实验动物染毒途径和技术4
（三)经皮肤染毒> 经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：①硫化钠8e溶于l00ml水中；①硫化钠3份、洗衣粉l份、淀粉7份加水调成糊状，用脱毛剂前，先剪去脱毛部位的桩毛，注意不可用水浸被毛，以防止脱毛剂顺被毛到达毛根深郎损伤皮肤．用镊子夹棉球或纱布团蘸脱毛荆徐抹在已剪去被毛的部位，3~5min后用温水洗去脱下的毛和脱毛剂． 脱毛的要求是不应损伤脱毛区的表皮，脱毛区面积不大于动物体裹面积的l0％。于脱毛后Z4h涂抹一定量受试物，盖上2～4层纱布和一层玻璃纸或塑料薄膜．再用无刺激性的胶布固定，接触规定的时间。如要求重复接触受试化学物，一般间隔l周再剪剃毛1次。 ※<(四)注......阅读全文
实验动物染毒途径和技术4
（三)经皮肤染毒> 经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：
实验动物染毒途径和技术3
经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：①硫
实验动物染毒途径和技术2
实验动物 呼吸量 最低呼吸量 静式染毒2h可放动物数
实验动物染毒途径和技术1
在毒理学试验中染毒途径的选择，应尽可能模拟人在接触该受试物的方式。最常用的染毒途径为经口、经呼吸道；经皮及注射途径。染毒的途径和方法根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。不同途径的吸收速率，一般是静脉注射>吸入>肌内注射>腹腔注射>皮下注射>经口>皮内注射>其他途径(如经皮等)
关于急性毒性试验的实验动物和染毒方法
(一) 实验动物选择 在卫生毒理学领域中，体内试验以实验动物为研究对象，最终是为了阐明受试 外来化合物对人的急性危害性质和危害强度。所以选择实验动物时，要求在其接触化合物之后的 毒性反应，应当与人接触该化合物的毒性反应基本一致，虽然利用任何一种或几种实验动物的急性毒性结果向人外推都必须十分慎重
动物实验基本技术4
三、实验动物的准备本文主要叙述制备转基因鼠的实验程序。(一)不育雄性公鼠:结扎公鼠与母鼠交配以后产生假孕母鼠。受结扎的公鼠需8周以上，对种系无特殊要求。在正式实验前，结扎公鼠需与性成熟的雌性小鼠交配，反复交配两次或三次，经检查雌体有阴道栓，但均不怀孕产仔，则证明结扎成功。结扎公鼠使母鼠产生阴道栓的能
急性毒性试验实验动物染毒方法
1.经口(胃肠道)接触目的是研究外来化合物能否经胃肠道吸收及求出经口接触的致死剂量(LD50)等。由于外来化合物可以污染饮水及食物,因此,此种染毒方式在卫生毒理学中占有重要地位。2. 灌胃是将液态受试化合物或固态、气态化合物溶于某种溶剂中,配制成一定浓度,装入注射器等定量容器,经过导管注入胃内。在每
关于急性毒性试验的实验动物和染毒方法介绍
(一) 急性毒性试验的实验动物选择 在卫生毒理学领域中，体内试验以实验动物为研究对象，最终是为了阐明受试外来化合物对人的急性危害性质和危害强度。所以选择实验动物时，要求在其接触化合物之后的毒性反应，应当与人接触该化合物的毒性反应基本一致，虽然利用任何一种或几种实验动物的急性毒性结果向人外推都必
实验动物给药途径和方法
（六）淋巴囊注射蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入
实验动物给药途径和方法
在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚
动物实验的接种途径和方法
动物实验的接种途径和方法是检验技师考试的内容，医学教育网搜集整理相关内容供大家参考。 动物实验的接种途径和方法包括： ①皮内接种：通常以背部皮肤为宜。 ②皮下接种：选用腹壁、背部或腹股沟等处。 ③肌肉接种：一般选用臀部和大腿部肌肉，若为禽类以胸部肌肉为宜。 ④静脉接种：家兔以耳静脉外缘为
急性毒性试验的实验动物染毒方法介绍
1、急性毒性试验的实验动物染毒方法— 经口(胃肠道)接触目的是研究外来化合物能否经胃肠道吸收及求出经口接触的致死剂量(LD50)等。由于外来化合物可以污染饮水及食物，因此，此种染毒方式在卫生毒理学中占有重要地位。 灌胃是将液态受试化合物或固态、气态化合物溶于某种溶剂中，配制成一定浓度，装入注
实验动物接种途径和接种方法试验
实验方法原理 实验材料 实验动物试剂、试剂盒 病毒试剂仪器、耗材 注射器实验步骤 皮下接种。注射时轻轻捏起皮肤，手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外侧注射。皮下接种多用于观察
实验动物接种途径和接种方法试验——静脉接种
实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤静脉接种。可造成病毒全身性感染，可观察病毒的致病性或机体对病毒的清除机制。(1) 小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有 3 根，左右两侧和背侧各 1根．两侧尾静脉比较容易固定，常被采用。(2) 豚鼠的静脉注射：一般采用前肢皮
常用实验动物介绍4
二、大鼠近交品系特征及用途 1.ACI：(1)遗传背景：①起源：1926年由哥仑比亚大学肿瘤研究所Curtis和Dunning 培育。1945年Heston繁殖30代，1950年美国NIH繁殖到41代，最后由Dunning(或NIH)育成。 近交代数F>100。②毛色和毛色基因：黑色，腹部及脚白
实验动物接种途径和接种方法试验——颅内接种法
实验方法原理实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤颅内接种法。将临床标本或特定的病毒直接接种于动物脑内，使动物形成实验性中枢神经系统感染。(1) 小白鼠：接种时用拇指与食指固定鼠头，消毒注射部位，于眼后角、耳前线和颅中线构成的三角区域中间进行注射，进针 2-3 mm。注射量乳鼠
动物实验技术1
实验动物常用作病原微生物的分离和鉴定，进行动物接种实验应选择易感性高、健康的动物。常用的动物有小鼠、豚鼠和家兔。根据实验要求可通过皮下、皮内、肌肉、腹腔、静脉等途径注射。感染动物死亡后，必要时进行尸体解剖并作病原体的检查。 一、实验动物接种法 （一）小白鼠接种法 【
动物实验技术2
2．于第①、②、③管内分别加乙型溶血性链球菌培养物、四联球菌培养物、生理盐水各0.5m1。 3．上述3支试管每管加入5%氯化钙0.2ml，摇匀，置37℃水浴10min，待血液凝固，再继续37℃水浴约30min，观察结果。 【结果】 l．观察时，可将小试管慢慢倾斜至30°
动物实验技术1
实验动物常用作病原微生物的分离和鉴定，进行动物接种实验应选择易感性高、健康的动物。常用的动物有小鼠、豚鼠和家兔。根据实验要求可通过皮下、皮内、肌肉、腹腔、静脉等途径注射。感染动物死亡后，必要时进行尸体解剖并作病原体的检查。一、实验动物接种法（一）小白鼠接种法【材料】1．小白鼠。2．无菌注射器(1ml
碳4途径（C4pathway）
亦称四碳二羧酸循环（ C4 -dicarboxylic cycle）。光合碳同化的辅助途径。起源于热带及亚热带的一些植物，在其光合作用的暗反应中，二氧化碳首次被固定的接受体是磷酸烯醇式丙酮酸（ PEP）。在 PEP羧化酶催化下形成 C4 -羧酸——草酰乙酸。在 NADP-苹果酸脱氢酶催化下，还原为苹
实验动物接种途径和接种方法——皮下接种法及腹腔接种法
实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤皮下接种。注射时轻轻捏起皮肤，手持注射器将针头刺入，固定后即可进行注射。一般小鼠在背部或前肢腋下，大鼠在背部或侧下腹部；豚鼠在后大腿内侧、背部等脂肪少的部位；兔在背部或耳根部注射；狗多在大腿外侧注射。皮下接种多用于观察动物病毒感染后的免疫学
动物实验基本技术2
第五节 实验动物的采血法实验研究中，经常要采集实验动物的血液进行常规质量检测、细胞学实验或进行生物化学分析，故必须掌握正确的采集血液的技术。采血方法的选择，主要决定于实验的目的和所需血量以及动物种类。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少时常用本法，如作红、白细胞计数、血红蛋白测定、制作
动物实验基本技术3
第七节 实验动物的处死当实验中途停止或结束时，实验者应站在实验动物的立场上以人道的原则去处置动物，原则上不给实验动物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安乐死。安乐死是指实验动物在没有痛苦感觉的情况下死去。实验动物安乐死方法的选择取决于动物的种类与研究的课题。一、蛙 类常用金属探针插入枕骨大孔,破坏脑脊髓的
动物实验基本技术2
第三节 实验动物的麻醉方法 麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。 一、常用的麻醉药 (一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％
动物实验基本技术2
第五节 实验动物的采血法实验研究中，经常要采集实验动物的血液进行常规质量检测、细胞学实验或进行生物化学分析，故必须掌握正确的采集血液的技术。采血方法的选择，主要决定于实验的目的和所需血量以及动物种类。一、大鼠、小鼠的采血方法(一)剪尾采血：需血量很少时常用本法，如作红、白细胞计数、血红蛋白测定、制作
动物实验基本技术1
第一节 实验动物的抓取和固定在进行实验时，为了不损伤动物的健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，首先要限制动物的活动，使动物处于安静状态，工作人员必须掌握合理的抓取固定方法。抓取动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解。操作时要小心仔细、大胆敏捷、熟练准确、不能粗暴，不能恐吓动物，同时，要爱惜动物
动物实验基本技术2
第三节 实验动物的麻醉方法麻醉(anesthesia)的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。一、常用的麻醉药(一)常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组
动物实验基本技术1
第一节 实验动物的抓取和固定在进行实验时，为了不损伤动物的健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，首先要限制动物的活动，使动物处于安静状态，工作人员必须掌握合理的抓取固定方法。抓取动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解。操作时要小心仔细、大胆敏捷、熟练准确、不能粗暴，不能恐吓动物，同时，要爱惜动物
动物实验基本技术3
第七节 实验动物的处死当实验中途停止或结束时，实验者应站在实验动物的立场上以人道的原则去处置动物，原则上不给实验动物任何恐怖和痛苦，也就是要施行安乐死。安乐死是指实验动物在没有痛苦感觉的情况下死去。实验动物安乐死方法的选择取决于动物的种类与研究的课题。一、蛙 类常用金属探针插入枕骨大孔,破坏脑脊髓的
动物实验基本操作技术之一“实验动物抓取与固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在实验台上，当其向前爬行时，左手抓住两耳及头颈部皮肤，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夹住肢体固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手轻轻抓住大鼠尾部向后轻拉，左手抓紧鼠两耳及头颈部皮肤，并将其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固