AutoRI保留指数自校正技术用于植物挥发性成分的鉴定分析
天然产物中挥发性有机化合物的GC/MS定性分析中，NIST谱库结合保留指数是最有效的未知物鉴定方式。通常，保留指数需要单独进样一个系列的正构烷烃混标来进行保留指数校正，在我们的GC/ID软件，通过独特AutoRI功能，可以在没有正构烷烃的情况，直接基于样品组分进行保留指数的自校正。 今天我们以一个植物样品为例，演示AutoRI是如何帮助我们直接获取样品组分的保留指数并帮助我们进行未知物鉴定的。 示例：植物挥发性组分的保留指数测定 植物的挥发性组分通过采样管富集，经正己烷溶剂洗脱后，直接收集洗脱液过滤后GC/MS直接进样分析。样品的GC/MS总离子流图如图1所示。图1：提取的植物挥发性组分的TIC图 在GC/ID中编辑GC/M方法参数，如TIC的分析时间范围、基线噪音阈值、色谱柱极性、混合物解卷积等。图2：编辑GC/ID方法参数 在样品运行界面中，调用样品数据和运行参数文件，然后自动运行即可。图3：在GC/ID中运行......阅读全文
保留体积介绍
保留体积从进样开始到色谱峰最大值出现时所通过的流动相的体积，其单位为mL。计算公式为： 式中为流动相平均体积流速，因为液体可以认为是不可压缩的，所以在液相色谱中，即为实测值；而在气相色谱中，由于气体可以压缩，因此必须根据色谱柱的工作状态，对实验值进行校正，才能得 。
气相色谱法术语（色谱参数）
1、 死时间（tM）：dead time 不被固定相滞留的组分，从进样到出峰最大值所需的时间。2、 保留时间（tR）：retention time 组分从进样到出现峰最大值所需的时间。3、 死体积（vM）：deat volum 不被固定相滞留的组分，从进样到出现峰最大值所需的载气体积。VM=tM×F
简述绝对校正法校正容量瓶
将洗净、干燥、带塞的容量瓶准确称量（ 空瓶质量）。注入蒸馏水至标线，记录水温，用滤纸条吸干瓶颈内壁水滴，盖上瓶塞称量，两次称量之差即为容量瓶容纳的水的质量。根据上述方法算出该容量瓶20℃时的真实容积数值，求出校正值。
PH计校正时如果三个点都要校正的话，先校正哪个溶液
择两种标准缓冲液：一种是ph7标准缓冲液，第二种是ph9标准缓冲液或ph4标准缓冲液。先用ph7标准缓冲液对电计进行定位，再根据待测溶液的酸碱性选择第二种标准缓冲液。如果待测溶液呈酸性，则选用ph4标准缓冲液；如果待测溶液呈碱性，则选用ph9标准缓冲液。若是手动调节的ph计，应在两种标准缓冲液之间反
恶臭指数－臭气指数公式计算方法
臭气很少以单一成分存在，通常以多个臭气成分复合的状态存在。人的嗅觉会将臭气作为整体复合臭来识别。臭气指数就是利用了这一特性的强度标准。臭气指数是这样得到的：将实验对象用无臭的干净空气进行稀释，并让多个嗅辨员闻嗅，求出直至无臭时的稀释倍率(臭气浓度)，进行对数转换后，乘以10。臭气指数=10
用保留时间和调整保留时间定性时哪种误差小
1.保留时间一样不一定是同一种物质一般用DAD检测器，保留时间一样+紫外吸收一样基本可以确定为同一物质2. 发文章的时候的图是机器给出来的，当然可以在此基础上进行修饰，但是保留时间不可以改，比如进行色谱图的组合等是可以的
相对保留时间RSD和保留时间RSD有什么区别
相对保留时间RSD好像就是计算保留时间的相对标准偏差 。
相对保留时间RSD和保留时间RSD有什么区别
相对保留时间RSD好像就是计算保留时间的相对标准偏差 。
自剪接
自剪接(self-splicing)出现在稀少的内含子组成核酸酶，核酸酶在只有RNA的情况下代替了剪接体的功能。自剪接的内含子有两种，称为I型及Ⅱ型。I型及Ⅱ型内含子以与剪接体类似的方式进行剪接，但不需要任何蛋白质。这种相似性使人相信这些内含子与剪接体在演化过程上有着关连。自剪接亦可能是非常古老，且
校正残余象差
.滤色片：滤色片的作用是吸收光源发出的白色光中波长不合需要的部分，只让一定波长的光线通 过，从而得到一定波长的光线。因而，滤色片是金相显微镜(黑白)时一个有力的辅助工 具，用以得到优良的金相照片。 使用滤色片的目的主要有： (1) 增加映象衬度或提高某种彩色组织的微细部分的鉴别能力。 (2)
质谱仪的校正
质谱仪的校正质谱仪需要定期进行校正，用户可根据测试样品的需求制定仪器校正计划。一般情况下，每次重新开机都需要对仪器或仪器的某些项目进行校正，当然不同公司的质谱仪的质量稳定性存在一定差别，所需要的校正频率也不一样。对于质量精度很高的高分辨质谱仪所需要校正的频率相对较高，校正时需要配制或者购买仪器厂家专
熔点仪校正
校正范例样品终熔点已二酸 153.2℃校正第一步：进入设置里的校正界面，设置标准样品萘的测试参数，输入样品熔点153.2℃、起始温度146℃、升温速率1℃/min、停止温度153℃，然后按【自动检测】或【手动检测】进入相应界面。如校正方式使用自动检测进行，可根据具体样品来调整对τ终、范围α、β、τ初
自噬的自噬发生过程
在此过程中，自噬体的形成是关键，其直径一般为 300 ~ 900 nm，平均 500 nm，囊泡内常见的包含物有胞质成分和某些细胞器如线粒体、内吞体、过氧化物酶体等。与其他细胞器相比，自噬体的半衰期很短，只有 8 min 左右，说明自噬是细胞对于环境变化的有效反应。由于自体吞噬较少受到关注,而且很难
自噬性死亡的自噬机制
细胞为维持正常新陈代谢，其生长过程始终都有自噬现象，这已在形态学中得到证实。但自噬的消长受多种因素影响，营养缺乏、胰高血糖素可诱导自噬，胰岛素抑制自噬，细胞肿胀也同胰岛素一样有抑制自噬的作用，它们的作用点在于改变氨基酸的浓度。当氨基酸浓度降低时，自噬启动可产生氨基酸，保证器官成活；相反则自噬被抑制。
自噬体的自噬发生条件
自噬体（autophgosome）自噬溶酶体（autolysosome）当自噬体与溶酶体融合后，形成自噬溶酶体。自噬性溶酶体是一种自体吞噬泡, 作用底物是内源性的,即细胞内的蜕变、破损的某些细胞器或局部细胞质。这种溶酶体广泛存在于正常的细胞内，在细胞内起“清道夫”作用，作为细胞内细胞器和其它结构自然
溶酶体自噬与自溶的区别
溶酶体消化的主要功能。有消化底来源有三种：①自噬（自噬），细胞内原有的物质吞噬作用;有害物质②通过形成所提供的吞噬小体（吞噬体）吞噬作用; ③通过内吞作用（内吞作用）提供的营养素。因为吞噬作用和胞吞作用被从细胞中提供，在统称为异体吞噬（heterophagy）的物质这两种来源的转消化的物质被消化。后
自噬的自噬的研究方法
正常培养的细胞自噬活性很低，不适于观察，因此，必须对自噬进行人工干预和调节，经报道的工具药有：（一）自噬诱导剂1）Bredeldin A / Thapsigargin / Tunicamycin ：模拟内质网应激2）Carbamazepine/ L-690，330/ Lithium Chloride
如何校正酸度计,怎样才算校正完毕
1.用新鲜蒸馏水配制6.86pH，4.00pH，9.18pH的标准缓冲溶液，买酸度计时配有，用完了可以到化学仪器商店买，很便宜，几角钱一包；2.对酸度计通电，预热30分钟，以保证数值稳定；3.将温度补偿选在标准缓冲溶液的温度，通常也就是环境温度；4.校正定位：将电极泡在6.86pH溶液里几分钟，等数
相对校正法校正容量瓶的介绍
在很多情况下，容量瓶与移液管是配合使用的，因此，重要的不是要知道所用容量瓶的绝对容积，而是容量瓶与移液管的容积是否正确，例如250mL容量瓶的容积是否为25mL移液管所放出的液体体积的10倍。一般只需要做容量瓶与移液管的相对校正即可。其校正方法如下： 预先将容量瓶洗净空干，用洁净的 移液管吸取
怎么用两点校正法校正PH计
一,电极校正(两点校正法)1,准备工作备妥三杯各装有250毫升纯净水(为保证校正精度)的烧杯,并在其中第一杯中倒入pH7混合磷酸盐试剂,第二杯中倒入pH4邻苯二甲酸氢钾试剂(或pH9四硼酸钠试剂视用户监控需要而定,一般采用pH4试剂.),并用搅拌棒充分搅拌,使其完全溶解.第三杯纯净水用作电极清洗.2
怎么用两点校正法校正PH计
一,电极校正(两点校正法)1,准备工作备妥三杯各装有250毫升纯净水(为保证校正精度)的烧杯,并在其中第一杯中倒入pH7混合磷酸盐试剂,第二杯中倒入pH4邻苯二甲酸氢钾试剂(或pH9四硼酸钠试剂视用户监控需要而定,一般采用pH4试剂.),并用搅拌棒充分搅拌,使其完全溶解.第三杯纯净水用作电极清洗.2
保护柱和保留间隙
保护柱和保留间隙是相同的，但是它们的用途不同。二者均是色谱柱前连接的1-10米脱活熔融石英管线。脱活的熔融石英管线没有任何固定相，只是对表面进行了脱活处理，以便减小溶质的相互作用。需使用一种合适的接头把管线连接到色谱柱上。大多数情况下，保留间隙或保留柱的直径应与色谱柱相同。如果管线尺寸不一，则使用直
保留时间漂移的原因
可能是柱子脏了吧。如果是气相色谱，就把柱子烘一下，再用甲醇或丙酮洗洗。如果是液相色谱，用流动相多清洗一会。
保留时间漂移的原因
有流时间漂移的原因漂移的原因的话，也是有很多的方面的，但是还是要具体方面具体的一些来进行一些的查看。
保留时间漂移的原因
有流时间漂移的原因漂移的原因的话，也是有很多的方面的，但是还是要具体方面具体的一些来进行一些的查看。
保留时间漂移的原因
可能是柱子脏了吧。如果是气相色谱，就把柱子烘一下，再用甲醇或丙酮洗洗。如果是液相色谱，用流动相多清洗一会。
调整保留体积介绍
调整保留体积保留体积减去死体积，叫做调整保留体积，即组分停留在固定相时所消耗的流动相体积。
安捷伦保留时间锁定功能
是两篇英文报告。 如何进行保留时间锁定如何建立保留时间锁定库 保留时间锁定功能介绍及如何建立
分流比越大保留时间
两者关系不大。分流比对保留时间没有很大影响，主要是改善峰型。分流比高，即进入色谱柱的气体少，当色谱峰无法分开或拖尾严重时适当调高分流比，可以改善分离。分流比低，即进入色谱柱的气体多，当分析物含量低，响应值小的时候适当调低分流比，可以增大响应值，流速越快保留时间越靠前，越慢越靠后。 升温速率越快，保留
保留时间为何不恒定？
“液相故障与排除”是分析工作者经常遇到的问题，而这两者都与液相色谱方法中的保留时间变化有关，本文就这方面进行了一些探讨。 流动相组成的敏感度 流动相的组成对保留时间的影响是十分灵敏的，例如在使用反相液相色谱法分离两个分子量约为400Da，不含离子化基团的异构体，流动相为乙腈和水。通常这