大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验

实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材注射器实验步骤先固定动物,用酒精棉球消毒尾部,然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。......阅读全文

大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验

实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 注射器实验步骤 先固定动物,用酒精棉球消毒尾部,然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。

大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验

实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材注射器实验步骤先固定动物,用酒精棉球消毒尾部,然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。

大鼠、小鼠剪尾尖取血实验

实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 将动物固定或麻醉后,露出鼠尾,将尾巴置于45℃~50℃热水中浸泡数分钟,使血管扩张。擦干鼠尾后,将尾尖剪去1~2mm(小鼠)或5mm(大鼠)。从尾根部向尾尖部按摩,血即从断端流出。

大鼠、小鼠剪尾尖取血实验

实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤将动物固定或麻醉后,露出鼠尾,将尾巴置于45℃~50℃热水中浸泡数分钟,使血管扩张。擦干鼠尾后,将尾尖剪去1~2mm(小鼠)或5mm(大鼠)。从尾根部向尾尖部按摩,血即从断端流出。

大鼠、小鼠心脏取血实验

实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 先将动物仰卧固定,左手食指在左侧第3~4肋间触到心尖搏动最强处,右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5~0.6ml,大鼠约0.8~1.2ml。

大鼠、小鼠断头取血实验

实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材小动物实验台注射器酒精剪刀实验步骤这需要二人配合操作,采血者用左手将大(小)鼠的头颈部握紧,右手抓住躯干和后肢,将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断(用力要大),采血者应迅速将大(小)鼠倒置,让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时

大鼠、小鼠心脏取血实验

实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤先将动物仰卧固定,左手食指在左侧第3~4肋间触到心尖搏动最强处,右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5~0.6ml,大鼠约0.8~1.2ml。

大鼠、小鼠眼部取血实验

实验步骤可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管(一端烧制拉成直径1~1.5mm的毛细管)。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定,轻轻压迫颈部两侧,阻碍头部静脉回流,使眼球充分外突,球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管,将其插入内眦部,向眼底方向旋转插入。插入深度:小

大鼠、小鼠断头取血实验

实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精剪刀实验步骤 这需要二人配合操作,采血者用左手将大(小)鼠的头颈部握紧,右手抓住躯干和后肢,将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断(用力要大),采血者应迅速将大(小)鼠倒置,让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时。

大鼠、小鼠眼部取血实验

可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管(一端烧制拉成直径1~1.5mm的毛细管)。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定,轻轻压迫颈部两侧,阻碍头部静脉回流,使眼球充分外突,球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管,将其插入内眦部,向眼底方向旋转插入。插入深度:小鼠为2~

大鼠、小鼠大血管取血实验

实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 可采用颈动(静)脉、股动(静)脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物,然后作动(静)脉分离手术,使其充分暴露,用注射器沿大血管平行方向刺入,抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取,但切断动脉时,要防止血液喷溅。

大鼠、小鼠大血管取血实验

实验方法原理可采用颈动(静)脉、股动(静)脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物,然后作动(静)脉分离手术,使其充分暴露,用注射器沿大血管平行方向刺入,抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取,但切断动脉时,要防止血液喷溅。 实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧

1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直,绷紧,这是成功的第一步。小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。在一些非凡

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得

关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直,绷紧,这是成功的第一步。小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定

狗和猫颈静脉取血实验

实验材料狗猫仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定,固定时将颈部尽量后仰,助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤,使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤,右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。经验交流

狗和猫颈静脉取血实验

实验材料 狗 猫仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 此方法可取较多的血。先将狗麻醉固定,固定时将颈部尽量后仰,助手用手压住颈静脉入胸部的皮肤,使静脉怒张。操作者用左手绷紧进针部位的皮肤,右手拿注射器沿血管向心端刺入。采血后应注意止血。

豚鼠背中足静脉取血实验

实验材料豚鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤固定动物,将其右或左后关节伸直,将动物脚背面用酒精消毒,找出背中足静脉后,一手拉住豚鼠的趾端,一手用注射器刺入静脉。拔针后立即出血,呈半球状隆起。采取后应压迫止血

豚鼠背中足静脉取血实验

实验材料 豚鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 固定动物,将其右或左后关节伸直,将动物脚背面用酒精消毒,找出背中足静脉后,一手拉住豚鼠的趾端,一手用注射器刺入静脉。拔针后立即出血,呈半球状隆起。采取后应压迫止血

狗和猫前、后肢静脉取血实验

实验材料狗猫仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤前肢选用内侧皮下头静脉,位于前肢前部,在下1/3处向内侧走行;后肢选用外侧的隐静脉,位于跗关节外侧,距跗关节上方5~10cm处的皮下,由前斜向后上方走行。采血时,先将狗固定,用止血带扎住穿刺部位的上方,使静脉充盈。操作者手持注射器采血。

狗和猫耳缘静脉取血实验

实验材料 狗 猫仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取。

狗和猫前、后肢静脉取血实验

实验材料 狗 猫仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 前肢选用内侧皮下头静脉,位于前肢前部,在下1/3处向内侧走行;后肢选用外侧的隐静脉,位于跗关节外侧,距跗关节上方5~10cm处的皮下,由前斜向后上方走行。采血时,先将狗固定,用止血带扎住穿刺部位的上方,使静脉充盈。操作者手持注射器采血。

狗和猫耳缘静脉取血实验

实验材料狗猫仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤采血量较少时可用此法。用针头刺破静脉采血或直接用空针抽取

小鼠尾静脉注射方法

实验材料 小鼠仪器、耗材 大培养皿注射器酒精棉实验步骤 在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.

小鼠尾静脉注射方法

实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.5ml

如何解决大鼠尾静脉注射比小鼠还难的问题?

其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似,只是...... 因为大鼠,个体更大,难固定、易挣扎;尾巴颜色深,不易辨别血管;尾巴质地更粗糙,扎针力度要更大; 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴,可见大鼠尾巴的质地粗糙,难辨别血管的特点: 小鼠尾巴(左)和大鼠尾巴(右)  大鼠尾静

实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法

实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法:①剪尾采血:适用于少量采血,如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后,将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。

Hamilton微量注射器在大鼠、小鼠等实验动物注射上的应用...

Hamilton微量注射器在大鼠、小鼠等实验动物注射上的应用方法和注射技巧1. 皮下注射:皮下注射较为简单,一般都取背部及后腿皮下。小鼠通常在背部皮下注射,将皮肤拉起,注射针刺入皮下,把针尖轻轻向左右摆动,容易摆动则表明已刺入皮下,然后注射药物。拔针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。熟练者可把

实验动物实验标本的采集实验

(1) 大鼠、小鼠的采血方法:①剪尾采血:适用于少量采血,如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后,将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。②眼眶后静脉丛采血:一手拇指及食指抓住鼠两耳之

实验动物的取血实验

实验方法原理实验动物的采血方法很多,按采血部位不同,可分为:尾部采血(割、剪鼠尾),鼠尾刺血法,眼眶静脉丛采血,断头采血,心脏采血,颈静脉(动脉)采血,腹主动脉采血,股动(静)脉采血,耳缘剪口采血,耳静脉采血,后肢外侧小隐静脉采血,前肢内侧皮下头静脉采血,毛细血管采血,翼下采血等。实验材料家兔狗豚鼠

大小鼠尾静脉注射难点指导

实验动物中采用的给药方法众多,根据药物性质和实验目的不同,需要采用不同的给药方式,如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药,在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大,却也是我们不可或缺的实验技能。今天,就和大家分享下尾静脉注射的技巧。本次文章内容丰富全面,主要分为2部分,尾静脉注射基本步骤和技术