木本观赏植物组织培养研究进展

对木本观赏植物组织培养的研究现状进行了概述,总结了外植体类型、基本培养基种类、不同植物生长调节物质、环境条件等因素对木本观赏植物组织培养的影响,并分析讨论了组织培养过程中常见污染、褐化和玻璃化问题及其解决方法。植物组织培养是指在无菌条件下,将离体的植物器官(根、茎、叶、花、果实、种子等)、组织(形成层、花药组织、胚乳皮层等)、细胞(体细胞和生殖细胞)以及原生质体在人工配制的培养基上培养,并给予适当的培养条件,使其长成完整植株的过程。广义的组织培养包括器官培养、组织培养、胚胎培养、细胞培养、原生质体培养、花药培养等;狭义的组织培养是指植物离体组织再生快繁技术即微型繁殖(Micro-propagation)或试管繁殖技术。组培设备1 木本观赏植物组织培养研究概况植物组织培养的理论依据是植物细胞的全能性。1902年,德国植物学家Gottlieb Haberlandt提出了离体细胞培养的概念,并将分离的完全分化的细胞进行了组织培养试......阅读全文

木本观赏植物组织培养研究进展

  对木本观赏植物组织培养的研究现状进行了概述,总结了外植体类型、基本培养基种类、不同植物生长调节物质、环境条件等因素对木本观赏植物组织培养的影响,并分析讨论了组织培养过程中常见污染、褐化和玻璃化问题及其解决方法。植物组织培养是指在无菌条件下,将离体的植物器官(根、茎、叶、花、果实、种子等)、组织(

玫瑰组织培养研究进展

[摘 要]玫瑰组培苗已投入大规模生产中,已取得显著经济效益。本文对玫瑰的组织培养进行了较为全面的综述。目前,玫瑰采用根、茎、叶片、叶柄、茎尖、原生质体、合子胚、花药、花萼、花托、腋芽进行组织培养取得成功;主要采用MS培养基,添加低浓度的激素BAP03~05mg/L,NAA0004~03mg/L或NA

5种观赏植物可有效净化室内空气

    新华网华盛顿11月6日电 室内空气污染正成为影响人们健康的严重问题。美国佐治亚大学的研究人员发现,紫海棠等5种室内观赏植物可有效净化室内空气。    美国佐治亚大学园艺系的研究人员在新一期美国《园艺科学》杂志上发表论文说,他们通过对28种常见室内观赏植物研究后发现,紫海棠、洋常春藤、球兰、刺

(WPM)木本植物培养基成份表Duchefa-Biochemie

WPM培养基是1981年由Lloyd和 McCown为山月桂茎尖培养专业设计,根据MS培养基改良而来,相对MS培养基而言,使用了硫酸钾替换了硝酸钾,硝酸铵的含量也降低到了MS培养基的1/4,氮盐也主要以硝酸钙的形式供应。木本植物在维持生态平衡、荒漠土壤改造及城市居民区绿化等起着很重要的作用,随着植物

组织培养再生

步骤一:接种组织培养的接种是指将灭过菌的材料,在无菌的情况下,切成小块,放入培养基的过程。科研、生产部门的接种工作,多在无菌室或超净工作台上进行,中学可制作接种箱,在箱内进行接种。接种的方法步骤如下: ①在无菌室或接种箱中放好接种时所需要的酒精灯、贮存70%酒精和棉球的广口瓶、各种镊子、接种针、

葡萄组织培养

一、葡萄的形态特征和生物学特性葡萄(Vitis vinifera L.)属落叶木质藤本植物,葡萄地上部分的茎细长柔弱,髓部较大,组织较疏松。节上具有卷须,使新梢可以缠绕其它树木或支架上向上攀援。叶近圆形或卵形,35裂,基部心形。圆锥花序。葡萄是深根性作物,其根系在土壤中的分布状况,随气候、土壤型,地

植物无糖组织培养技术2

3.植物无糖组培快繁技术的限制因素(1)需要相对复杂的微环境(容器内环境)控制的知识和技巧植物无糖组织培养微繁殖的研究和试验已经非常成功,但实际应用还是受到一定的限制,其中的一个主要原因就是需要应用微环境控制方面专业的技术。没有充分理解容器中小植株的生理特性,容器内的环境,容器外的环境,培养容器的物

植物无糖组织培养技术

植物无糖组培快繁技术(Sugar-free micropropagation)又称为光自养微繁殖技术(Photoautotrophic micropropagation)是指在植物组织培养中改变碳源的种类,以CO2代替糖作为植物体的碳源,通过输入CO2气体作为碳源,并控制影响试管苗生长发育的环境因子

木本植物蛋白质提取实验

实验材料 树皮试剂、试剂盒 沉淀缓冲液漂洗缓冲液溶解缓冲液仪器、耗材 离心管实验步骤 3.1 提取总蛋白质 (见注释 5)( 1 ) 将去塞的 10 ml 空离心管称重。我们选用韧性好的聚碳酸酯旋盖圆底高速离心管。( 2 ) 细胞碎裂:500 mg 新鲜组织(保存在 -80°C ) 在液氮中用研钵和

木本植物蛋白质提取实验

实验材料树皮试剂、试剂盒沉淀缓冲液漂洗缓冲液溶解缓冲液仪器、耗材离心管实验步骤3.1 提取总蛋白质 (见注释 5)( 1 ) 将去塞的 10 ml 空离心管称重。我们选用韧性好的聚碳酸酯旋盖圆底高速离心管。( 2 ) 细胞碎裂:500 mg 新鲜组织(保存在 -80°C ) 在液氮中用研钵和杵捣成粉

木本植物蛋白质提取实验

实验材料树皮                                                          试剂、试剂盒沉淀缓冲液                                                                  漂洗缓冲液    

新的SNP芯片助力水牛、小麦和观赏植物的研究

  在每年的圣地亚哥PAG(Plant and Animal Genome)会议上,新的SNP基因分型芯片都会被推出。今年也不例外。水牛、小麦、观赏植物及其他物种的一系列SNP芯片被介绍给了农业研究人员。  众多的学术会议和海报强调了SNP基因分型芯片的使用,而多家公司的研讨会也以它们为中心,因此A

新型高效方法应对植物组培过程中的污染问题

植物组织培养是20世纪初发展起来的一门新兴技术,随着这项技术的日益完善,其应用也越来越广泛。但是在组织培养过程中,常常会遇到污染问题使实验无法进行下去,甚至导致整个实验失败,给科研和工厂化生产带来损失。污染是指在植物组织培养过程中,培养基和培养材料滋生杂菌,最终导致培养失败的现象。常见的污染类型包括

植物无糖组织培养技术

植物无糖组培快繁技术(Sugar-free micropropagation)又称为光自养微繁殖技术(Photoautotrophic micropropagation)是指在植物组织培养中改变碳源的种类,以CO2代替糖作为植物体的碳源,通过输入CO2气体作为碳源,并控制影响试管苗生长发育的环境因子

植物组织培养过程

一、培养材料的采集组织培养所用的材料非常广泛,可采取根、茎、叶、花、芽和种子的子叶,有时也利用花粉粒和花药,其中根尖不易灭菌,一般很少采用。对于木本花卉来说,阔叶树可在一、二年生的枝条上采集,针叶树种多采种子内的子叶或胚轴,草本植物多采集茎尖。在快速繁殖中,最常用的培养材料是茎尖,通常切块在0.5厘

花卉组织培养技术

实验概要掌握花卉组织培养的基本技术流程。实验原理花卉组织培养,就是分离花卉植物体的一部分,如茎类、茎段、叶、花、幼胚等,在无菌试管,并配合一定的营养、激素、温度、光照等条件,使其产生完整植株。由于其条件可以严格控制,生长迅速,1-2个月即为一个周期,因此在花卉植物的生产上有重要应用价值。快速大量繁殖

兰花的组织培养

法国人莫瑞尔(G.M. Morel)首先将组织培养的技术应用在兰花上,采取茎顶组织进行培养,经由类原球体而获得植株。利用组织培养进行芽体增殖是另一个获取种苗的方法,例如,蝴蝶兰便利用花梗芽进行繁殖,这种方法的缺点是繁殖的效率较差,而且成本较高。由于芽体是经由多细胞发育而成,并不适合做为基因转殖的材料

花卉组织培养技术

一、实验原理 花卉组织培养,就是分离花卉植物体的一部分,如茎类、茎段、叶、花、幼胚等,在无菌试管,并配合一定的营养、激素、温度、光照等条件,使其产生完整植株。由于其条件可以严格控制,生长迅速,1-2个月即为一个周期,因此在花卉植物的生产上有重要应用价值。快速大量繁殖方面:对一些难繁殖的名贵品种花卉

植物组织培养简介

  植物的组织培养是根据植物细胞具有全能性这个理论,近几十年来发展起来的一项无性繁殖的新技术。植物的组织培养广义又叫离体培养,指从植物体分离出符合需要的组织、器官或细胞,原生质体等,通过无菌操作,在无菌条件下接种在含有各种营养物质及植物激素的培养基上进行培养以获得再生的完整植株或生产具有经济价值的其

马铃薯的组织培养

1、繁殖瓶苗 将待繁脱毒苗在无菌条件下每叶节切一段,接种在仅含大量元素、微量元素和铁盐的无激素MS固体或液体(可用纸桥)培养基的组培瓶中,置培养室内培养。培养条件为:光照1000-3000lx,光周期13-16h/d,培养温度(25±2)℃,空气相对湿度50%-60%,自然通风。叶节段接种30-50

常规组织培养法

一、初代消化培养法1、 准备:取各种已消毒的培养用品置于净化台面,紫外线消毒20分钟。开始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。2、 布局:点燃酒精灯,安装吸管帽。3、 处理组织:把组织块置于烧杯中,用Hanks液漂洗2~3次,去除血污;如怀疑组织可能污染,可先置于含有青链霉素的混合液中30~60分

木本油脂“炼金术”扶持造就化工大产业

  “‘双碳目标’为化工企业产业迭代提供了难得机遇期,我们必须要紧紧抓住!”临近岁末,南京林业大学化学工程学院教授朱新宝,除了指导学生课程设计正常推进,还在各地来回奔波为化工企业新一年的产业规划献计献策。   这位年过五旬的教授带领团队扎根林产化工领域三十余年,力推上百个科研新品工业化生产,其研究

组织培养技术在植物脱毒和快速繁殖上的应用

植物脱毒和离体快速繁殖是目前植物组织培养应用最多、最有效的一个方面。很多农用物都带有病毒,特别是无性繁殖植物,如马铃薯、甘薯、草莓、大蒜等。但是,感病植株并非每个部位都带有病毒,White早在1943 年就发现植物生长点附近的病毒浓度很低甚至无病毒。如果利用组织培养方法,取一定大小的茎尖进行培养,再

中国林科院汪阳东研究员到合肥研究院交流访问

  9月30日,应吴丽芳研究员邀请,中国林科院亚热带林业研究所汪阳东研究员到中国科学院合肥物质科学研究院技术生物与农业工程研究所访问交流,并做了题为“工业油料树种油桐和山苍子育种及其分子基础研究”的学术报告。  汪阳东首先对油料树种的整体概况做了介绍,并从油料树种的主要类型、资源分布、开发利用现状、

合肥研究院揭示木本植物抗逆性作用机制

  近期,中国科学院合肥物质科学研究院技术生物与农业工程研究所研究员吴丽芳课题组研究发现一种植物源新型小分子化合物卡里金(Karrikins),能够显著提高木本植物乌桕对干旱和盐碱的抗性,为开发新型作物生长调节剂提供了新思路。相关研究成果发表于植物学期刊Frontiers in Plant Scie

植物组织培养应用介绍

植物组织培养指的是在特定条件下用人工手段是植物细胞分裂增殖的生物学技术。

植物组织培养技术简介

上世纪30年代white首次由番茄根建立了第一个活跃生长的无性繁殖系,验证了l902年Haberlandt提出的植物细胞全能性的理论。所谓植物细胞全能性就是每个植物细胞就像一粒种子,在适宜条件下具有发育成完整植株的潜力。20世纪50年代——诱导培养银胶菊愈伤组织得到天然橡胶从胡萝卜体 细胞培养

植物的组织培养技术

一. 实验目的: 1. 学习固体培养基的配制; 2. 掌握胡萝卜愈伤组织的诱导方法。 二. 实验原理: 植物组织培养理论依据是植物细胞具有全能性。 植物组织培养是指用无菌培养的方法,在人工制备的培养基上培养植物体的一个离体器官、离体的一种组织,或单个细胞

白鹤芋的组织培养

1、取材与处理取白鹤芋小苗,流水冲洗后,剥掉中下部叶片,剪除根系。在超净工作台上用75%乙醇浸泡30-60秒,再用0.1%升汞溶液消毒3-8分,无菌水冲洗3次,剥取茎尖0.5-1.0CM长,作为外植体,接种在诱芽培养基上(MS+6BA 2-3mg/L+NAA 0.1-0.5mg/L)。接种后置培养室

植物组织培养的流程

植物组织培养的流程:第一步,将采来的植物材料除去不用的部分,将需要的部分仔细洗干净,如用适当的刷子等刷洗。把材料切割成适当大小,即灭菌容器能放入为宜。置自来水龙头下流水冲洗几分钟至数小时,冲洗时间视材料清洁程度而宜。易漂浮或细小的材料,可装入纱布袋内冲洗。流水冲洗在污染严重时特别有用。洗时可加入洗衣