BioTNTmRNA引物筛选，引物定制或specificprimers的使用说明1
BioTNT mRNA 引物筛选，引物定制或specific primers的使用说明版本号：20100001BioTNT qPCR Primer Assay for specific mRNA genes目录号：SER-PCR –编号（500T）;说明书 Part A 一、产品简介：本试剂盒是基于最可靠的SYBR® Green-based定量real-time PCR试剂盒并应用基因表达分析。我们的实验为基因特异性定量PCR验证具有统一、高效和标准化特点的扩增反应条件。每一对引物都是经过严格的实验验证的。已经使用适当的real time PCR Mix的时候，合适的片段大小和高的扩增效率成为保证。qRT-PCR Primer pair kits统一的扩增效率和条件为荧光定量pcr实验中多基因表达的检测提供了准确而灵活的解决方案。完整的试剂盒说明书由part A 和Part B构成。Part A 主要描述了本......阅读全文
BioTNT－mRNA－引物筛选，引物定制或specific－primers的使用说明1
BioTNT mRNA 引物筛选，引物定制或specific primers的使用说明版本号：20100001BioTNT qPCR Primer Assay for specific mRNA genes目录号：SER-PCR –编号（500T）;说明书 Part A 一、产品简介：本试剂盒是基于
BioTNT－mRNA－引物筛选，引物定制或specific－primers的使用说明2
1、 低速离心数秒，并且按照荧光PCR仪的使用说明放置好您的PCR管/条/板；2、 从下列表中选择最合适的实验反应条件，按照荧光PCR仪的使用说明设置好PCR反应条件： 荧光PCR仪 循 环 时 间
引物（primers)设计知识介绍
引物（primers)引物是人工合成的两段寡核苷酸序列，一个引物与感兴趣区域一端的一条DNA模板链互补，另一个引物与感兴趣区域另一端的另一条DNA模板链互补。引物的重要性在整个PCR体系中, 引物占有十分重要的地位。PCR的特异性要求引物与靶DNA特异结合，不与其他非目的DNA结合，PCR的灵敏性要
引物合成介绍（1）
1.引物是如何合成的？目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种, 主要都是由ABI/PE 公司生产，无论采用什么机器合成，合成的原理都相同，主要差别在于合成产率的高低，试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。申能博彩公司采用的合成仪主要机型为ABI3900高通量合成仪，合成长链主要
如何利用LAMP引物设计平台设计IMSA引物？1
IMSA，全称为isothermal multiple-self-matching-initiated amplification，中文名为等温多自配引发扩增。该技术的详细介绍可见本公众号历史文章：“分子诊断万花筒” 开篇——等温多自配引发扩增技术简介。在这里隆地熊为大家介绍一种如何利用LAMP引物
引物溶解引物保存
1. 如何测定引物的OD值？ 用紫外分光光度计在260nm波长测定溶液的吸光度来定量，请注意紫外分光光度计的使用，测定时溶液的吸光度最好稀释到0.2~0.8之间（吸光度太高或太低会有较大的误差）。DNA干粉用一定体积的水充分振荡溶解以后，取部分溶液稀释到1 ml 并在1 ml 标准比色皿中测定其
引物溶解引物保存
1. 如何测定引物的OD值？用紫外分光光度计在260nm波长测定溶液的吸光度来定量，请注意紫外分光光度计的使用，测定时溶液的吸光度最好稀释到0.2~0.8之间（吸光度太高或太低会有较大的误差）。DNA干粉用一定体积的水充分振荡溶解以后，取部分溶液稀释到1 ml 并在1 ml 标准比色皿中测定其吸光度
Real－time－PCR－mRNA－定量实验路线选择FQ
问题一：Real time PCR mRNA的相对定量和绝对定量的选择；测定mRNA, 一般采用相对定量，因为绝对定量，标准品的制备和定量是有难度的，具体可以参考这篇文献：http://www.biotnt.com/news/news_105.htm；“Analysis of Relative Ge
引物设计的引物设计原则
1、引物长度一般为15-30bp，常用的为18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般为40%-60%，以45-55%为宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所对应的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之间，Tm值曲线以选取72度附近为佳，5'到 3
引物设计的引物设计原则
1、引物长度一般为15-30bp，常用的为18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般为40%-60%，以45-55%为宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所对应的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之间，Tm值曲线以选取72度附近为佳，5'到 3
引物设计的引物设计原则
1、长度：15—30bp，其有效长度[Ln=2(G十C)十(A十T)]一般不大于38，否则PCR的最适延伸温度会超过Taq酶的最佳作用温度(74度)，从而降低产物的特异性。2、G十C含量：应在40%一60%之间，PCR扩增中的复性温度一般较Tm值低等于引物的Tm值减去5—10度。引物长度小于20时，
引物设计的引物设计原则
1、引物长度一般为15-30bp，常用的为18-27bp，但不能大于38bp；2、引物GC含量一般为40%-60%，以45-55%为宜，上下游引物GC含量和Tm值要保持接近；3、引物所对应的模板序列的Tm值最好在72℃左右，至少要在55-80℃之间，Tm值曲线以选取72度附近为佳，5'到 3
甲基化msap方法的引物需要筛选吗
甲基化msap方法的引物需要筛选DNA甲基化是一种表观遗传修饰,它是由DNA甲基转移酶（DNA methyl-transferase,Dnmt）催化S-腺苷甲硫氨酸作为甲基供体,将胞嘧啶转变为5-甲基胞嘧啶（mC）的一种反应,在真核生物DNA中,5-甲基胞嘧啶是唯一存在的化学性修饰碱基.CG二核苷酸
设计引物遵循原则、引物保存和各种PCR的引物设计
一 设计引物应遵循以下原则1 、引物长度： 15-30bp，常用为20bp左右。2 、引物扩增跨度： 以200-500bp为宜，特定条件下可扩增长至10kb的片段。3 、引物碱基：G+C含量以40-60%为宜，G+C太少扩增效果不佳，G+C过多易出现非特异条带。ATGC最好随机分布，避免5个以上
巢式PCR(Nested－PCR)定义、原理和步骤
巢式PCR的定义巢式PCR是一种变异的聚合酶链反应(PCR)，使用两对（而非一对）PCR引物扩增完整的片段。第一对PCR引物扩增片段和普通 PCR相似。第二对引物称为巢式引物（因为他们在第一次PCR扩增片段的内部）结合在第一次PCR产物内部，使得第二次PCR扩增片断短于第一次扩增。巢 式PCR的好处
PCR－Array－常见问题解答
PCR Array FAQ:任何一台能够做QPCR的仪器据能够做PCRarray吗？QPCR 仪器都可以进行QPCR array的实验。根据仪器采用的96孔或者384孔板，分为以下5种板型（plate format）：plate formatInstrument providerQPCR instr
什么是上游引物和下游引物
虽然这个问题很简单，但我怎么发觉挺难回答的......上游引物就是和要扩增基因片断上游序列结合的引物（引物就是单链寡聚核苷酸，基因扩增需要从引物开始），同理，下游引物指与目的基因片断下游序列结合者。具体示意如下：（上下两条长线代表DNA模板）5'-----------------------
快速了解反转录引物随机引物
随机引物是指当特定mRNA由于含有使逆转录酶终止的序列而难于拷贝其全长序列时，可采用随机六聚体这一非特异的引物来拷贝全长mRNA。 1.特异性引物一般在增低丰度目的基因才选择使用，用得比较少。一般都推荐用Oligo(dT)或随机引物代替基因特异性引物。由于rna的二级结构破坏不完全，导致特异性
PCR引物
PCR Primer Design and Reaction Optimization (Molecular Biology Techniques Manual) PCR Primer Design (Newman Lab) PCR Primer Design (Eppendorf)Detail
PCR引物
PCR Primer Design and Reaction Optimization (Molecular Biology Techniques Manual) PCR Primer Design (Newman Lab) PCR Primer Design (Eppendorf)Detail
通用引物和特异性引物的区别
通用引物，含义为克隆位点两旁的序列匹配，目的是引扩出DNA片段，主要用来测序。而序列特异性引物指一种测定基因突变的方法。通用引物是一般和载体多克隆位点两旁的序列匹配，或者是与载体里面的一些启动、终止元件匹配。这样不管载体插入什么DNA片段，都可以用通用引物扩出来。通用引物可以用来测序，但是只是“通用
PCR的引物
特异性的引物决定了所扩增的DNA片段，引物（primer）本质上是人工合成的小片段寡聚核苷酸片段，一般不超过50个碱基（通常18－25个），它们与所要扩增的DNA片段的正链与负链的末端完全互补。在“退火”时引物结合于DNA模板的起始和终止点，DNA聚合酶结合到这两个位置，开始合成新的DNA链。
设计引物时需要避免引物之间形成什么而造成引物自连。
设计引物时需要避免引物之间形成_碱基互补配对。而造成引物自连。相同末端或相同黏性末端或相同平末端。末端特指双链DNA分子的端位碱基，是专用名词，不可以用在单链引物上。且引物之间的碱基互补配对不一定是所有碱基都能够互补配对，少量配对也会使两种引物结合在一起，从而不能获得特异性DNA产物。
用随机寡核苷酸引物从mRNA合成cDNA探针
本方案以 poly(A) + RNA 作为模板，通过随机引物反应合成 cDNA 探针，这类探针可用于 cDNA 文库的差异筛选。本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等译。实验方法原理本方案以 poly(A) + RNA 作为模板，通过随机引物反应合成 cDNA 探针，这类探针可用于 cDNA
用随机寡核苷酸引物从mRNA合成cDNA探针
实验方法原理 本方案以 poly(A) + RNA 作为模板，通过随机引物反应合成 cDNA 探针，这类探针可用于 cDNA 文库的差异筛选。实验材料 反转录酶反转录酶缓冲液随机脱氧核苷酸引物模板 mRNA试剂、试剂盒 乙酸铵DTTEDTA乙醇HClNaOH酚氯仿胰 RNA 酶抑制剂SDS Tris
用随机寡核苷酸引物从mRNA合成cDNA探针
实验方法原理 本方案以 poly(A) + RNA 作为模板，通过随机引物反应合成 cDNA 探针，这类探针可用于 cDNA 文库的差异筛选。 实验材料
qpcr设计引物以mrna为模板还是以cdna为模板
当然是cDNA了，mRNA还没有被剪切就有可能有内含子，如果你的基因没有内含子的话，DNA，cDNAmRNA都是无所谓的
引物篇：普通PCR－和－QPCR－引物异同点
Q问题： 普通PCR 和 QPCR 引物 是否一样？ A 回答： 二者的设计原则有相同也有不同；相同处：• 序列的查找是一致的；• 序列选取应在基因的保守区段；• 选取合适的扩增片段大小• 避免引物自身或与引物之间形成4个或4个
PCR引物和测序引物有什么区别
一、定义不同：PCR是体外酶促合成特异DNA片段的一种方法，由高温变性、低温退火（复性）及适温延伸等反应组成一个周期，循环进行，使目的DNA得以迅速扩增,具有特异性强、灵敏度高、操作简便、省时等特点。测序引物分自带引物和通用引物，自带引物为客户自行设计的PCR扩增引物或者载体及目的片段上设计的引物进
引物篇：普通PCR－和－QPCR－引物异同点
Q问题： 普通PCR 和 QPCR 引物 是否一样？ A 回答： 二者的设计原则有相同也有不同； 相同处： • 序列的查找是一致的； • 序列选取应在基因的保守区段； • 选取合适的扩增片段大小 •