片段）的6倍亮度——这个可以根据跑的Marker判断是否为
DNA的限制性酶切和琼脂糖电泳
实验原理1、DNA的限制性酶切限制性内切酶特异性地结合于一段被称为限制酶识别序列的特殊DNA序列之内或其附近的特异位点上，并在此处切割双链DNA。它可分为3类。I类和III类限制酶在同一蛋白质分子中兼有修饰（甲基化）作用和依赖ATP的限制（切割）活性（双功能酶），II类修饰-限制系统是由两种酶分子组
DNA的酶切与连接——质粒DNA酶切
DNA的连接和酶切可用于：（1）利用限制性核酸内切酶切割DNA和利用DNA连接酶连接DNA是DNA重组过程中的关键步骤之一；（2）成功的酶切和有效的连接为后续的外源基因进入宿主细胞进行表达提供了有效的实验材料。实验方法原理限制性内切酶能够特异性地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附
DNA酶切及凝胶电泳之二：材料、设备及试剂
一、材料λDNA: 购买或自行提取纯化; 重组pBS质料或pUC19质粒; EcoRI酶及其酶切缓冲液: 购买成品; HindⅢ酶及其酶切缓冲液: 购买成品;琼脂糖(Agarose): 进口或国产的电泳用琼脂糖均可。二、设备水平式电泳装置，电泳仪，台式高速离心机， 恒温水浴锅， 微量移液枪， 微波炉
DNA酶切及凝胶电泳的相关内容介绍
琼脂糖是从海藻中提取出来的一种多聚多糖，是由D-半乳糖和L-半乳糖以α-1,3和β-1,4糖苷键相连形成的线状高聚物。琼脂糖遇冷水膨胀，溶于热水成溶胶，冷却后成为孔径范围从50nm到大于200nm的凝胶。 琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶电泳是分离鉴定和纯化DNA片段的标准方法。该技术操作简便快速，可以
关于DNA酶切及凝胶电泳的注意事项介绍
1.酶切时所加的DNA溶液体积不能太大，否则DNA溶液中其他成分会干扰酶反应。 2、酶活力通常用酶单位（U）表示，酶单位的定义是：在最适反应条件下，1小时完全降解1mg lDNA的酶量为一个单位，但是许多实验制备的DNA不象lDNA那样易于降解，需适当增加酶的使用量。反应液中加入过量的酶是不合
质粒DNA的酶切和琼脂糖凝胶电泳鉴定
[实验原理]限制性内切酶识别短的DNA序列并在识别序列内或旁侧特异性切割双链DNA。对环状DNA有多少切口，就能产生多少个酶解片段，因此鉴定酶切后的片段在电泳凝胶中的区带数，就可以推断酶切口的数目，从片段的迁移率可以大致判断酶切片段大小的差别。DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时有电荷效应和分子筛效应。D
琼脂糖凝胶电泳的DNA为什么要酶切
我所知道的酶切的目的大致分为两大类：载体的检测和southern预备实验。你做的如果是常规的PCR检测，一般不需要酶切后再电泳，只是检测一下你的目的基因是否成功进入你的受体材料，酶切后反而看不出来了。酶切的依据是你自己的载体图中酶切位点的位置与类别，根据不同的酶切位点选择不同种类的酶。酶切位点一般设