大小鼠静脉注射实验
静脉注射（Intravenous injection）是一种医疗方法，可以用于把血液、药液、营养液等液体物质直接注射到静脉中。实验方法原理鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些特殊的实验中，如进行尾静脉注射时，可使用特殊的固定装置进行固定，如尾静脉注射架或粗的玻璃试管。如要进行手术或心脏采血应先行麻醉再操作，如进行解剖实验则必须先行无痛处死后再进行。实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒药液仪器、耗材注射器实验步骤一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射前先将动物固定在鼠筒或玻璃罩内，使鼠尾露出，在45℃～50℃热水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管扩张。用拇指和食指捏住尾根部，再以无名指和小指......阅读全文
大小鼠静脉注射实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 注射器实验步骤 一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射前先将动物固定在鼠筒或玻璃罩内，使鼠尾露出，在45℃～50℃热水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管扩张。用拇指和食指捏住尾根部，再以无名指和小指夹住尾端部，用中指从
大小鼠静脉注射实验
静脉注射（Intravenous injection）是一种医疗方法，可以用于把血液、药液、营养液等液体物质直接注射到静脉中。实验方法原理鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将
小鼠尾静脉注射方法
实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.5ml
小鼠尾静脉注射方法
实验材料 小鼠仪器、耗材 大培养皿注射器酒精棉实验步骤 在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.
大小鼠尾静脉注射难点指导
实验动物中采用的给药方法众多，根据药物性质和实验目的不同，需要采用不同的给药方式，如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药，在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大，却也是我们不可或缺的实验技能。今天，就和大家分享下尾静脉注射的技巧。本次文章内容丰富全面，主要分为2部分，尾静脉注射基本步骤和技术
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧
1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些非凡
狗静脉注射实验
狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉(图1)或后肢小隐静脉（图2），注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。图1图2
狗静脉注射实验
实验材料狗仪器、耗材绳子注射器实验步骤狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉(图1)或后肢小隐静脉（图2），注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。图1图2 展开
大鼠、小鼠大血管取血实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。
大鼠、小鼠大血管取血实验
实验方法原理可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。 实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得
关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定
体内转染之小鼠尾静脉注射技巧
1.小鼠的固定最好使用小鼠固定器，前部有气孔保证小鼠呼吸，后部可以将尾部拉出，不要让小鼠在固定器中有太多活动空间， 如空间较大，可加入一些填充物，防止小鼠在注射时乱动。2.尾静脉的准备可以将小鼠尾部在50℃左右温水浸浴2分钟，以扩张静脉。3.尾静脉的选择小鼠尾部有3条尾静脉。背部1天，两侧各1条。由
蛙类的静脉注射实验
实验材料蛙实验步骤将蛙脑脊髓破坏后仰卧位固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹肌翻转，可见腹静脉紧贴腹壁肌肉下行，将针刺入即可（图1）图1展
蛙类的静脉注射实验
将蛙脑脊髓破坏后仰卧位固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹肌翻转，可见腹静脉紧贴腹壁肌肉下行，将针刺入即可（图1）图1
如何解决大鼠尾静脉注射比小鼠还难的问题？
其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似，只是...... 因为大鼠，个体更大，难固定、易挣扎；尾巴颜色深，不易辨别血管；尾巴质地更粗糙，扎针力度要更大； 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴，可见大鼠尾巴的质地粗糙，难辨别血管的特点： 小鼠尾巴（左）和大鼠尾巴（右） 大鼠尾静
动物的注射方法实验_静脉注射法
实验材料家兔试剂、试剂盒灭菌生理盐水仪器、耗材注射器（1 ml）7 号针头剪刀消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花放家兔用特制木箱实验步骤1. 注射器的准备与消毒（同「皮下注射法」）。2. 静脉注射2.1 将家兔固定于特制木箱（木箱的一端有一圆洞，使头部露出）中，或由助手按在桌上，一手轻按其
基本方案1－尾静脉注射传递重组腺病毒到小鼠肝脏
实验材料成年小鼠试剂、试剂盒乙醇重组腺病毒悬液仪器、耗材带铁丝盖的鼠笼加热灯小鼠限制器棉纱店注射器实验步骤1.一个鼠笼装 6 只小鼠，加热灯置铁丝盖上方 6~10in(15~25 cm) 给小鼠取暖。观察小鼠，约 5 min 后，它们会在角落里缩做一团，准备注射。不要在角落的位置照射小鼠。2.取一只
小鼠免疫实验
实验方法原理 实验材料 任意品系小鼠（6～8 周）试剂、试剂盒 PBS完全和不完全弗氏佐剂抗原仪器、耗材 22－G 注射针头带塞的 3 ml 注射器双头带塞的连接器无菌剪刀剃须刀片解剖刀片木制涂棒实验步骤 1. 准备等体积 PBS 含 25～100 μg 抗原和弗氏完全佐剂的乳化液（200～40
卖实验小鼠年赚4亿？南大教授本人回应
“对于南大教授靠卖‘基因敲除小鼠’年赚近4亿，你怎么看？”4月15日，这个问题在知乎一经发出即引发热议。截至4月21日，该问题收获近400个回答、超过430万浏览。 该问题来源于证券时报网一则报道，题为《他，南京大学教授，靠卖小鼠年赚4亿，即将收获一个IPO》。报道称，4月12日，即将登陆科创
分离小鼠胚胎实验
实验方法原理 胚胎是怀孕最初两个月内的幼体。囊胚、胚的早期发育和胚胎发育是一个连续过程。在体节时期，三个胚层都发生了变化。外胚层在背部中线凹陷成沟，称神经沟，沟的两岸称神经脊。神经脊逐渐接近、愈合，致使神经演变为纵贯胚体的神经管。神经管和神经
分离小鼠胚胎实验
实验方法原理 无菌条件下切除孕鼠（已知怀孕时间）子宫，分离胚胎。实验材料 DBSS试剂、试剂盒 70%乙醇仪器、耗材 培养皿尖镊子尖剪刀超净工作台本生灯实验步骤 1. 交配。将分笼的雄鼠和雌鼠合笼进行交配，雌鼠 3 天后可进入动情期，此时交配的成功率最高。这一过程可以有计划地进行，使胚胎在适宜的时间
分离小鼠胚胎实验
分离小鼠胚胎可以用于：（1）体外培养小鼠胚胎，摸索适宜培养条件。（2）使用胚胎进行发育生物学研究。实验方法原理胚胎是怀孕最初两个月内的幼体。囊胚、胚的早期发育和胚胎发育是一个连续过程。在体节时期，三个胚层都发生了变化。外胚层在背部中线凹陷成沟，称神经沟，沟的两岸称神经脊。神经脊逐渐接近、愈合，致使神
小鼠智力测试实验
实验概要用经典的水迷宫法测定小鼠的智力。 主要设备自制梯子水池加热器 实验材料 小鼠 实验步骤1. 正式训练前将动物放在终点梯子附近，让其自行爬上三次。2. 第1 天训练，训练前，让动物自行爬梯一次。将挡板置于A 位置，动物在A 点入水，放时将小鼠面向池壁。训练时间定为120秒，如果在120秒内，动
小鼠耐力测试实验
实验概要本实验主要目的是测定小鼠的耐力。 主要设备水池 实验材料小鼠 实验步骤 1. 以小鼠体重10%的重物系于小鼠尾部。 2. 将其投入20℃左右（有的资料为24℃）水中。 3. 记录疲劳时间，以小鼠头部浸于水下10s为小鼠疲劳时间。（有资料采用小鼠头部浸
靠卖实验小鼠年赚4亿？南大教授回应：不够准确
“对于南大教授靠卖‘基因敲除小鼠’年赚近4亿，你怎么看？”4月15日，这个问题在知乎一经发出即引发热议。截至4月21日，该问题收获近400个回答、超过430万浏览。该问题来源于证券时报网一则报道，题为《他，南京大学教授，靠卖小鼠年赚4亿，即将收获一个IPO》。报道称，4月12日，即将登陆科创板的江苏
转基因小鼠制备实验
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。 3、第二天上午9:00前观察供体、受
转基因小鼠制备实验
实验材料 小鼠试剂、试剂盒 HCGPMSG透明质酸酶戊巴比妥钠仪器、耗材 显微镜镊子持卵针注射针实验步骤 1. 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。 2. 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合
转基因小鼠制备实验
转基因小鼠制备实验可应用于：（1）动物发育研究；（2）研究细胞功能调控机制。实验方法原理遗传的基本物质是DNA，基因是位于染色体上有遗传效应的DNA片段，对于储存在生物全套染色体中的全部遗传信息，可称其为基因组。不同种类、不同个体的生物基因组成是不同的，对动物个体来说，非自身的基因成分属于外源基因，
大小鼠的灌胃实验
实验材料大鼠小鼠仪器、耗材灌胃针注射器实验步骤小鼠、大鼠（或豚鼠）灌胃时将灌胃针安在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，用灌胃针管压其上腭，使口腔和食道成一条直线，再沿咽后壁徐徐插入食管。针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应拔出重插，以
成年小鼠的灌流实验
成年小鼠的灌流实验主要用于：（1）获得良好的形态学观察结果；（2）保存脑、肾、心脏和其他器官实验方法原理进行实验动物灌流是获得良好的形态学观察结果以及保存脑、肾、心脏和其他许多器官所必需的。实验材料小鼠试剂、试剂盒PBS仪器、耗材23-G针头注射管解剖器械实验步骤1. 一支针管吸满1×PBS，另一