动物实验基本操作技术之一“实验动物抓取与固定”
（一）小鼠用右手提起小鼠尾部，放在实验台上，当其向前爬行时，左手抓住两耳及头颈部皮肤，再置小鼠于左手心，拉直四肢并用手指夹住肢体固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法（二）大鼠右手轻轻抓住大鼠尾部向后轻拉，左手抓紧鼠两耳及头颈部皮肤，并将其固定在左手中，右手可行注射或其它操作。大鼠固定器及固定器固定法（三）兔1、 正确的抓取兔的方法如下：说明：1、可伤两肾；2、可造成皮下出血；3、可伤两耳；4、颈部皮肤厚可抓；5、用手拖住身体。4和5为正确的方法。2、固定兔的方法依实验需要而定。分兔台固定、马蹄铁固定和立体定位仪固定等。①兔台固定，将兔仰卧，四肢用粗线绳一端缚扎于前后肢的踝关节以上部位，两前肢线绳在背后交叉穿过，分别固定在兔台两侧；两后肢左右分开，固定在兔台尾端。兔头可用特制的兔头夹固定。家兔固定台固定方法②进行头颅部实验时，常用马蹄铁或立体定位仪进行固定。先剪去两侧眼眶下部的一小块皮毛，将马蹄铁两侧......阅读全文
动物实验基本操作技术之三“年龄的大致判断”
一、大、小鼠1、根据形态鉴定日龄（大、小情况基本一样） 2、根据体重鉴定日龄⑴ 小鼠日龄与体重的对应⑵ 大鼠日龄与体重的对应二、豚鼠一般老年豚鼠牙齿和趾爪长，被毛稀疏无光泽，眼神呆滞，行动迟缓。而年轻豚鼠牙齿短白，爪短软，眼睛圆亮，行动敏捷，被毛有光泽，且紧贴身体。同样，也可根据体重来推断大致年龄。
动物实验之大小鼠固定篇
相信经常与大鼠、小鼠打交道的老师都碰到过这样的情况：大鼠、小鼠不配合，导致我们无法进行相应的操作，比如注射，采血等，又比如被大鼠、小鼠咬住了，等到回过神来，发现大鼠或者小鼠已经重重的掉到地上或者实验台上，诸如此类的情况相信还有很多。这些都是我们自己和我们的大鼠、小鼠的本能反应，那如何操作能让我们
动物实验技术2
2．于第①、②、③管内分别加乙型溶血性链球菌培养物、四联球菌培养物、生理盐水各0.5m1。 3．上述3支试管每管加入5%氯化钙0.2ml，摇匀，置37℃水浴10min，待血液凝固，再继续37℃水浴约30min，观察结果。 【结果】 l．观察时，可将小试管慢慢倾斜至30°
动物实验技术1
实验动物常用作病原微生物的分离和鉴定，进行动物接种实验应选择易感性高、健康的动物。常用的动物有小鼠、豚鼠和家兔。根据实验要求可通过皮下、皮内、肌肉、腹腔、静脉等途径注射。感染动物死亡后，必要时进行尸体解剖并作病原体的检查。一、实验动物接种法（一）小白鼠接种法【材料】1．小白鼠。2．无菌注射器(1ml
动物实验技术1
实验动物常用作病原微生物的分离和鉴定，进行动物接种实验应选择易感性高、健康的动物。常用的动物有小鼠、豚鼠和家兔。根据实验要求可通过皮下、皮内、肌肉、腹腔、静脉等途径注射。感染动物死亡后，必要时进行尸体解剖并作病原体的检查。 一、实验动物接种法 （一）小白鼠接种法 【
实验动物麻醉操作讲解
麻醉（Anesthesia）：从爱护动物的观点出发，为减轻其实验痛苦，利用物理或化学的方法，使动物的全身或局部暂时失去痛觉或痛觉迟钝，减少动物的挣扎和保持安静，以保证实验操作的进行。麻醉的分类：根据麻醉范围主要分为全身麻醉和局部麻醉，全身麻醉又分为吸入麻醉和非吸入麻醉。 1. 全身麻醉：吸入麻醉：又
实验动物环境分类与基本要求
按照空气净化的控制程度,实验动物环境分为普通环境、屏障环境和隔离环境。(1)普通环境符合实验动物居住的基本要求,控制人员、物品和动物出入,不能完全控制传染因子,适用于饲育普通级实验动物。普通环境一般为单走廊专用房舍,通常分为三个区域:前区,包括检疫室、办公室、休息室等;控制区,包括动物饲育室或动物实
小白鼠抓取和固定实验
实验材料小鼠实验步骤小白鼠较温和，一般不会咬人，不需要戴手套捕捉，先用右手抓住鼠尾提起，置于鼠笼或实验台上，用左手的拇指、食指和中指抓住小鼠两耳后项背部皮毛，以无名指及小指夹住鼠尾即可（图1）展开
小白鼠抓取和固定实验
实验材料 小鼠实验步骤 小白鼠较温和，一般不会咬人，不需要戴手套捕捉，先用右手抓住鼠尾提起，置于鼠笼或实验台上，用左手的拇指、食指和中指抓住小鼠两耳后项背部皮毛，以无名指及小指夹住鼠尾即可。
实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法：此法较常用，适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液，最后取平均值。(2) 导尿法：常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后，固定于手术台上
实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集：通常采取脊髓穿刺法，穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定，头尾部尽量弯向腰部，去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤，腰穿针垂直刺入，当有落空感及动物的后肢跳动时，针已达椎管内，抽去针芯，即
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
动物实验技术：转基因小鼠制备实验
1、 选取7~8周龄雌性小鼠，阴道口封闭，作为供体，下午3:00左右，每只小鼠腹腔注射PMSG（10 IU）。2、 47~48小时后，每只小鼠腹腔注射HCG（0.8 IU），并与正常公鼠合笼；另取数只适龄母鼠（2月龄以上）作为受体，阴道口潮红，与结扎公鼠合笼。3、第二天上午9:00前观察供体、受体，
实验动物实验标本的采集实验——实验动物腹水的采集
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤抽取大鼠、小鼠的腹水时，抓取固定动物，使动物腹部朝上，消毒皮肤，针头在腹股沟和腹中线之间刺人腹腔，腹压高时腹水自然流出，腹水少时可用注射器抽取。
实验动物生理生化指标检测操作
1. 实验小鼠血清取材要求采血后，立即将血液放入1.5 mL离心管(不需加抗凝剂或防腐剂)。让血液在室温下静置30 - 60分钟。在相对离心力（relative centrifugal force ，RCF）14000g下离心血样10 - 15分钟，用移液管吸取分离血清，并转移到干净的离心管
动物实验时动物的选择
为了获得理想的实验结果，必须根据实验目的选择适宜的观察对象，在选择动物时，需考虑如下因素： 种属的选择不同种属的动物对同一疾病病因刺激的反应程度会有很大的差异。在选择实验动物时，尽可能选择对刺激因素较为敏感且与人类接近的种属。例如在进行发热实验时，宜首选家兔：在进行过敏反应和变态反应实验时，宜首选豚
实验室实验动物设施基本要求
(1)选址宜选在环境空气质量及自然环境条件较好的区域。应避开自然疫源地;生产设施宜远离可能产生交叉感染的动物饲养场所;宜远离有严重空气污染、振动或噪声干扰的铁路、码头、飞机场、交通要道、工厂贮仓、堆场等区域。动物生物安全实验室与生活区的距离应符合“GB 19489 实验室 生物安全通用要求”和“GB
SSI实验动物能量代谢系统助力动物营养与健康实验研究
动物能量代谢测量系统，主要包括大鼠代谢笼舍、气流发生控制与切换、二次抽样单元、气体分析仪、数据采集器、数据记录及分析软件等模块，广泛用于营养学、呼吸生理学、转化医学、内分泌代谢、心血管等生物医学科学研究。越来越多的证据表明，能量代谢率可能是人类健康状况的一个信息性标志。在能量周转的不同指标中，基础（
动物免疫实验
实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应，通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面，加入抗血清，抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物，洗去未结合抗体，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗（抗体的抗体），二抗与抗体结合，洗去未结合二抗，加底物显色剂显色，在一定波长下测定
动物免疫实验
实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应，通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面，加入抗血清，抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物，洗去未结合抗体，然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗（抗体的抗体），二抗与抗体结合，洗去未结合二抗，加底物显色剂显色，在一定波长下测定
实验动物的外科技术及急救实验
实验步骤一、实验动物常用的外科基本技术 （一）基本操作技术 1. 切开 根据实验要求确定手术切口的部位及大小。切开时先绷紧皮肤，将刀刃与皮肤垂直，用力要得当，一次切开皮肤全层，切缝整齐而不偏斜。切开皮肤及皮下组织时，一般要求按解剖层次逐层切开，注意止血，避免损伤深层的重要组织器官（图1
实验动物标记实验
实验材料 兔子 小鼠试剂、试剂盒 3%～5%苦味酸 0.5%中性品红 2%硝酸银实验步骤 1. 染色法 适用于小动物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上，以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有：3%～5%苦味酸溶液（黄色）、0.5%中性品红（红色）、2%硝酸银（咖啡色）
实验动物标记实验
实验材料兔子 小鼠试剂、试剂盒3%～5%苦味酸 0.5%中性品红 2%硝酸银实验步骤1. 染色法 适用于小动物，如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上，以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有：3%～5%苦味酸溶液（黄色）、0.5%中性品红（红色）、2%硝酸银（咖啡色）。标记的原则是
啮齿类实验动物——实验动物兽医护理
实验动物兽医护理（上篇）上期小华介绍了很多动物福利的内容，那么实验动物的福利该如何具体实施？随着全球实验动物行业的发展和规范，这中间对于兽医的要求越来越高，起到与IACUC（实验动物管理与使用委员会）同等重要的监督作用。这期小华将跟您聊一聊实验动物的兽医护理在实验动物福利的具体施行方面应注意的问题。
药理毒理动物实验技术服务|实验技术服务
测序实验流程：药理毒理动物实验服务供应人elisa试剂盒、大鼠elisa试剂盒、小鼠elisa试剂盒、兔elisa试剂盒等。标本有：血清、血浆、细胞上清液、尿液、体液、灌洗液、脑脊髓、心房水、胸房水、组织等。种属：人、大鼠、小鼠、兔子、猪、犬、猴、马、牛、羊、鸡、鸭、鱼等。常用生化试剂作用： 1
实验动物染毒途径和技术1
在毒理学试验中染毒途径的选择，应尽可能模拟人在接触该受试物的方式。最常用的染毒途径为经口、经呼吸道；经皮及注射途径。染毒的途径和方法根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情况确定。不同途径的吸收速率，一般是静脉注射>吸入>肌内注射>腹腔注射>皮下注射>经口>皮内注射>其他途径(如经皮等)
实验动物染毒途径和技术2
实验动物 呼吸量 最低呼吸量 静式染毒2h可放动物数
实验动物染毒途径和技术4
（三)经皮肤染毒> 经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：
实验动物染毒途径和技术3
经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：①硫
实验动物实验标本的采集实验
(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。②眼眶后静脉丛采血：一手拇指及食指抓住鼠两耳之