Westernblot电泳制胶时出现好多泡泡该怎么办？
有的同学跑Western-blot电泳制胶时出现好多泡泡，一时不知道什么原因，仔细分析后发现以下原因造成：1）首先，玻璃板一定要洗干净，用洗洁净洗，冲干净后再用双蒸水冲一，晾干。配胶的时候沿管壁缓缓加入各个成分，混匀的时候用手轻轻摇匀，如果用枪吹打时要缓慢且不要打到头。2）配胶时混匀要轻，尽量不产生气泡，上胶时要快，枪也不打到底。加完分离胶后用双蒸水封，待其凝固。即使在上胶时液面上有气泡，加水后也会浮上来。分离胶凝好后，倒掉里面的水，用吸水纸吸干，再加浓缩胶，迅速插梳子。3）倒胶的时候，用1ml的枪沿一侧缓缓加入，不要打到头，以免带入气泡！4）将胶在小烧杯里配好后，将电泳槽略微倾斜，将烧杯的嘴靠在玻璃边缘，直接倒进去，速度快，而且不容易产生气泡，不妨试试5）用双蒸水封时建议用200ul的枪加水，这样压力小，以免把胶冲起来！6）国产的只能是缓慢加样，别把气泡加进去。如果加进去了，小心把整个板在桌上敲敲可以让气泡浮上来。7）分离胶中......阅读全文
几种电泳用胶的区别
普通DNA的分离一般采用0.8%~1%的琼脂糖凝胶电泳测序胶有两种类型以前的310类型的测序仪用的是银染的聚丙烯酰胺凝胶电泳胶浓度一般在6~8%3130或3730之类的新型测序仪用的是毛吸管的分离胶如POP-7,POP-6,POP-4之类这种胶相当贵，自己没有配方是配不起来的都是买现成的胶south
制胶缓冲液的生理作用
制胶缓冲液：浓缩胶选择pH6.8，分离胶选择pH8.8，选择Tris－HCl系统。
水平电泳槽灌胶过程方法
水平电泳槽水平电泳槽由于一般使用琼脂糖凝胶，又称“琼脂糖”水平电泳槽；同时因凝胶需浸没在缓冲液内，也称“潜水式”或“浸没式”水平电泳槽。 水平凝胶在核酸分析方面有许多优势，是分子生物学研究的主要工具，可鉴定、分离、制备DNA，并可以测定DNA的分子量
DNA电泳（agarose胶）操作方法
一、 试剂与材料：1、 琼脂糖2、 电泳缓冲液（1×TAE）3、 10mg/ml溴化乙锭4、 上样缓冲液5、 电泳仪和水平电泳漕6、 透射紫外灯7、 胶带纸 二、 操作方法 按1～2%的琼脂糖浓度（据DNA样品分子量不同而定）配胶100ml ↓ 置于微波炉内加热搅拌，至琼脂糖完全溶解
DNA－Ladder的功能介绍
DNAladder的形成与细胞调亡密不可分 同时也是判断细胞凋亡的重要标准DNA ladder的形成是连接核小体间的DNA被切割，形成质量不同的片段，由于切割是随机的，各片段的质量不同，但都是一个核小体所含DNA的倍数，形成梯度，经过电泳，从而使分子量不同的部分形成梯度。DNA Ladder是一种即
电泳跑胶SDSPAGE的定义
SDS-PAGE即聚丙烯酰氨凝胶电泳详细资料如下：聚丙烯酰胺凝胶电泳是网状结构，具有分子筛效应，它有两种形式，一种是非变性聚丙烯酰胺凝胶，蛋白质在电泳中保持完整的状态，蛋白在其中依三种因素分开：蛋白大小，形状和电荷。而SDS-PAGE仅根据蛋白分子量亚基的不同而分离蛋白。这个技术首先是1967年由s
电泳跑胶SDSPAGE的定义
聚丙烯酰胺凝胶电泳是网状结构，具有分子筛效应，它有两种形式，一种是非变性聚丙烯酰胺凝胶，蛋白质在电泳中保持完整的状态，蛋白在其中依三种因素分开：蛋白大小，形状和电荷。而SDS-PAGE仅根据蛋白分子量亚基的不同而分离蛋白。这个技术首先是1967年由shapiro建立，他们发现在样品介质和丙烯酰胺凝胶
跑电泳时为什么总是漏胶？
1）每次电泳完后，洗净玻璃、胶条和其它附件，下次用之前，用75％酒精擦拭玻璃和胶条，能有效防漏，且利于剥胶。2）避免玻璃边缘（与胶条接触处）破损很重要，尤其是下面和胶条接触的地方3）关键是找一块很平的桌面，使两块玻璃底面非常齐就行了4）胶条一定要干，跑完电泳后，胶条就放在实验台上晾着。5）下面的胶条
western－blot电泳的胶怎么放平？
最近实验室western blot电泳的胶做出来不够平整，仔细思考一下实验步骤，总结有一下几个方面原因供大家参考1)实验用的玻璃板必须洗干净2)过硫酸铵和TEMED的加量不合适，加量较多时，凝胶凝固过快也会胶不平，最多按照分子克隆加倍3)加完试剂以后没有很好的摇匀，导致有些部位的聚合剂浓度过高，聚合
固相pH梯度等电聚焦实验——制胶
实验方法原理固相 pH 梯度凝胶是由固相 pH 梯度介质（丙烯酰胺衍生物）共价结合到聚丙烯酰胺凝胶中并形成 pH 梯度，所以制胶过程比载体两性电解质凝胶复杂。灌胶的方法与常规聚丙烯酰胺梯度凝胶和 SDS 梯度凝胶相似。高质量的凝胶介质和固相 pH 梯度介质，聚合过程以及漂洗对固相 pH 梯度凝胶是非
WesternBlot操作流程
试剂配制（一）母液1.0mol/L Tris·HCl Tris (MW121.14) 30.29g蒸馏水 200ml溶解后，用浓盐酸调pH至所需点（见下所示），最后用蒸馏水定容至250ml，高温灭菌后室温下保存。 PH HCl7.4 约17ml7.5 约16m7.6 约15ml8.0 约10ml1.
westernblot实验过程
Western，也称Western blot、Western blotting、Western印迹，是用抗体检测蛋白的重要方法之一。可按照以下步骤操作。1.收集蛋白样品(Protein sample preparation)使用细胞裂解液，对贴壁细胞、悬浮细胞或组织样品进行裂解。然后测定每个蛋白样品
浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡对电泳有影响吗？
这主要出现在初学者中，一般对电泳不会有太大的影响。前者主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致；后者是由于在解除制胶的夹子后，板未压紧而致空气进入引起的。
westernbloting电泳胶可以4度过夜吗
跑westernblot时电泳时的条带呈斜行原因很多主要可能是电泳凝胶配制时未搅拌均匀，造成条带未能直线跑完电泳凝胶中混入气泡，造成条带被挤压倾斜也可能是样品缓冲液有干扰，造成条带迁移率不统一另外上样量过大，被其他泳道挤压也有可能
蛋白电泳胶跑得不好怎么办
是不是发生在从压缩胶要进分离胶的时候？有没有发现“漏样”的现象？就是某一个或几个孔的样品在分离胶和压缩胶交界处漏了，可以看到横向的一条线不管是不是这种情况，我建议你把配胶的buffer换掉，如果还不行，上样缓冲液和lysis buffer都要换
RNA琼脂糖变性胶电泳分析
一、原理RNA分子是以单链形式存在的，但在局部仍有双链结构形成。由于这种局部双链结构的干扰，使得在非变性凝胶上对RNA分子完整性的鉴定及其分子量大小的检测，变得不十分可靠。通过加入乙二醛一二甲基亚砜、氢氧化甲基汞、甲醛等变性剂进行变性处理，使其局部双链变为单链。再进行电泳，RNA的泳动距离与其片段大
SDSPAGE蛋白电泳配胶不凝固
我分析原因是过硫酸胺失效，过硫酸氨最好是先用现配，如果怕麻烦而且跑胶的频率很高的话，那么用完之后ap要放在4℃保存，一周之后必须新配。另外可以适当的增加temed的量，从5μl提高到8μl并无大碍。如你所说，是不是就是ap失效呢，还有，我强烈建议你复查一边浓缩胶，分离胶各各buffer的组分是否配制
电泳分离技术配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS-PAGE不连续电泳中,制胶缓冲液使用的是Tris-HCL缓冲系统,浓缩胶是pH6.7,分离胶pH8.9;而电泳缓冲液使用的Tris-甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中,其pH环境呈弱酸性,因此甘氨酸解离很少,其在电场的作用下,泳动效率低;而CL离子却很高,两者之间形成导电性较低的区带,蛋白分子就介
变性条件下的凝胶电泳实验——梯度胶凝胶电泳
实验方法原理在凝胶电泳中使用丙烯酰胺梯度胶比使用线性胶有两大优点。一是在高浓度丙烯酰胺条件下可以增加蛋白质的分子筛作用，从而使低分子量蛋白质形成淸晰的条带。另一是梯度胶可以在块胶内分离分子量范围更大的蛋白质（如 5％～20％ 的凝胶可以分离 15 kDa～200 kDa 的蛋白质；而 3％～30％
western－blot常见问题及解答
常见问题及解答： 1 、两快玻璃板之间灌胶 , 胶为什么总是不平 ? 1)你的玻璃洗干净没有？应该要洗得非常干净！ 2)过硫酸铵和TEMED的加量不合适，加量相对较多，凝胶凝固过快也会胶不平，最多按照分子克隆加倍 3)加完试剂以后没有很好的摇匀，导致有些部位的聚合剂浓度过高，聚合相对较快
电泳分离技术－浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡的影响
一般对电泳不会有太大的影响。浓缩胶与分离胶断裂，主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致;板间有气泡，是由于在解除制胶的夹子后,板未压紧而致空气进入引起的。
Westernblot经验谈
哈哈,深蒙各位侠士对于兄弟的厚爱和信赖,恐怕我会令大家失望真正做western我也做的不多,不过由于效果都不是很差,所以就对于整个过程中的某些参数对于结果的影响没有深究,正所谓真正经历实验失败的人才会对具体细节理解深刻一样,但是从关于western方面的文献和资料来看,有关各个参数对于结果的影响是有
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCl缓冲系统，浓缩胶是pH=6.7，分离胶pH=8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而Cl-离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCL缓冲系统，浓缩胶是pH6.7，分离胶pH8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而CL离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分子就介
电泳切胶的一些注意事项
电泳的buffer和gel都是新制的，切胶的台子清理干净，刀片最好洗净灭菌，总之一句话就是保证切下的带没有外源dna污染。2.切胶是要把整个目的片断所在位置的胶全部回收。为了减少胶的体积，可以用相对比较薄的胶来做，只要够点样即可，也可采用薄而宽的梳子来跑胶。3.关于防护，在一般有机玻璃后就足够了，戴
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCl缓冲系统，浓缩胶是pH=6.7，分离胶pH=8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而Cl-离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分
配胶缓冲液系统对电泳的影响
在SDS－PAGE不连续电泳中，制胶缓冲液使用的是Tris－HCl缓冲系统，浓缩胶是pH=6.7，分离胶pH=8.9；而电泳缓冲液使用的Tris－甘氨酸缓冲系统。在浓缩胶中，其pH环境呈弱酸性，因此甘氨酸解离很少，其在电场的作用下，泳动效率低；而Cl-离子却很高，两者之间形成导电性较低的区带，蛋白分
蛋白质SDSPAGE电泳分离胶和浓缩胶的浓度如何确定
1,看目的蛋白的大小一般actin以下的可以跑12胶红线左右可以用12或10跑几百的很大的用6的胶小蛋白12的10的一般都能跑如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看2，看样品浓度多少，以及你想用几次通常我们是定到4微每微，总量100微，用10次如果浓度小的话定到2用5次
变性条件下的凝胶电泳实验——SDS尿素胶凝胶电泳
实验方法原理当蛋白质的电荷性质与其质量明显相关时。小分子蛋白质在 SDS－PAGE 中的迁移率便不再与它们的分子量成比例。在这种情况下通常使用 SDS－尿素胶另外，SDS－尿素聚丙烯酰胺凝胶电泳对于免疫沉淀和在低离子强度下不溶的膜蛋白是非常有用的。实验材料蛋白质溶液实验步骤1. 工作溶液1.1 溶液
电泳时胶回收和凝胶成像的注意事项
电泳时胶回收切胶的注意事项： 1. 电泳的buffer和gel都是新制的，切胶的台子清理干净，刀片好洗净，总之一句话就是保证切下的带没有外源dna污染。 2. 切胶是要把整个目的片断所在位置的胶全部回收。为了减少胶的体积，可以用相对比较薄的胶来做，只要够点样即可，也可采用薄而宽的梳