如何保存引物?

引物合成后,经过一系列处理和纯化步骤,旋转干燥而成无色或白色絮状干粉。干 粉:运输时常温运输,-20℃可以保存一年。储存液:配好后分装成几管,避免反复冻融,-20℃可以保存半年。工作液:常规使用,4℃保存,也可-20℃保存,但应避免反复冻融。修饰荧光引物:需要避光保存,尽快使用为宜。......阅读全文

如何保存引物?

引物合成后,经过一系列处理和纯化步骤,旋转干燥而成无色或白色絮状干粉。干 粉:运输时常温运输,-20℃可以保存一年。储存液:配好后分装成几管,避免反复冻融,-20℃可以保存半年。工作液:常规使用,4℃保存,也可-20℃保存,但应避免反复冻融。修饰荧光引物:需要避光保存,尽快使用为宜。

引物如何保存?

拿到手的引物一般已分装为两管。我们建议先溶解其中一管用于实验,另一管干粉保存备用,以备不时之需。干粉状态的引物非常稳定。-20℃可保存2年以上。常见的做法是将引物溶解至10倍的存储度,-20℃长期保存。使用时取出稀释至1倍的工作液。工作液保存于4℃即可。在4℃下引物溶液是比较稳定的,保存一周以上仍可

如何溶解和保存引物?

如何溶解引物?干燥后的引物质地非常疏松,开盖前最好瞬时离心一下,或管垂直向上在桌面上敲敲,将引物粉末收集到管底。根据计算出的体积加入去离子无菌水或TE(pH8.0)缓冲液,室温放置几分钟,振荡助溶,离心将溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸馏水,因为有些蒸馏水的pH值比较低(pH4-5),引物

合成的引物应如何保存?

没有溶解的引物非常稳定,可以在-20℃下保存至少1年,溶解好的引物可以事先稀释为100 μmoL/L 的储存液,分装数份保存于-20℃冰箱,可以保存至少半年以上(反复多次冻融会降低使用寿命)。使用前,将浓溶液稀释成工作液(10 pmol/ml或20 pmol/ml)后进行实验。注意:工作液千万别用T

引物溶解引物保存

1.  如何测定引物的OD值? 用紫外分光光度计在260nm波长测定溶液的吸光度来定量,请注意紫外分光光度计的使用,测定时溶液的吸光度最好稀释到0.2~0.8之间(吸光度太高或太低会有较大的误差)。DNA干粉用一定体积的水充分振荡溶解以后,取部分溶液稀释到1 ml 并在1 ml 标准比色皿中测定其

引物溶解引物保存

1. 如何测定引物的OD值?用紫外分光光度计在260nm波长测定溶液的吸光度来定量,请注意紫外分光光度计的使用,测定时溶液的吸光度最好稀释到0.2~0.8之间(吸光度太高或太低会有较大的误差)。DNA干粉用一定体积的水充分振荡溶解以后,取部分溶液稀释到1 ml 并在1 ml 标准比色皿中测定其吸光度

设计引物遵循原则、引物保存和各种PCR的引物设计

一 设计引物应遵循以下原则1 、引物长度: 15-30bp,常用为20bp左右。2 、引物扩增跨度: 以200-500bp为宜,特定条件下可扩增长至10kb的片段。3 、引物碱基:G+C含量以40-60%为宜,G+C太少扩增效果不佳,G+C过多易出现非特异条带。ATGC最好随机分布,避免5个以上

引物稀释后能保存多久

-20摄氏度放个一两年没有问题

引物稀释后能保存多久

引物在溶解前,室温状态下都可以长期保存.使用pH7.5-8.0的TE 缓冲液溶解引物,在-20℃可以保存两个月甚至半年以上,-4℃保存两周一般也没有问题.不建议使用蒸馏水溶解引物,因为有些蒸馏水的 pH 值比较低( pH4-5 ) , 引物在这种条件下不稳定. 另外需要提醒的是收到引物后一定先离心,

引物稀释后能保存多久

引物在溶解前,室温状态下都可以长期保存。使用pH7.5-8.0的TE缓冲液溶解引物,在-20℃可以保存两个月甚至半年以上,-4℃保存两周一般也没有问题。不建议使用蒸馏水溶解引物,因为有些蒸馏水的pH值比较低(pH4-5),引物在这种条件下不稳定。另外需要提醒的是收到引物后一定先离心,将引物粉末收集于

引物稀释后能保存多久

引物在溶解前,室温状态下都可以长期保存。使用pH7.5-8.0的TE 缓冲液溶解引物,在-20℃可以保存两个月甚至半年以上,-4℃保存两周一般也没有问题。不建议使用蒸馏水溶解引物,因为有些蒸馏水的 pH 值比较低( pH4-5 ) , 引物在这种条件下不稳定。 另外需要提醒的是收到引物后一定先离心,

如何溶解引物?

干燥后的引物质地非常疏松,开盖前最好离心一下,或管垂直向上在桌面上敲敲,将引物粉末收集到管底。根据计算出的体积加入去离子无菌水或10mM Tris pH7.5缓冲液,室温放置几分钟,振荡助溶,离心将溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸馏水,因为有些蒸馏水的pH值比较低(pH4-5),引物在这种

如何设计引物(一)

Primers:i) Oligonucleotide primers are generally supplied as "so many OD units/ml" - but what does this mean, in terms of mg/ml, or mmol/ml, etc?Given

如何设计引物(二)

Nucleotides:Stocks of nucleotides for PCR (or other procedure) are NEARLY ALWAYS dNTPs (deoxynucleotides), and concentrations is almost always given i

如何保存抗体

1.鼠抗:腹水:l      当腹水通过加入DDWater重组后,通常需要加入少量的叠氮化钠防菌。l      应该冷冻保存,不推荐在4度保存。l      应当分装成小份,尽量防止反复冻融。l      腹水中含有蛋白酶,可以降解抗体,而血清中则不含。加入蛋白酶抑制剂可以减缓降解。 纯化的IgG:

引物是如何合成的?

目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种,无论采用什么机器合成,合成的原理都相同,主要差别在于合成产率的高低,试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。(1)    去保护:加入Deblocking脱去碱基上5'- OH的保护基团DMT,获得游离的5'- OH;(2)

引物合成如何处理?

切割与脱保护基:将合成好的寡核苷酸链从支持物上化学切割下来。常用新鲜的浓氨水来裂解CPG与初始核苷之间的酯键。断裂下来的寡核苷酸带有自由的3’羟基。纯化:根据所合成寡核苷酸的组成和应用来选定纯化的方法。常用的纯化方法有:C18、OPC、PAGE和HPLC。定量:根据寡核苷酸在260nm处的紫外吸收来

如何检测引物的纯度?

实验室方便的作法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的一定浓度的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳,60个碱基的引物用12%的胶,取0.2OD左右的引物,用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和,上样前加热变性(95℃,2 min)。加入尿素的目的一是变性,二是增加样品比重,容易加样。600 V 电压进行

引物是如何合成的?

目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种, 主要都是由ABI/PE 公司生产,无论采用什么机器合成,合成的原理都相同,主要差别在于合成产率的高低,试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。亚磷酰胺三酯法合成DNA片段,具有高效、快速的偶联以及起始反应物比较稳定的特点。亚磷酰胺三酯法是

如何检测引物的纯度?

实验室方便的做法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的16%的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳。取0.2-0.5OD的引物,用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和,上样前加热变性(95℃,2mins)。加入尿素的目的一是变性,二是增加样品比重,容易加样。600V电压进行电泳,一定时间后(约2-3小时)

如何设计PCR引物(一)

“如何设计PCR引物”看到这个题目后肯定有问“什么是PCR”的。对于这个问题,连小白都知道,您不知道,就只好去找百度哥咯。虽然百度哥肚子里其他的信息乱七八糟的,但是这个问题的答案还是蛮统一的,不会有误导性,但问无妨。另外,也可以看看下图老外给的简介,英文不好请有道。跟“服装设计”类似,设计PCR引物

如何设计PCR引物(二)

上回说到如何寻找保守序列,经过隆地熊我一番罗嗦,七七八八也该知道了些。当然,要想做到炉火纯青,各位小白还得勤加练习。本回隆地熊我就要进入正题了,不然对不起这图文题目。在做PCR引物设计前,首先得了解引物设计的基本原则。根据网上资料汇总(主要来自生物谷、生物秀、小木虫、百度文库等,特此一并感谢,具体不

引物溶剂量如何计算?

一般默认是每条引物合成2个OD,分装为2管,所以每管中有1个OD的引物。由于引物分子量的不同,每个OD所对应的物质的量(即n mol数)都是不同的。在管壁标签上我们都会标明这个管里有多少个OD、多少n mol。可以根据这个数据,来算出你需要在管子里加多少体积的溶剂来进行溶解。通常直接用于PCR加样的

血脂仪如何保存

  1. 将测试条持续储存于含有不小于5 克干燥剂的密封塑料瓶内。  2. 测试条应在20℃—30℃干燥阴凉处储存;也可存放在冰箱内(2℃—8℃),但必须保证在使用前恢复到室温。不能使之结冰。  3. 远离热源和避免直接阳光照射。  4. 不要丢弃小瓶中的干燥剂。  5. 每次使用时,取出一个测试条

冬季如何保存砝码

面对如何寒冷的冬季,砝码的储存也是个非常重要的问题,不锈钢砝码价格都比较贵,正确的保存方法会让您的砝码使用寿命更加长,精度也保持准确 其实,这时候我们在存储砝码的时候都会加入一些干燥剂之类的东西,原因在于避免潮湿环境对砝码的影响,导致它因为环境因素腐蚀和生锈,所以做好环境干燥是必须的.  砝码作为一

科研血清如何保存?

  科研血清是指血液凝固后,在血浆中除去纤维蛋白原分离出的淡黄色透明液体或指纤维蛋白已被除去的血浆。其主要作用是提供基本营养物质、提供激素和各种生长因子、提供结合蛋白、提供促接触和伸展因子使细胞贴壁免受机械损伤、对培养中的细胞的起到某些保护作用。 科研血清是由血浆去除纤维蛋白原而形成的一种很复杂的混

生物样品如何保存

1.必要时添加稳定剂。稳定剂通常对于保存纯的蛋白是必需的。2.血清、培养物的上清和腹水应当分装成小份后保存在-20度或-70度。3.避免反复冻融或冻干/重溶解过程,这样很可能会降低生物活性。4.避免接近稳定极限的条件,如pH值或盐浓度、还原剂或螯合剂等。5.存放于密闭容器中保存在4°C可以减少细菌生

抗体该如何保存?

1.收到抗体后请务必在12000rpm离心1-5分钟后再打开管盖进行分装和保存(如果抗体体积小于50ul,请延长离心时间至5分钟,以保证全部抗体均离心下来)!2. 对于大部分抗体,比较合适的保存方式是分装后保存在-20℃ or -80℃ 。(1)对绝大多数抗体来说,保存在-20℃是完全足够了。没有任

如何利用LAMP引物设计平台设计IMSA引物?2

6. 更改ParameterCondition中默认的Normal至AT rich。默认显示Normal说明我们所上传VP1 gene的序列中GC含量位于40%-65%的正常范围内。高于65%属于GC rich;低于40%属于AT rich。7. 再次点击Generate时平台显示有1000或高于1

如何利用LAMP引物设计平台设计IMSA引物?1

IMSA,全称为isothermal multiple-self-matching-initiated amplification,中文名为等温多自配引发扩增。该技术的详细介绍可见本公众号历史文章:“分子诊断万花筒” 开篇——等温多自配引发扩增技术简介。在这里隆地熊为大家介绍一种如何利用LAMP引物