实验动物的处死及后续处理
实验方法原理 实验材料 实验动物试剂、试剂盒 消毒剂 (2. 5% 碘酒和 75% 酒精）仪器、耗材 注射器实验步骤 实验动物的处死：1. 颈椎脱位法。右手抓住大、小鼠尾根部，左手拇指和食指用力按住鼠头，有手用力向后拉，使其颈椎脱臼死亡。2. 心脏取血法。注射器一次采取大量心腔血液，使动物死亡。3. 动静脉大量放血法。固定动物，分离动物动静脉，收集动物血液，使动物急速失血而死亡。4. 吸入法。使动物吸入过量的麻醉剂和二氧化碳致死。5. 麻醉法。经腹腔或静脉给予 2~3 倍的麻醉剂量将动物处死。感染动物及有关材料的处理：为防止病毒传播，对感染动物尸体及有关传染性组织要适当处理。小动物可放在有盖的容器内，高压消毒后掩埋或焚烧；较大动物用纸袋装好，送焚毁炉焚烧。......阅读全文
实验动物的处死及后续处理
实验方法原理 实验材料 实验动物试剂、试剂盒 消毒剂 (2. 5% 碘酒和 75% 酒精）仪器、耗材 注射器实验步骤 实验动物的处死：1. 颈椎脱位法。右手抓住大、小鼠尾根部，左手拇指和食指用力按住鼠头，有手用力向后拉，使其颈椎脱臼死亡。2. 心脏取血法。注射器一次采取大量心腔血液，使动物死亡。3.
实验动物的处死及后续处理
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒剂 (2. 5% 碘酒和 75% 酒精）仪器、耗材注射器实验步骤实验动物的处死：1. 颈椎脱位法。右手抓住大、小鼠尾根部，左手拇指和食指用力按住鼠头，有手用力向后拉，使其颈椎脱臼死亡。2. 心脏取血法。注射器一次采取大量心腔血液，使动物死亡。3. 动静脉大量放血法。固
实验动物的处死及尸体处理实验
实验步骤一、实验动物的处死方法 1.较大动物的处死方法以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。 （1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状
实验动物的处死及尸体处理实验
一、实验动物的处死方法 1.较大动物的处死方法以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。 （1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造
实验动物的处死以及尸体的处理
一、实验动物的处死方法1. 较大动物的处死方法 以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。（1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造
实验动物处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
实验动物的处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
实验动物的处死方法
实验概要本文介绍了大鼠和小鼠及家兔和狗的几种处死方法，大鼠和小鼠的处死方法主要有：脊椎脱臼法，断头法，击打法，急性失血法和化学致死法。家兔和狗的处死方法主要有：空气栓塞法，急性失血法等。实验步骤1. 大鼠和小鼠的处死方法： 1) 脊椎脱臼法：右手抓住鼠尾用力向后拉，同时左手拇指与食指用力向下按
实验动物的麻醉和处死
5.1各种动物的麻醉方式
实验动物的麻醉和处死
实验动物的注射给药法包括（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）静脉注射（4）动脉注射（5）腹腔注射等。实验动物的注射给药法是指由注射器将无菌药液或生物制剂注入组织、血管或体腔中，达到预防、治疗、协助检查、维持正常生理功能以及减轻痛苦不适的目的。实验方法原理实验动物的麻醉：常用的全身麻醉药从物理性质上可分
广东规定处死实验动物时应实施安乐死
记者9月7日从广东省科技厅召开的新闻发布会上了解到，10月1日起，广东处死实验动物时，应实施安乐死。 据广东省科技厅廖兆龙副巡视员透露，《广东省实验动物管理条例》（下简称《条例》）已经获得广东省人大常委会通过，并将从10月1日起正式实施。 据介绍，实验动物是指经人工饲养培育，遗传背
实验动物血液标本的选择及处理
实验动物血液标本的处理-----系列一血液标本的选择一般血液标本分为全血、血浆和血清。1、全血全血一般加入适当的抗凝剂，使血液不产生凝固含有形成分的标本，常用于碳氧血红蛋白、高铁血红蛋白、硫血红蛋白、细胞培养等的测定，及制备血中各种细胞和全血分析用。2、血浆血浆是全血去除细胞成分后剩余部分的标本，比
实验动物麻醉期的呼吸障碍及处理
实验动物麻醉期的呼吸障碍及处理围麻醉期动物的呼吸障碍主要见于上下呼吸道，按梗阻部位可分为上呼吸道梗阻(即舌下坠分泌物过多，喉痉挛等)及下呼吸道梗阻(即窒息， 支气管痉挛等)，亦有部分动物可发生呼吸暂停。以下为几种常见的呼吸障碍及处理方法: 一、舌下坠 舌下坠是上呼吸道梗阻最常见的原因，动物仰卧位意识
实验室动物实验时出现的事故处理办法
1.动物过敏接触动物过敏是从事实验动物工作人员的严重职业病,常见的表现为鼻炎、眼睛发痒、出现红疹等过敏性反应症状。预防处理措施:保持动物笼舍及实验工作区的清洁卫生;配备个人防护设备,如隔离服、手套、口罩等,尽量减少与动物直接接触的机会,避免接触裸露皮肤;使用层流柜或生物安全柜;动物室内保持良好的通风
实验动物的外科技术及急救实验
实验步骤一、实验动物常用的外科基本技术 （一）基本操作技术 1. 切开 根据实验要求确定手术切口的部位及大小。切开时先绷紧皮肤，将刀刃与皮肤垂直，用力要得当，一次切开皮肤全层，切缝整齐而不偏斜。切开皮肤及皮下组织时，一般要求按解剖层次逐层切开，注意止血，避免损伤深层的重要组织器官（图1
实验室仪器设备的采购及后续验收和管理方案
实验室仪器设备是开展教学和科研工作的基础和保障,是培养实验人员实验能力、开发创新能力和开展科学研究的物质基础。仪器设备的管理是实验室管理的重要组成部分。随着科学技术的发展和高等教育办学规模的扩大,如何加强仪器设备的科学管理,对充分发挥仪器设备在教学与科研中的作用,提高仪器设备的使用效益具有重要意义。
细胞坏死的结果及后续表现
溶解吸收较小的坏死灶可由来自坏死组织本身和中性粒细胞释放的蛋白水解酶将坏死物质进一步分解液化，然后由淋巴管或血管吸收，不能吸收的碎片则由巨噬细胞加以吞噬消化，留下的组织缺损，则由细胞再生或肉芽组织予以修复。分离排出较大坏死灶不易完全吸收，其周围发生炎症反应，白细胞释放蛋白水解酶，加速坏死边缘坏死组织
实验动物的外科技术及急救实验（二）
3. 组织分离法 分离组织的目的在于充分显露深部组织，造成手术径路，便于切除病灶。操作时要注意以下原则：①在同一平面上力求一次垂直切开，以保切口边缘整齐，禁止斜切和锯切，以减少损伤，便于愈合。②在切开多层组织时，一般应按组织层次分层切开，切口大小应适当。③切开肌肉时，一般应沿肌纤维方向进行。④要确保
实验动物的外科技术及急救实验（四）
4.股部手术 （1）股动、静脉和股神经分离术：股三角内的血管、神经包括股动脉、股静脉和股神经，处于一层深筋膜之下。分离时，可用蚊式止血钳在耻骨肌与缝匠肌交点处小心地沿缝匠肌后部内侧缘分离，并将缝匠肌后部轻轻向外拉开，其下方即见深筋膜包围着的血管神经束。仔细分离深筋膜后，血管、神经即完全暴露。股静脉位
实验动物的外科技术及急救实验（一）
一、实验动物常用的外科基本技术 （一）基本操作技术 1. 切开 根据实验要求确定手术切口的部位及大小。切开时先绷紧皮肤，将刀刃与皮肤垂直，用力要得当，一次切开皮肤全层，切缝整齐而不偏斜。切开皮肤及皮下组织时，一般要求按解剖层次逐层切开，注意止血，避免损伤深层的重要组织器官（图1，图2）。 图1图
实验动物的外科技术及急救实验（三）
（二）基本手术 1.颈部手术 （1）气管插管术：以家兔为例。术中需使用常用手术器械、丝线、棉球、“Y”形气管套管、手术台、20%乌拉坦等。手术前，动物麻醉（20%乌拉坦1g/kg体重耳缘静脉注射），仰卧位固定，备皮。然后，用解剖刀在颈部，自甲状软骨下缘，沿下中线作一长约5～7cm皮肤切口，暴露胸骨舌
回收DNA进行后续酶切实验问题
洗脱产物含有残留的乙醇会影响酶切，请确保彻底去除漂洗缓冲液。具体方法参见回收效率低的解决方案。
动物的早期胚胎发育及腔肠动物观察实验
实验方法原理 通过观察蛙和海星早期胚胎发育的各个时期，了解多细胞动物早期胚胎发育的一般过程，从而加深对多细胞动物起源的理解。2. 通过对水螅切片和薮枝螅、海月水母、海蜇、海葵的浸制标本的观察，了解腔肠动物门的主要特征。实验材料 海星卵裂装片纵、横切片浸制标本仪器、耗材 显微镜载玻片盖玻片实验步骤 1
动物的早期胚胎发育及腔肠动物观察实验
实验方法原理1. 通过观察蛙和海星早期胚胎发育的各个时期，了解多细胞动物早期胚胎发育的一般过程，从而加深对多细胞动物起源的理解。2. 通过对水螅切片和薮枝螅、海月水母、海蜇、海葵的浸制标本的观察，了解腔肠动物门的主要特征。实验材料海星卵裂装片纵、横切片浸制标本仪器、耗材显微镜载玻片盖玻片实验步骤
关于动物血清的常见问题及处理方法
血清是细胞培养中zui重要的元素之一。在实验室操作中要注意及处理方法：1. 血清保存: 建议血清应保存在-5℃至-2O℃。然而，若存放于4℃时，请勿超过一个月。若您一次无法用完一瓶，建议您无菌分装血清至恰当的灭菌容器内，再放回冷冻。2. 解冻血清的方法: 建议您将血清从冷冻箱取出后，先置于2～8℃冰
实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即
实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液，最后取平均值。(2) 导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上
实验动物实验标本的采集实验——实验动物腹水的采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤抽取大鼠、小鼠的腹水时，抓取固定动物，使动物腹部朝上，消毒皮肤，针头在腹股沟和腹中线之间刺人腹腔，腹压高时腹水自然流出，腹水少时可用注射器抽取。
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
动物实验时动物的选择
为了获得理想的实验结果，必须根据实验目的选择适宜的观察对象，在选择动物时，需考虑如下因素： 种属的选择不同种属的动物对同一疾病病因刺激的反应程度会有很大的差异。在选择实验动物时，尽可能选择对刺激因素较为敏感且与人类接近的种属。例如在进行发热实验时，宜首选家兔：在进行过敏反应和变态反应实验时，宜首选豚