电泳缓冲液、染料和凝胶加样液的配置
电泳缓冲液50×Tris-乙酸（TAE）缓冲液成分及终浓度 配制1L溶液各成分的用量 2mol/L Tris碱1mol/L 乙酸100 mmol/L EDTA水 242g57.1 ml的冰乙酸（17.4 mol/L）200ml的0.5 mol/L EDTA（pH 8.0）补足1L 5×Tris-硼酸（TBE）缓冲液成分及终浓度 配制1L溶液各成分的用量 445 mmol/L Tris碱445 mmol/L 硼酸盐10 mmol/L EDTA水 54g27.5g 硼酸20 ml的0.5 mol/L EDTA（pH 8.0）补足1L 染料1％溴酚蓝（bromophenol blue）加1g水溶性钠型溴酚蓝于100ml水中，搅拌或涡旋混合直到完全溶解。1％二甲苯青FF（xylene cyanole FF）溶解1g二甲苯青FF于足量水中，定容到100ml。10mg/ml的溴化乙锭（ethidium......阅读全文
电泳缓冲液、染料和凝胶加样液的配置
电泳缓冲液50×Tris-乙酸（TAE）缓冲液成分及终浓度 配制1L溶液各成分的用量 2mol/L Tris碱1mol/L 乙酸100 mmol/L EDTA水 242g57.1 ml的冰乙酸（17.4 mol/L）200ml的0.5 mol/L EDTA（pH 8.0）补足1L 5×Tris-硼酸
电泳缓冲液、染料和凝胶加样液
50×Tris-乙酸（TAE）缓冲液成分及终浓度配制1L溶液各成分的用量2mol/L Tris碱1mol/L 乙酸100 mmol/L EDTA水 242g57.1 ml的冰乙酸（17.4 mol/L）200ml的0.5 mol/L EDTA（pH 8.0）补足1L 5×Tris-硼酸（TBE）缓冲
凝胶层析的加样洗脱
凝胶床经过平衡后，在床顶部留下数亳升洗脱液使凝胶床饱和，再用滴管加入样品。一般样品体积不大于凝胶总床体积的5%-10%。样品浓度与分配系数无关，故样品浓度可以提高，但分子量较大的物质，溶液的粘度将随浓度增加而增大，使分子运动受限，故样品与洗脱液的相对粘度不得超过1.5-2。样品加入后打开流出口，使样
凝胶层析的加样洗脱
凝胶床经过平衡后，在床顶部留下数亳升洗脱液使凝胶床饱和，再用滴管加入样品。一般样品体积不大于凝胶总床体积的5%-10%。样品浓度与分配系数无关，故样品浓度可以提高，但分子量较大的物质，溶液的粘度将随浓度增加而增大，使分子运动受限，故样品与洗脱液的相对粘度不得超过1.5-2。样品加入后打开流出口，使样
实验常用试剂的制备与储藏（三）
二.电泳缓冲液、染料和凝胶加样液 电泳缓冲液 50×Tris-乙酸（TAE）缓冲液 5×Tris-硼酸（TBE）缓冲液 染料 1％溴酚蓝（bromophenol blue） 加1g水溶性钠型溴酚蓝于100ml水中，搅拌或涡旋混合直到完全溶解。 1％二甲苯青FF（xylene
组蛋白的Triton/乙酸/尿素聚丙烯酰胺凝胶电泳分析实验
实验方法原理 试剂、试剂盒 冰醋酸TEMED （NNN’N’-四甲基乙二胺）尿素10％ 过硫酸铵（APS; 配胶时新鲜配置）10％ Triton X-100 （蛋白级；Calbiochem）63. 5％ 丙烯酰胺 0. 4％ 亚甲双丙烯酰胺电泳缓冲液（0.9 mol L 乙酸）还原剂（2-巯
组蛋白的Triton/乙酸/尿素聚丙烯酰胺凝胶电泳分析实验
试剂、试剂盒冰醋酸TEMED （NNN’N’-四甲基乙二胺）尿素10％ 过硫酸铵（APS; 配胶时新鲜配置）10％ Triton X-100 （蛋白级；Calbiochem）63. 5％ 丙烯酰胺 0. 4％ 亚甲双丙烯酰胺电泳缓冲液（0.9 mol L 乙酸）还原剂（2-巯基乙胺）仪器、耗材抽滤瓶
核酸凝胶电泳观察法
实验原理：琼脂糖是海藻中提取的线状高聚物，不同浓度的琼脂糖密度不同，一般PCR产物使用2%浓度，0.5Kb-10Kb的DNA使用1%浓度，基因组DNA使用0.3%-0.7%浓度；不同大小的核酸在同一浓度的凝胶中迁移率不同，因为分子越大其受琼脂糖的阻力越大，迁移率与碱基对的对数值成反比；同分子量不同构
电泳缓冲液
缓冲液在电泳过程中的一个作用是维持合适的pH。电泳时正极与负极都会发生电解反应，正极发生的是氧化反应（4OH--4e->2H2O+O2)，负极发生的是还原反应（4H++4e->2H2)，长时间的电泳将使正极变酸，负极变碱。一个好的缓冲系统应有较强的缓冲能力，是溶液两极的pH保持基本不变。 电泳缓冲液
蛋白质SDS－聚丙烯酰胺凝胶电泳2
（4）10% 过硫酸铵，5ml（0.5g过硫酸铵, 加5ml蒸馏水, 新鲜配置），-20℃保存一个月左右。（5）10% （w/v）SDS，10g SDS加蒸馏水100ml, 室温保存。（6）10% TEMED 0.1ml TEMED , 加0.9 ml蒸馏水。（7） 2×上样缓冲液（10ml）：0.
琼脂糖凝胶电泳
琼脂糖凝胶电泳1. 用封边带封住塑料托盘开放的两边或清洁干燥的玻璃板的边缘形成一个模具，置一个水平支架上。2. 配制足量的电泳缓冲液（1×TAE或0.5×TBE）用以灌满电泳槽和配制凝胶。 配胶和灌满电泳槽使用同一批缓冲液。3. 根据欲分离DNA片段大小用电泳缓冲液配制
电泳中为什么加入电泳缓冲液和加样缓冲液
电泳缓冲液的主要作用是使胶的导电性和体系的一致,这样跑出的条带才回一致；加样缓冲液的主要作用是使PCR产物与其混合,使DNA沉于加样孔的底部,防止DNA跑出来.
琼脂糖凝胶电泳
实验方法原理 琼脂糖是 D- 和 L- 半乳糖残基通过 α (1→3)和 β (1→4) 糖苷键交替构成的线状聚合物。L- 半乳糖残基在 3 和 6 位之间形成脱水连接。琼脂糖链形成螺旋纤维，后者再聚合成半径 20~30 nm 的超螺旋结构。实验材料 DNA 样品DNA 大小标准品试剂、试剂盒 琼脂
RNA的甲醛变性电泳实验
实验方法原理 用溴化乙锭等荧光染料示踪的核酸电泳结果可用于判定核酸的纯度。由于DNA分子较RNA分子大许多，电泳迁移率低；而RNA中以rRNA最多，占到80%~85%，tRNA及核内小分子RNA占15%~20%，mRNA占1%~5%。故总RNA电泳后可呈现特征性的三条带。在原核生物为明显可见的23S
琼脂糖凝胶电泳
实验方法原理 琼脂糖是 D- 和 L- 半乳糖残基通过 α (1→3)和 β (1→4) 糖苷键交替构成的线状聚合物。L- 半乳糖残基在 3 和 6 位之间形成脱水连接。琼脂糖链形成螺旋纤维，后者再聚合成半径 20~30 nm 的超螺旋结构。
琼脂糖凝胶电泳
琼脂糖凝胶电泳可以用于：（1）检测PCR结果；（2）分离不同大小的DNA条带。实验方法原理琼脂糖是 D- 和 L- 半乳糖残基通过 α (1→3)和 β (1→4) 糖苷键交替构成的线状聚合物。L- 半乳糖残基在 3 和 6 位之间形成脱水连接。琼脂糖链形成螺旋纤维，后者再聚合成半径 20~30 n
电泳缓冲液的概述
电泳缓冲液是核酸、蛋白质凝胶电泳系统的一个重要组成， 是电泳场中的导体，也是维持电泳系统恒定 pH值的必要条件。其成分及其离子强度影 响物质的电泳迁移率，应避免与被分离的样 品发生化学反应而改变样品的理化性质或使 其丧失生物活性。电泳缓冲液中的EDTA 可螯合Mg离子等二价阳离子，防止电泳时激
电泳缓冲液的作用
缓冲液在电泳过程中的一个作用是维持合适的pH。电泳时正极与负极都会发生电解反应，正极发生的是氧化反应（4OH--4e->2H2O+O2)，负极发生的是还原反应（4H++4e->2H2)，长时间的电泳将使正极变酸，负极变碱。一个好的缓冲系统应有较强的缓冲能力，是溶液两极的pH保持基本不变。电泳缓冲液的
电泳缓冲液的配制
Tris-乙酸（TAE）：50×浓贮存液（每升）：242g Tris 碱5 7.1ml 冰乙酸100ml 0.5mmol/L EDTA(pH8.0)使用时再稀释50倍。
凝胶过滤层析法加样应注意哪些问题
一般分为三个步骤：装柱、加样、洗脱淋洗。装柱是需要注意的是：【1】垂直放置 【2】放置产生气泡 【3】放置柱分层加样时，【1】加样前打开出口，使展开剂流出，至正好露出凝胶上平面时，立即关闭出口【2】加样时，用滴管缓缓沿柱内壁加入柱子【3】打开柱子得出口，使待分离的样品进入柱子。加样完成后，进行洗脱。
DNA电泳（agarose胶）
DNA琼脂糖凝胶电泳 实验方法原理 利用DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时具有的电荷效应和分子筛效应。电荷效应是指DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电，在电场
DNA电泳（agarose胶）
DNA电泳可用于：（1）分离不同大小的DNA片段；（2）鉴定目的DNA片段；（3）纯化和回收DNA片段。实验方法原理利用DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时具有的电荷效应和分子筛效应。电荷效应是指DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电，在电场中向正极移动，且相同数量的双链DNA几乎具有等量的净电荷，能以
RNA的甲醛变性电泳实验
RNA的甲醛变性电泳 实验方法原理 用溴化乙锭等荧光染料示踪的核酸电泳结果可用于判定核酸的纯度。由于DNA分子较RNA分子大许多，电泳迁移率低；而RNA中以
琼脂糖凝胶电泳原理
琼脂糖凝胶电泳原理 琼脂糖凝胶电泳，是以琼脂糖为介质，对不同大小的DNA 或 RNA 实现分离的一种电泳方法。琼脂糖是一种多糖，具有亲水性，但是不带电荷。 使得 DNA 在碱性条件下使其带负电荷（pH8.0 的缓冲液），在电流作用下，以琼脂糖凝胶为介质，由负极向正极移动，根据不同的 DNA
RNA的甲醛变性电泳实验
RNA的甲醛变性电泳可以用于：（1）提取样品的总RNA后，一般根据RNA的凝胶电泳图来判断RNA的质量；（2）由于RNA容易形成二级结构，因此常用甲醛变性胶来进行RNA电泳，得到的电泳图能真实反映RNA的质量状况。实验方法原理用溴化乙锭等荧光染料示踪的核酸电泳结果可用于判定核酸的纯度。由于DNA分子
RNA的琼脂糖凝胶电泳实验
实验方法原理 RNA电泳可以在变性及非变性两种条件下进行。非变性电泳使用1.0%--1.4%的凝胶，不同的RNA条带也能分开，但无法判断其分子量。只有在完全变性的条件下，RNA的泳动率才与分子量的对数呈线性关系。因此要测定RNA分子量时，一定要用变性凝胶。在需快速检测所提总RNA样品完整性时，配制普
RNA凝胶电泳试验操作步骤
1、将制胶用具用70%乙醇冲洗一遍，晾干备用。 2、制胶：称取0.5g琼脂糖粉末，加入放有36.5mL的DEPC水（蒸馏水40ml）的锥形瓶中，加热使琼脂糖完全溶解。稍冷（60~70°）却后加入5ml的10x电泳缓冲液、8.5（9）ml的甲醛（+0.5μl溴化乙锭）。然后在胶槽中灌制凝胶，插好
6×碱性凝胶上样液的配制
6×碱性凝胶上样液（室温贮存）成分及终浓度配制10ml溶液各成分用量0.3 N 氢氧化钠6 mmol/L EDTA18％聚蔗糖（400型）0.15％溴甲酚绿0.25％二甲苯青FF水300ul 10N 氢氧化钠120ul 0.5mol/L EDTA（pH8.0）1.8g15mg25mg补足到10ml
6×甘油凝胶上样液的配制
成分及终浓度配制10ml溶液各成分用量0.15％溴酚蓝0.15％二甲苯青FF5 mmol/L EDTA50％甘油水1.5ml 1％溴酚蓝1.5ml 1％二甲苯青FF100ul 0.5mol/L EDTA（pH8.0）3ml 3.9ml
6×蔗糖凝胶上样液的配制
成分及终浓度配制10ml溶液各成分用量0.15％溴酚蓝0.15％二甲苯青FF5 mmol/L EDTA40％聚蔗糖水1.5ml 1％溴酚蓝1.5ml 1％二甲苯青FF100ul 0.5mol/L EDTA（pH8.0）4g 补足到10ml