一组精巧的小鼠实验与一篇好文
一组精巧的小鼠实验与一篇好文在前文我提到一个加拿大小组做的小鼠脑血管结构的基础工作。这篇文章聊聊另一篇一个德国小组做的一组精巧的小鼠脑血管阻断与血管增生实验。小鼠头脑供血如人一样，由两根颈动脉（IA)与两根椎动脉(VA)供血。德国普朗克学院的Busch等人做了这样一个实验，他们阻断两根VA及一根IA，再观察剩下一根的IA的生理变化（最右边示意图）。他们发现，实验小鼠大都活下来。那么剩下的唯一一根IA必然负担整个脑部的供血，由Willis环传递。相应的，那根IA因为要负担比常量多得多的流量，所以管径变粗，管壁变薄：看右边的IA明显变粗：三根脑血管阻断后，脑供血整体减少。同时刺激毛细血管增生，减少脑缺血风险。下图为histological分析，及biomarker Ki-67与ED-1在血管壁内层及外层的增加，为明显血管增生证据。是一篇由实验到内容都漂亮的好文。参考文献：[1] H. Busch, I. R. Busch......阅读全文
小鼠免疫实验
实验方法原理 实验材料 任意品系小鼠（6～8 周）试剂、试剂盒 PBS完全和不完全弗氏佐剂抗原仪器、耗材 22－G 注射针头带塞的 3 ml 注射器双头带塞的连接器无菌剪刀剃须刀片解剖刀片木制涂棒实验步骤 1. 准备等体积 PBS 含 25～100 μg 抗原和弗氏完全佐剂的乳化液（200～40
小鼠耐力测试实验
实验概要本实验主要目的是测定小鼠的耐力。 主要设备水池 实验材料小鼠 实验步骤 1. 以小鼠体重10%的重物系于小鼠尾部。 2. 将其投入20℃左右（有的资料为24℃）水中。 3. 记录疲劳时间，以小鼠头部浸于水下10s为小鼠疲劳时间。（有资料采用小鼠头部浸
分离小鼠胚胎实验
实验方法原理 无菌条件下切除孕鼠（已知怀孕时间）子宫，分离胚胎。实验材料 DBSS试剂、试剂盒 70%乙醇仪器、耗材 培养皿尖镊子尖剪刀超净工作台本生灯实验步骤 1. 交配。将分笼的雄鼠和雌鼠合笼进行交配，雌鼠 3 天后可进入动情期，此时交配的成功率最高。这一过程可以有计划地进行，使胚胎在适宜的时间
小鼠智力测试实验
实验概要用经典的水迷宫法测定小鼠的智力。 主要设备自制梯子水池加热器 实验材料 小鼠 实验步骤1. 正式训练前将动物放在终点梯子附近，让其自行爬上三次。2. 第1 天训练，训练前，让动物自行爬梯一次。将挡板置于A 位置，动物在A 点入水，放时将小鼠面向池壁。训练时间定为120秒，如果在120秒内，动
分离小鼠胚胎实验
实验方法原理 胚胎是怀孕最初两个月内的幼体。囊胚、胚的早期发育和胚胎发育是一个连续过程。在体节时期，三个胚层都发生了变化。外胚层在背部中线凹陷成沟，称神经沟，沟的两岸称神经脊。神经脊逐渐接近、愈合，致使神经演变为纵贯胚体的神经管。神经管和神经
分离小鼠胚胎实验
分离小鼠胚胎可以用于：（1）体外培养小鼠胚胎，摸索适宜培养条件。（2）使用胚胎进行发育生物学研究。实验方法原理胚胎是怀孕最初两个月内的幼体。囊胚、胚的早期发育和胚胎发育是一个连续过程。在体节时期，三个胚层都发生了变化。外胚层在背部中线凹陷成沟，称神经沟，沟的两岸称神经脊。神经脊逐渐接近、愈合，致使神
转基因小鼠制备实验
实验材料 小鼠试剂、试剂盒 HCGPMSG透明质酸酶戊巴比妥钠仪器、耗材 显微镜镊子持卵针注射针实验步骤 1. 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2. 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合
转基因小鼠制备实验
转基因小鼠制备实验可应用于：（1）动物发育研究；（2）研究细胞功能调控机制。实验方法原理遗传的基本物质是DNA，基因是位于染色体上有遗传效应的DNA片段，对于储存在生物全套染色体中的全部遗传信息，可称其为基因组。不同种类、不同个体的生物基因组成是不同的，对动物个体来说，非自身的基因成分属于外源基因，
大小鼠的灌胃实验
实验材料大鼠小鼠仪器、耗材灌胃针注射器实验步骤小鼠、大鼠（或豚鼠）灌胃时将灌胃针安在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，用灌胃针管压其上腭，使口腔和食道成一条直线，再沿咽后壁徐徐插入食管。针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应拔出重插，以
转基因小鼠制备实验
实验步骤 1. 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2. 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。3. 第二天上午9:00前观察
转基因小鼠制备实验
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。 3、第二天上午9:00前观察供体、受
大小鼠的灌胃实验
小鼠、大鼠（或豚鼠）灌胃时将灌胃针安在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，用灌胃针管压其上腭，使口腔和食道成一条直线，再沿咽后壁徐徐插入食管。针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应拔出重插，以免损伤或穿破食管以及误入气管（图1）图1 一般
大小鼠实验跑台
一、实验介绍 正华ZH-PT实验跑台主要用于大小白鼠、兔等小动物做跑台运动训练，可取代传统的游泳训练，使训练量化更加明确，是研究体能、耐力、运动损伤、营养、药物、运动生理和病理及兴奋剂检测等实验的必要手段。段氏实验跑台已荣获国家科技进步奖、奥林匹克萨马兰奇奖等论文达数十篇。 从1986年开发生产，经
实验小鼠运输指南（一）
大家好，我是一只来自邦耀实验室SPF级动物房的基因编辑小鼠，听实验室的哥哥姐姐们说现在外面已经30多度的高温了，在外面呆几分钟就能汗流浃背。虽然我没有汗腺，但是光想象一下就觉得鼠生艰难啊…不过上完最后一节课就要放暑假，去一个新的环境、参与完成一项伟大的实验了~但是我们中有的是短途货车出行，有的是长途
小鼠前肢力量测定实验
实验概要本实验是通过抓力测试仪对小鼠前肢力量进行测定。 主要设备抓力测试仪 实验材料小鼠 实验步骤1. 将小鼠放置于透明平台上，抓竿的前方。 2. 抓住小鼠尾部，向后直线拉拽。动物在非本意的向后移动时会本能地抓任何物体以阻止后退，直到拉力超过他们的抓力。 3.
实验小鼠常见疾病
一、病毒性疾病(一) 小鼠肝炎病毒(Mouse hepatitis virus MHV)属冠状病毒科。自然宿主为小鼠，也容易感染裸鼠与免疫缺陷小鼠。可引起多种型式的病症，发病时无症状或昏睡，皮毛粗刚，厌食，或有神经症状。传染途径依不同型分为飞沫传染或经口传染。造成研究干扰有导致免疫抑制或免疫刺激，抑
成年小鼠的灌流实验
成年小鼠的灌流实验主要用于：（1）获得良好的形态学观察结果；（2）保存脑、肾、心脏和其他器官实验方法原理进行实验动物灌流是获得良好的形态学观察结果以及保存脑、肾、心脏和其他许多器官所必需的。实验材料小鼠试剂、试剂盒PBS仪器、耗材23-G针头注射管解剖器械实验步骤1. 一支针管吸满1×PBS，另一
成年小鼠的灌流实验
实验材料 小鼠试剂、试剂盒 PBS仪器、耗材 23-G针头注射管解剖器械实验步骤 1. 一支针管吸满1×PBS，另一支吸4%PFA固定液（4℃），搁置待用。 2. 在袋中用CO2气体处死小鼠。停止吸呼后，立刻背朝下放平小鼠，小心剖开胸腔防止过多出血，小心并迅速切开肋骨，剪去横隔膜，暴露心脏。 3
实验小鼠运输指南（二）
2. 装载密度运输时注意降低运输箱盒中动物的密度，保证动物舒适地站立、躺卧或转身，可减轻应激反应。例如规格450×250×160 mm的小型运输箱内放入的小鼠总量最好不超过10只，规格600×400×200 mm的大型运输箱内放入的小鼠总数最好不超过20只。如果运输的小鼠周龄较大或者在饲养过
实验小鼠常见疾病
一、病毒性疾病 (一) 小鼠肝炎病毒(Mouse hepatitis virus MHV) 属冠状病毒科。自然宿主为小鼠，也容易感染裸鼠与免疫缺陷小鼠。可引起多种型式的病症，发病时无症状或昏睡，皮毛粗刚，厌食，或有神经症状。传染途径依不同型分为飞沫传染或经口传染。 造成研究干扰有导致免疫抑制或免疫刺
动物实验技术：转基因小鼠制备实验
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。3、第二天上午9:00前观察供体、受体，
小鼠肝细胞培养实验
细胞培养技术 实验方法原理 直接从生物体内获取组织细胞进行的首次培养称为原代细胞培养。原代培养是建立各种细胞系的第一步，是从事培养工作的人员应熟悉和掌握的最基
小鼠肝细胞培养实验
实验方法原理 通过光镜观察细胞形态、电镜观察超微结构及检测培养上清白蛋白水平证实培养细胞为肝细胞，持续培养结果显示原代培养第6～12 d 左右为肝细胞功能最佳观察和实验阶段。实验材料 小鼠试剂、试剂盒 DMEMDMEM胰酶PBS仪器、耗材 饭盒纱布小剪子小镊子大镊子大烧杯平皿研磨玻片滤网离心管6 孔
小鼠肝细胞培养实验
实验方法原理 直接从生物体内获取组织细胞进行的首次培养称为原代细胞培养。原代培养是建立各种细胞系的第一步，是从事培养工作的人员应熟悉和掌握的最基本的技术。根据培养方法不同分为组织块培养法和单层细胞培养法。
大鼠、小鼠心脏取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。
大鼠、小鼠眼部取血实验
实验步骤可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管（一端烧制拉成直径1～1.5mm的毛细管）。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定，轻轻压迫颈部两侧，阻碍头部静脉回流，使眼球充分外突，球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管，将其插入内眦部，向眼底方向旋转插入。插入深度：小
大鼠、小鼠断头取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精剪刀实验步骤 这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时。
大小鼠静脉注射实验
静脉注射（Intravenous injection）是一种医疗方法，可以用于把血液、药液、营养液等液体物质直接注射到静脉中。实验方法原理鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将
大鼠、小鼠断头取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材小动物实验台注射器酒精剪刀实验步骤这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时
大鼠、小鼠心脏取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。