实验动物注射给药法
常用的注射给药法包括（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）静脉注射（4）动脉注射（5）腹腔注射等。实验动物的注射给药法是指由注射器将无菌药液或生物制剂注入组织、血管或体腔中，达到预防、治疗、协助检查、维持正常生理功能以及减轻痛苦不适的目的。皮下注射、肌肉注射、静脉注射、动脉注射实验方法原理在动物实验中，为了观察药物对机体功能、代谢及形态引起的变化，常需要将药物注入动物体内。给药的途径和方法多种多样，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型、剂量等情况确定。 实验材料实验动物试剂、试剂盒水碘酒酒精药液仪器、耗材注射器金属网针头铁丝笼玻璃筒橡皮带注射针微量自动注射器实验步骤皮下注射：针头与皮肤成45度角， 刺入皮下深3——4厘米。一般在注射药液后5——15分钟显效。肌肉注射：针头刺入肌肉 3/4-4/5, 注射完成后拔出针头， 用5%碘酊消毒针眼处皮肤。一般在注射后 1 0-20 分钟显效。静脉注射：注射部位多在颈静脉沟上1/3与中1 /......阅读全文
实验动物注射给药法
常用的注射给药法包括（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）静脉注射（4）动脉注射（5）腹腔注射等。实验动物的注射给药法是指由注射器将无菌药液或生物制剂注入组织、血管或体腔中，达到预防、治疗、协助检查、维持正常生理功能以及减轻痛苦不适的目的。皮下注射、肌肉注射、静脉注射、动脉注射实验方法原理在动物实验中，
注射给药法的分类和步骤
1、皮下注射：注射时，用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤，右手持注射器，将注射针刺入皮下，若针头容易摆动则证明针头已在皮下，推送药液。拔针时，轻按针孔片 刻，防药液逸出。皮下注射的部位，一般小鼠在背部，大鼠在背部或侧下腹部，豚鼠在大腿内侧、背部和肩部等皮下脂肪少的部位，兔在背部或耳根部，猫、狗常选
实验动物经口给药法——实验动物经口给药法
实验材料小鼠大鼠豚鼠兔猫狗试剂、试剂盒水药液片剂胶囊剂仪器、耗材灌胃器注射器兽用针头鼠笼开口器导尿管镊子经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。灌胃法(1)小鼠灌胃
实验动物经口给药法
经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。 灌胃法(1)小鼠灌胃法：将小鼠放在粗糙面上，用左手手掌及小指无名指夹住尾部，再以拇指及示指抓住两耳和头颈部的皮肤，使口腔和
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
实验动物给药和采血方法（二）
4.后肢胫部皮下静脉取血将兔仰卧固定于兔固定板上，或由一人将兔固定好。拔去胫部被毛，在胫部上端股部扎以橡皮管，则在胫部外侧浅表皮下，可清楚见到皮下静脉。用左手两指固定好静脉，右手取带有5（1/2）号针头的注射器内皮下静脉平行方向刺入血管，抽一下针栓，如血进入注射器，表示针头已刺入血管，即可取血。一次
实验动物给药和采血方法（一）
1.割(剪）尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉
实验动物的除毛和给药
一、实验动物的除毛在动物实验中，被毛有时会影响实验操作与观察，因此必须除去。除去被毛的方法有剪毛、拔毛、剃毛和脱毛等。（一）剪毛法：剪毛法是将动物固定后，先用蘸有水的纱布把被毛浸湿，再用剪毛剪刀紧贴皮肤剪去被毛。不可用手提起被毛，以免剪破皮肤。剪下的毛应集中放在一容器内，防止到处飞扬。给狗、羊等动物
实验动物中常用的麻醉药
(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％溶液作为大动物神经干阻滞麻醉，也可用0.25％～0.5％溶液作局部浸润麻醉。(二)常用全身麻醉剂：乙醚 乙醚吸入法是最常用的麻醉方法,各种动物都可应用
实验动物骨髓的采集法
采集骨髓一般选择胸骨、肋骨、髁骨、胫骨和股骨等造血功能活跃的骨组织。猴、犬、羊等大动物的骨髓的采集用活体穿刺取骨髓的方法；大、小鼠等小动物骨头小难穿刺，只能剖杀后采胸骨、股骨的骨髓。（一）猴、犬、羊等的骨髓采集法1. 骨髓穿刺点定位（1）胸骨：穿刺部位在胸骨中线，胸骨体与胸骨柄连接处，或选胸骨上1/
实验动物组织标本的制备实验_解剖法
通常选用家兔、豚鼠、大白鼠或小白鼠等动物，禁食24 小时。击头致昏，以避免麻醉或失血对胃肠道机能的影响。立即打开腹腔，取出所需的胃、肠、胆囊等。去除附着的系膜或脂肪等组织。迅速放入充氧（或95%O2+5%CO2 ）保温（37 ℃）的营养液中，并以注射器用营养液将管腔内的食物残渣清洗干净。实验材料家兔
动物颅脑给药—套管给药实验的操作方法
在脑科学基础研究领域中，颅脑给药已经成为大多数动物实验的重要环节。根据实验设计，常见有三种给药方式：单次注射给药、多次反复给药和持续释放给药。前者通常采用立体定位仪配合微量注射泵给药，第二种通常采用套管给药，第三种通常通过植入式缓释泵给药。 本文主要介绍套管给药，它主要用于给小鼠、大鼠、猴等实验动物
青岛成立首家玻腔注药中心
随着创新药物的研发、推广和应用，玻璃体腔注药在多种眼底疾病治疗中发挥着越来越重要的作用。传统的玻腔注药住院和治疗模式因流程繁琐、等待时间久，让很多患者望而却步。日前，青岛眼科医院成立了青岛首家玻腔注药中心，“一站式”服务让眼底诊疗更规范、高效、便捷。 一站式玻璃体腔注药中心采用“日间诊疗”模式
病毒的培养方法实验——动物接种法
实验方法原理注意选择动物种类，年龄。按病毒侵袭部位的不同，选择适宜的接种途径，例如脑炎病毒以注射脑内最敏感。接种后经一定潜伏期，动物发病或死亡即进行解剖。根据动物的症状表现，器官病理改变，受染脏器组织悬液能在同种动物进行连续传代，并排除其他微生物污染的可能性等，即可证明有病毒的增殖。实验材料小白鼠实
动物血液采集实验——豚鼠心脏采血法
实验材料豚鼠仪器、耗材75％ 酒精棉花碘酒棉花剪刀5 ml 灭菌注射器针头灭菌小试管烧杯（盛自来水用）实验步骤1. 助手用左手从背面夹持动物颈部，将动物提起，并翻转身，使腹部向上，用大拇指钩住下颌部，食指与中指夹住其左前腿并拉直，便其左胸部露出，右手在下方将动物托起，手心向上，并用手指固定两条后腿。
动物血液采集实验——家兔心脏采血法
实验材料家兔仪器、耗材75％ 酒精棉花碘酒棉花消毐干棉花20 ml 灭菌注射器9 号针头家兔仰卧固定板或动物手术台实验步骤采血方法除固定动物以外，与豚鼠采心血基本相同。1. 将家兔仰卧于动物手术台或一固定板上，用绳缚其四肢，使其不能活动。2. 在家兔左胸侧剪毛，再分别用碘酒和乙酵消毒该处皮肤。3.
常用小型实验动物灌胃给药技术方法介绍
随着生命科学技术的发展，动物实验已成为医学实验研究的基本方法。根据实验研究目的、实验动物的种类及药物剂型、剂量的不同，要求对实验动物实施不同的给药方法。尤其对于药物的毒理、药效的研究和药物剂量的确定，经口灌胃给药方法是一种重要的途径。在国内文献上却很少见到具体的描述。在此，作者将在实践中摸索出的一套
动物血液采集实验——家兔耳静脉放血法
实验材料家兔仪器、耗材75％ 酒精棉花消毐干棉花凡士林刀片或解剖刀剪刀灭菌小试管特制家兔木箱实验步骤1. 将家兔放在特制木盒内，使兔头伸出在外。2. 在耳背外侧边缘剃毛（如图 1）。图 1 家兔耳边缘静脉采血切口图3. 用酒精棉花消毒剃毛区。并磨擦该区的边缘静脉上方的皮肤，使静脉扩张充血。4. 在剃
动物血液采集实验——小鼠摘除眼球采血法
实验材料小鼠仪器、耗材小镊子灭菌小试管实验步骤1. 抓取小鼠使眼球突出同「小鼠眼眶后血管丛取血法」。2. 用一小镊子将突出的眼球摘除。3. 立刻将眼眶向下，使血液滴入小试管内。4. 用颈椎脱臼法处死小鼠：左手拉住鼠尾，使小鼠横爬在搪瓷盘上，右手用一镊子夹住鼠颈向右一拉。此法比「小鼠眼眶后血管丛取血法
青岛眼科医院玻腔注药中心成立
原文地址：http://news.sciencenet.cn/htmlnews/2023/7/504121.shtm近日，一站式玻腔注药中心华东地区联盟会暨青岛眼科医院玻腔注药中心成立大会在青岛举办。会上宣布青岛眼科医院一站式玻腔注药中心正式启用，并加入玻腔注药中心华东地区联盟会，获授全国“一站式玻
实验动物全身麻醉的方法
全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生
动物实验与动物仪器
一、动物实验的主要目的 医疗器械的动物试验的主要目的是研究医疗器械的安全性，通常医学研究中的动物试验研究的主体可能是一种新诊治方法和原理，或一种新的药物的作用机理等等，它的主要研究目的是机理、有效性和安全性，这个研究可能与器械的使用存在联系，也可能不存在联系，且研究中可能没有涉及到植入或与
实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液，最后取平均值。(2) 导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上
实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
盐酸右美托咪定注射液的药理毒理
右美托咪定是一种相对选择性α2-肾上腺素受体激动剂，具有镇静作用。动物缓慢静脉输注右美托咪定10～300μg/kg时可见对α2-肾上腺素受体的选择性作用，但在较高剂量下(≥1000μg/kg)缓慢静脉输注或快速静脉注射给药时对α1和α2-受体均有作用。 毒理研究 遗传毒性 右美托咪定Ames试验
大小鼠的注射技术指导
尾静脉注射是大鼠最常用的给药方式之一，然而有时候如药代动力学实验我们需要在尾静脉进行多次血液样品的采集，那么若进行尾静脉给药便不可取；另外有时候不少同学经常把尾巴都快打烂了，却依然没成功，此时我们就得寻找新的静脉继续注射了。往期我们已介绍了大鼠的尾静脉注射方法，本期就为大家介绍一条新的又很实用的静脉
新休眠诱导法动物实验获得成功
日本理化学研究所砂川玄志郎研究员的研究小组通过小鼠实验，开发出了一种主动性低代谢“休眠”诱导法。 松鼠和熊等冬眠动物进入冬眠低代谢状态后，基础代谢会下降到平时的1%至25%左右，通过减少能量消耗来熬过冬天的饥饿期。通常情况下，它们一旦从冬眠中苏醒即可开始正常活动。如果在人或人体器官能够“冬眠
动物基因组DNA－的分离纯化实验——盐溶法
本实验目的是掌握盐溶法大量制备动物基因组DNA 的基本原理和方法，根据核糖核蛋白与脱氧核糖核蛋白在一定浓度的氯化钠溶液中的溶解度不同进行分离, 然后用蛋白质变性沉淀剂去除蛋白,使核酸释放出来, 再利用核酸不溶于乙醇的性质将核酸析出, 达到分离提纯的目的。实验方法原理根据核糖核蛋白与脱氧核糖核蛋白在一