非洲菊组织培养快繁技术
非洲菊为多年生草本植物，传统的繁殖方法为播种或分株繁殖。但非洲菊种子寿命短、发芽率低，而且播种繁殖变异率很高，难以得到性状一致的种苗，因而不能用于规模生产；而分株繁殖则存在繁殖慢，易退化和传播病害，也不适于现代的大规模生产，因而目前国外一般都采用组织培养的方法来生产种苗。非洲菊的组培研究在国内已有报道，但均局限于对个别或少数品种的不同外殖体、不定芽诱导率及生长方面的研究，即局限于实验室阶段的研究。在本项目中，为配合非洲菊种质资源库的建立及在生产中迅速推广非洲菊的优良品种，尽快提高我国非洲菊切花的品质，我们不仅对多达45个非洲菊品种进行了组培快繁，做了研究、比较。同时，也对组培快繁过程中某些因素对以后大田生产、切花品质及产量的影响进行了探索。现将结果报告如下：材料与方法1.材料：试验材料为本所从国内外收集的所有非洲菊品种共计45个，取花梗长为1-3cm的花蕾，切取花托部位作为外殖体。2.方法：将花梗在0.1％氯化汞溶液中消毒12分......阅读全文
非洲菊组织培养快繁技术
非洲菊为多年生草本植物，传统的繁殖方法为播种或分株繁殖。但非洲菊种子寿命短、发芽率低，而且播种繁殖变异率很高，难以得到性状一致的种苗，因而不能用于规模生产；而分株繁殖则存在繁殖慢，易退化和传播病害，也不适于现代的大规模生产，因而目前国外一般都采用组织培养的方法来生产种苗。非洲菊的组培研究在国内已有报
宿根福禄考组织培养及快繁技术
一、材料和方法1. 材料（1）材料取自当年带芽茎段为外植体，采自哈尔滨市农业科学院宿根花卉园。（2）培养基以MS 为基本培养基，附加不同的激素配比。启动、增殖培养基加蔗糖30 g/L ，生根培养基加蔗糖15 g/L 。各培养基均加琼脂6.0g / L , pH 5.8 -6.0 , 121℃ 条件下
宿根福禄考组织培养及快繁技术
一、材料和方法1. 材料（1）材料取自当年带芽茎段为外植体，采自哈尔滨市农业科学院宿根花卉园。（2）培养基以MS 为基本培养基，附加不同的激素配比。启动、增殖培养基加蔗糖30 g/L ，生根培养基加蔗糖15 g/L 。各培养基均加琼脂6.0g / L , pH 5.8 -6.0 , 121℃ 条件下
康乃馨的离体快繁
仪器 设备和 试剂 超净工作台、带有吸水纸的成套的培养皿，无菌水 培养基 N 6 +1 mg/L 6-BA 剪刀、枪型镊子 量筒、酒精灯、滤纸、蒸馏水、小刷子 95%乙醇、70%酒精、70%酒精棉球、0.2%升汞、甲醛、高锰酸钾、来苏尔
秋海棠组培快繁
一、植物竹节秋海棠（B.President－carnot）二、材料类别 叶片、叶柄、茎段三、培养条件以MS为基本培养基。诱导愈伤组织培养基：（1）MS＋BA3——5mg／L（单位下同）＋NAA0.1——0．5。丛生芽增殖培养基。（2）MS＋BA1．0＋NAA0.1。（3）MS十BA0.5十NAA0.
植物组织培养技术的应用
1、良种快繁 将植物组织培养技术用于新育成的、新引进的、一些短期内大量急需生产的良种快繁，可在最短时间内获得最多的植株，较普通营养生殖快成千上万倍，对新优良品种的推广应用尤为便利。 2、大批量营养繁殖 一些生产用苗量大的、需进行无性系繁殖的品种，尤其对一些繁殖系数低，特别是不能用种子进行繁殖
植物组织培养的培养方法
1、非试管微组织快繁非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。2、试管组织培养试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培瓶等器皿中在无菌
简介植物组织培养的培养方法
1、非试管微组织快繁 非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。 2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培
关于组织培养技术的培养方法介绍
1、非试管微组织快繁 非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。 2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培
植物组织的培养方法
1、非试管微组织快繁 非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。 2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培
花卉组织培养技术
实验概要掌握花卉组织培养的基本技术流程。实验原理花卉组织培养，就是分离花卉植物体的一部分，如茎类、茎段、叶、花、幼胚等，在无菌试管，并配合一定的营养、激素、温度、光照等条件，使其产生完整植株。由于其条件可以严格控制，生长迅速，1-2个月即为一个周期，因此在花卉植物的生产上有重要应用价值。快速大量繁殖
花卉组织培养技术
一、实验原理 花卉组织培养，就是分离花卉植物体的一部分，如茎类、茎段、叶、花、幼胚等，在无菌试管，并配合一定的营养、激素、温度、光照等条件，使其产生完整植株。由于其条件可以严格控制，生长迅速，1-2个月即为一个周期，因此在花卉植物的生产上有重要应用价值。快速大量繁殖方面：对一些难繁殖的名贵品种花卉
植物无糖组织培养技术2
3.植物无糖组培快繁技术的限制因素（1）需要相对复杂的微环境（容器内环境）控制的知识和技巧植物无糖组织培养微繁殖的研究和试验已经非常成功，但实际应用还是受到一定的限制，其中的一个主要原因就是需要应用微环境控制方面专业的技术。没有充分理解容器中小植株的生理特性，容器内的环境，容器外的环境，培养容器的物
植物无糖组织培养技术
植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁殖技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培养中改变碳源的种类，以CO2代替糖作为植物体的碳源，通过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境因子
产量高成熟快－“超级豆”有望消除非洲饥荒
乌干达政府正在向本国农户推广一种成熟快、产量高的“超级豆”，以解决易闹饥荒地区的粮食问题。 美联社３日报道，现年３５岁的理查德·奥皮奥先前种植普通豆子，收成往往只有２袋。他改种名为“ＮＡＢＥ１５”的“超级豆”，竟然收获了６袋。邻居得知奥皮奥“大丰收”后，也入手了“超级豆”种子。 奥皮奥种植的
植物无糖组织培养技术
植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁殖技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培养中改变碳源的种类，以CO2代替糖作为植物体的碳源，通过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境因子
植物组织培养技术简介
上世纪30年代white首次由番茄根建立了第一个活跃生长的无性繁殖系，验证了l902年Haberlandt提出的植物细胞全能性的理论。所谓植物细胞全能性就是每个植物细胞就像一粒种子，在适宜条件下具有发育成完整植株的潜力。20世纪50年代——诱导培养银胶菊愈伤组织得到天然橡胶从胡萝卜体 细胞培养
植物的组织培养技术
一． 实验目的： 1. 学习固体培养基的配制； 2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导方法。 二． 实验原理： 植物组织培养理论依据是植物细胞具有全能性。 植物组织培养是指用无菌培养的方法，在人工制备的培养基上培养植物体的一个离体器官、离体的一种组织，或单个细胞
组织培养的技术分类
按外植体分，植物组织培养可分以下几类：1、胚胎培养植物的胚胎培养，包括胚培养、胚乳培养、胚珠和子房培养，以及离体受精的胚胎培养技术等。2、器官和组织培养器官培养是指植物某一器官的全部或部分或器官原基的培养，包括茎段、茎尖、块茎、球茎、叶片、花序、花瓣、子房、花药、花托、果实、种子等。组织培养有广义和
木本观赏植物组织培养研究进展
对木本观赏植物组织培养的研究现状进行了概述，总结了外植体类型、基本培养基种类、不同植物生长调节物质、环境条件等因素对木本观赏植物组织培养的影响，并分析讨论了组织培养过程中常见污染、褐化和玻璃化问题及其解决方法。植物组织培养是指在无菌条件下，将离体的植物器官(根、茎、叶、花、果实、种子等)、组织(
植物组织培养技术的技术原理简介
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官（如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体，在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定
植物组织培养技术的分类
1、胚胎培养 指以从胚珠中分离出来的成熟或未成熟胚为外植体的离体无菌培养。 2、器官培养 指以植物的根、茎、叶、花、果等器官为外植体的离体无菌培养，如根的根尖和切段，茎的茎尖、茎节和切段，叶的叶原基、叶片、叶柄、叶鞘和子叶，花器的花瓣、雄蕊（花药、花丝）、胚珠、子房、果实等的离体无菌培养。
植物组织培养的技术原理
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官（如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体，在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定芽、
铮铮枸骨红果繁
严冬中的枸骨 张叔勇摄 ■张叔勇 院子的东侧，有一排枸骨；院子的西侧，也有一排枸骨。 因为上下班时顺路，所以我经常会从东侧的这排枸骨树下走过。一年四季，枸骨的枝叶总是那么稠密光亮，青翠欲滴，叶子也堪称奇特，长方形的叶片不仅翻转卷曲，而且叶子边缘有5个刺突，很好区分，所以路过的时候总会瞟上几眼，
植物无糖组织培养技术1
植物无糖组培快繁技术（Sugar-free micropropagation）又称为光自养微繁殖技术（Photoautotrophic micropropagation）是指在植物组织培养中改变碳源的种类，以CO2代替糖作为植物体的碳源，通过输入CO2气体作为碳源，并控制影响试管苗生长发育的环境
简介植物组织培养的技术原理
植物组织培养即植物无菌培养技术，又称离体培养，是根据植物细胞具有全能性的理论，利用植物体离体的器官(如根、茎、叶、茎尖、花、果实等）、组织（如形成层、表皮、皮层、髓部细胞、胚乳等）或细胞（如大孢子、小孢子、体细胞等）以及原生质体,在无菌和适宜的人工培养基及温度等人工条件下，能诱导出愈伤组织、不定
植物组织培养技术的相关介绍
植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论，近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养，指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞，原生质体等，通过无菌操作，在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其
简述植物组织培养技术的特点
1、培养条件可以人为控制 组培采用的植物材料完全是在人为提供的培养基和小气候环境条件下进行生长，摆脱了大自然中四季、昼夜的变化以及灾害性气候的不利影响，且条件均一，对植物生长极为有利，便于稳定地进行周年培养生产。 2、生长周期短，繁殖率高 组培是由于人为控制培养条件，根据不同植物不同部位的
植物组织培养中的无菌技术
一、目的要求 通过实验掌握植物组织培养中的无菌操作技术。学习培养基的配制及灭菌，掌握植物外植体表面消毒的常规方法。 二、基本原理近年来，植物组织培养作为一种研究技术已被广泛。植物组织培养是应用无菌操作方法培养植物器官或组织地任何一部分，甚至单个细胞的观察。植物组织培养中的无菌
植物组织培养技术的培养步骤介绍
第一步，将采来的植物材料除去不用的部分，将需要的部分仔细洗干净，如用适当的刷子等刷洗。把材料切割成适当大小，即灭菌容器能放入为宜。置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时，冲洗时间视材料清洁程度而宜。易漂浮或细小的材料，可装入纱布袋内冲洗。流水冲洗在污染严重时特别有用。洗时可加入洗衣粉清洗，然后再用