蛋白质分析技术(AnalyticalTechniquesforProtein)2
二、透析和超滤1.透析（Dialysis）：就是利用蛋白质分子不能通过半透膜（Semipermeable membrane）而小分子可以自由透过的性质，使蛋白质与小分子物质分开。作用：脱盐、无机离子和小分子物质等。透析膜：动物膜、羊皮纸、火棉胶、赛璐玢或其他材料等。2.超滤（ultrafiltration）：是利用压力和离心力，借助于超滤膜将不同分子量的物质分离的技术。Ultrafiltration的功能：纯化和浓缩（同PEG，聚乙二醇）。Ultrafiltration膜：丙烯晴、醋酸纤维素、硝酸纤维素和尼龙等。第三节 蛋白质的电泳技术（electrophoresis） 一、基本原理 1. 分子的运动速度与迁移率 （1）蛋白质分子在电场中的泳动速度（v） F电场力 = (E/d) q；F阻力 = 6πrηv； 当F电场力 = F阻力时， (E/d)q = 6πrηv， v = Eq/(6πrηd)。r：分......阅读全文
蛋白质分析技术(Analytical－Techniques－for－Protein)2
二、透析和超滤1.透析（Dialysis）：就是利用蛋白质分子不能通过半透膜（Semipermeable membrane）而小分子可以自由透过的性质，使蛋白质与小分子物质分开。作用：脱盐、无机离子和小分子物质等。透析膜：动物膜、羊皮纸、火棉胶、赛璐玢或其他材料等。2.超滤（ultrafiltrat
蛋白质分析技术(Analytical－Techniques－for－Protein)1
第一节 蛋白质分离纯化与鉴定的基本原理一、蛋白质的理化性质（一）蛋白质的两性电离 pI：当蛋白质溶液处于某一pH时，蛋白质解离成正、负离子的趋势相等，即成为兼性离子，净电荷为0，此时的溶液的pH称为~。 体内大多数蛋白质：pI≈pH 5.0。在pH 7.4，大多数蛋白质解离成阴离子。少数蛋白
蛋白质分析技术(Analytical－Techniques－for－Protein)3
六、SDS-PAGE1.SDS及SDS-PAGE（1）SDS：十二烷基硫酸钠（sodium decyl sulfate，SDS），一种阴离子去污剂，它能以一定的比例和蛋白质结合，形成一种SDS—protein的复合物。（2）SDS- PAGE：具有SDS的PAGE，分离SDS—protein复合物，
Basic－Protein－Chemistry－Techniques
Coomassie Blue Stain: (for gels) 1) Combine 225 ml Methanol with 225 ml ddH2O. 2) Add 0.5 grams of Coomassie Blue. 3) Just before use, add 50 ml acet
Basic－Protein－Chemistry－Techniques
实验概要Basic Protein Chemistry Techniques实验步骤Coomassie Blue Stain: (for gels) 1) Combine 225 ml Methanol with 225 ml ddH2O. 2) Add 0.5 grams of Coomassi
蛋白质组技术（Proteomic－Techniques）
一、研究材料1995年，Wasinger等在第一篇蛋白质组研究文章中研究的对象为目前已知最小但能自主复制的原核微生物——支原体Mycoplasma genitalium。1996年，研究对象即扩展到单细胞真核生物——酵母以及人体正常组织及病理标本[28]，进而突破了早期人们普遍认为的“蛋白质组研
蛋白质纯化(protein－purification)实用技术2
7．密度多数蛋白质的密度在1.3~1.4g/cm3之间，分级分离蛋白质时一般不常用此性质，不过对含有大量磷酸盐或脂质的蛋白质与一般蛋白质在密度上明显不同，可用密度梯度法离心与大部分蛋白质分离。8．基因工程构建的纯化标记通过改变cDNA在被表达的蛋白的氨基端或羧基端加入少许几个额外氨基酸，这个加入的标
电泳技术(electrophoretic－techniques)简介2
⒈材料与试剂 醋酸纤维素膜一般使用市售商品，常用的电泳缓冲液为pH8.6的巴比妥缓冲液，浓度在0.05-0.09mol/L。⒉操作要点⑴膜的预处理：必须于电泳前将膜片浸泡于缓冲液，浸透后，取出膜片并用滤纸吸去多余的缓冲液，不可吸得过干。⑵加样：样品用量依样品浓度、本身性质、染色方法及检测方法等因素决
基因克隆技术（Gene－Cloning－Techniques）2
二、目的基因和载体的连接 获得目的基因后必须将其放在一定的载体内才能在宿主细胞内扩增或表达。目的基因与载体的连接及其后续的转化过程习惯上称为克隆（cloning）。由于目前很多基因都是利用PCR技术获得，因此这里先介绍PCR产物的克隆策略，然后再介绍其他的克隆方式。 （一
基因克隆技术（Gene－Cloning－Techniques）2
二、目的基因和载体的连接获得目的基因后必须将其放在一定的载体内才能在宿主细胞内扩增或表达。目的基因与载体的连接及其后续的转化过程习惯上称为克隆（cloning）。由于目前很多基因都是利用PCR技术获得，因此这里先介绍PCR产物的克隆策略，然后再介绍其他的克隆方式。（一）PCR产物的克隆策略获得PCR
蛋白质提取与制备(Protein－Extraction－and－Preparation)2
三、蛋白质提取与制备具体操作方法1、原料的选择早年为了研究的方便，尽量寻找含某种蛋白质丰富的器官从中提取蛋白质。但至目前经常遇到的多是含量低的器官或组织且量也很小，如下丘脑、松果体、细胞膜或内膜等原材料，因而对提取要求更复杂一些。原料的选择主要依据实验目的定。从工业生产角度考虑，注意选含量高、来源丰
Bleeding－and－intravenous－techniques－in－pigs2
Bleeding techniques for smaller pigsThis picture depicts the venous drainage in the neck of piglets.A: the cephalic vein. This drains into:B: the exte
蛋白质定量分析(Protein－determination)
实验概要本文介绍了蛋白质定量分析(Protein determination) Bradford 的dye-binding method的原理、样品配制及操作步骤等。实验原理Bradford 的dye-binding method 是利用Coomassie brilliant blue G-250
蛋白质定量分析（Protein－determination）
Bradford 的dye-binding method 是利用Coomassie brilliant blue G-250 （CBG） 可与蛋白质结合而变色的特性来定量 （Bradford, 1976）；若试样中的蛋白质量较多，则结合到蛋白质而变色的CBG 也多，因而呈色较深。下例是以一组
蛋白质（protein）概述
蛋白质是一种复杂的有机化合物，旧称“朊”。蛋白质这一概念最早是由瑞典化学家永斯·贝采利乌斯于1838年提出，但当时人们对于蛋白质在机体中的核心作用并不了解。1926年，詹姆斯·B·萨姆纳揭示尿素酶是蛋白质，首次证明了酶是蛋白质。第一个被测序的抗原肽蛋白质是胰岛素，由弗雷德里克·桑格完成，他也因此获得
蛋白质纯化(protein－purification)实用技术3
10．非极性基团之间作用力溶质分子中的非极性基团与非极性固定相间的相互作用力（非选择性分散力或伦敦力）大小与溶质分子极性基团与流动力相中极性分子在相反方向上相互作用力的差异进行分离。因其流动相中的置换剂是极性小于水的有机溶剂（如甲醇、乙腈、四氢呋喃等），这些有机溶剂可能使许多蛋白质分子产生不可逆的变
蛋白质纯化(protein－purification)实用技术1
研究的最后还是要看基因表达产物,无论是用于检测还是用于棉衣保护,都需要将表达出的蛋白质分离和纯化,然而蛋白质性质各异,故纯化方法不同,现共享一些基本的纯化方法,以飨读者:蛋白质的一级、二级、三级和四级结构决定了它的物理、化学、生物化学、物理化学和生物学性质，综述了不同蛋白质之间的性质存在差异或者改变
蛋白质沉淀(Protein－Precipitation)浓缩方法原理及详细解析2
二．硫酸铵的使用硫酸铵中常含有少量的重金属离子，对蛋白质巯基有敏感作用，使用前必须用H2S处理：将硫酸铵配成浓溶液，通入H2S 饱和，放置过夜，用滤纸除去重金属离子，浓缩结晶，100℃烘干后使用。另外，高浓度的硫酸铵溶液一般呈酸性（PH=5.0左右），使用前也需要用氨水或硫酸调节至所需PH。硫酸
东曹生命科学将参展PITTCON－2016
东曹生命科学（Tosoh Bioscience）将于2016年3月6日-10日参加第66届匹兹堡分析化学和光谱应用会议暨展览会。 展位号：1828/1829 地 点：美国亚特兰大佐治亚展览中心 届时，我们将展示东曹最新的液相色谱分离纯化产品，并带来以下学术报告： ●报告题目：Charac
蛋白质抽取(protein－extraction)
蛋白质在细菌中表现后，以反复的冷冻-解冻方法打破细胞，再用硫酸铵把蛋白质沉淀下来，此步骤可以去除大部份核酸、多醣、脂质等杂物。仪器用具：恒温震荡培养箱37℃；高速冷冻离心机及离心管 （使用20,000 rpm离心陀）使用高速离心机要注意： 离心机及离心陀的温度要预冷完全，相对位置的两只离心管要平衡好
电泳技术(electrophoretic－techniques)简介1
电泳法，是指带电荷的供试品（蛋白质、核苷酸等）在惰性支持介质（如纸、醋酸纤维素、琼脂糖凝胶、聚丙烯酰胺凝胶等）中，于电场的作用下，向其对应的电极方向按各自的速度进行泳动，使组分分离成狭窄的区带，用适宜的检测方法记录其电泳区带图谱或计算其百分含量的方法。电泳技术的基本原理和分类在电场中，推动带电质点运
电泳技术(electrophoretic－techniques)简介3
（三）等电聚焦电泳技术等电聚焦（isoelectric focusing，IEF）是60年代中期问世的一种利用有pH梯度的介质分离等电点不同的蛋白质的电泳技术。由于其分辨率可达0.01pH单位，因此特别适合于分离分子量相近而等电点不同的蛋白质组分。⒈IEF的基本原理 在IEF的电泳中，具有pH梯
电泳技术(electrophoretic－techniques)简介5
三、琼脂糖凝胶电泳法1.仪器装置电泳室及直流电源同纸电泳。2.试剂(1)醋酸－锂盐缓冲液(pH3.0)取冰醋酸50ml，加水800ml混合后，用氢氧化锂调节pH至3.0，再加水至1000ml。(2)甲苯胺蓝溶液取甲苯胺蓝0.1g，加水100ml使溶解。3.操作法(1)制胶取琼脂糖约0.2g，加水10
电泳技术(electrophoretic－techniques)简介4
各电泳法，除另有规定外，照下述方法操作。一、纸电泳法1.仪器装置包括电泳室及直流电源两部分。常用的水平式电泳室装置如图，包括两个电泳槽A和一个可以密封的玻璃(或相应材料)盖B；两侧的电泳槽均用有机玻璃（或相应材料）板C分成两部分；外格装有铂电极(直径0.5～0.8cm)D；里格为可放滤纸E的有机玻璃
Size－and－Shape－of－Protein－Molecules2
The sedimentation coefficient of a protein is a measure of how fast it moves through the gradient. Increasing the mass of the protein will increase it
Aseptic－Techniques
Aseptic techniques ensure that all cell culture procedures are performed to a standard that will prevent contamination from bacteria, fungi, mycoplasm
蛋白质结构预测(protein－structure－prediction)
一种生物体的基因组规定了所有构成该生物体的蛋白质，基因规定了组成蛋白质的氨基酸序列。虽然蛋白质由氨基酸的线性序列组成，但是，它们只有折叠成特定的空间构象才能具有相应的活性和相应的生物学功能。了解蛋白质的空间结构不仅有利于认识蛋白质的功能，也有利于认识蛋白质是如何执行其功能的。确定蛋白质的结构对于生物
我所发表功能蛋白质复合物发现和结构表征质谱策略综述
近日，我所生物技术研究部生物分子结构表征新方法研究组（1822组）王方军研究员团队与南方科技大学田瑞军教授团队合作，发表了功能蛋白质复合物发现和结构表征质谱策略的综述文章。 功能蛋白复合物的发现和结构—功能表征研究在理解和干预生物学过程中发挥着至关重要的作用。亲和纯化质谱（AP-MS）是发现功
蛋白质电泳技术2
Decrease toxicity of destain even more!The destain procedure can be made even less toxic by replacing the destaining solution completely with MilliQ w
胶体金标记蛋白A技术（Protein－Agold－technique,－PAg法）2
(2)0、5mol／L，pH7.4 Tris-Hcl缓冲液：Tris，60.57g，1mol／L Hcl约420m1，调pH值至7.4，最后加双蒸水至1000m1，此为储备液。(3)0、05mo1／L Tris缓冲生理盐水：氯化钠8.5-9g；0.5mo1／L，pH7.4 Tris-Hcl缓冲液10