WIKI资讯
WIKI资讯
12月14日，中国科学院生物物理研究所生物大分子国家重点实验室孙飞课题组与南开大学生命科学学院分子微生物学与微生物工程实验室乔明强课题组合作，在Nature Communications上发表了题为A cryo-electron microscopy support film formed by 2D crystals of hydrophobin HFBI的研究成果。针对当前冷冻电镜样品制备过程中普遍存在的由于气液界面导致的样品变性、解聚和取向优势问题，该研究报道了一种用基于真菌疏水蛋白HFBI薄膜的新型冷冻电镜支持膜技术，为相关问题提出了有效的解决方案。 近年来，由于硬件和图像处理算法上的不断突破，冷冻电镜单颗粒技术已成为研究生物大分子复合体三维结构的主要研究手段之一，并已达到原子分辨率的水平。冷冻电镜技术流程中的关键步骤包括冷冻样品的制备，将生物大分子样品快速冷冻在玻璃态冰中，用于下一步的冷冻电镜成像。然而，实际研究......阅读全文
病毒是一类体积微小呈亚显微的、胞内专性寄生的非细胞生物，大小范围为仅20-200nm。因此，若要了解病毒的形态结构等信息，必须借助电镜观察。为此，电镜技术在病毒学研究中是不可缺少的重要手段。来源：《病毒学检验》载网的准备与支持膜的制备实验方法原理因为电子的能量很弱，电子束不能透过玻璃，故用于透射电镜
实验方法原理 因为电子的能量很弱，电子束不能透过玻璃，故用于透射电镜观察的标本不能置于载玻片上，尤论是病毒的悬滴标本或者病毒细胞培养物的超薄切片标本都要置于一层极薄的支持膜上。支持膜的厚度一般以 10~15nm 为宜。支持膜附在一个用铜或铢制成的载网上，载网的直径为 3mm 。 实验
实验方法原理 因为电子的能量很弱，电子束不能透过玻璃，故用于透射电镜观察的标本不能置于载玻片上，尤论是病毒的悬滴标本或者病毒细胞培养物的超薄切片标本都要置于一层极薄的支持膜上。支持膜的厚度一般以 10~15nm 为宜。支持膜附在一个用铜或铢制成的载网上，载网的直径为 3mm 。 实验材
样品冷冻样品冷冻其实是科学家们很早就想到的思路，但是冷冻之后样品中水分子形成冰晶，不仅产生强烈电子衍射掩盖样品信号，还会改变样品结构。直到1974年，Kenneth A. Taylor和Robert M. Glaeser在-120℃观察含水生物样品时未发现冰晶形成，而且发现冷冻样品能够耐受更大剂量和
说起冷冻电镜，小编想不管是研究生还是教授大咖，可能和科研有那么一丁点联系的人对这个名字都不会陌生，因为它实在太出名了！基于冷冻电镜产出的科研成果很多都发表在Nature、Science、Cell等顶刊上（羡慕脸），堪称NSC神器。冷冻电镜技术的发展直接带动了生命科学领域，特别是结构生物学的飞速发展，
12月14日，中国科学院生物物理研究所生物大分子国家重点实验室孙飞课题组与南开大学生命科学学院分子微生物学与微生物工程实验室乔明强课题组合作，在Nature Communications上发表了题为A cryo-electron microscopy support film forme
冷冻电镜分类目前我们讨论的冷冻电镜基本上指的都是冷冻透射电子显微镜，但是如果我们以使用冷冻技术的角度定义冷冻电镜的话，冷冻电镜主要可以分为冷冻透射电子显微镜、冷冻扫描电子显微镜、冷冻蚀刻电子显微镜。 冷冻透射电子显微镜冷冻透射电镜（Cryo-TEM）通常是在普通透射电镜上加装样品冷冻设备，将样品冷却
冷冻电镜成像冷冻的样品冷冻输送器转移到电镜的样品室，在电镜成像之前，需确认样品中的水处于玻璃态。由于生物样品对高能电子的辐射敏感，成像时必须使用低剂量技术（
冷冻电镜原理冷冻电子显微学解析生物大分子及细胞结构的核心是透射电子显微镜成像，其基本过程包括样品制备、电子显微镜成像、图像处理及结构解析等几个基本步骤。冷冻电镜解析结构步骤 图片来源：中科院计算所透射电子显微镜成像过程中，电子束穿透样品，将样品的三维电势密度分布函数沿着电子束的传播方向投影至与传播
在低温下使用透射电子显微镜观察样品的显微技术，就叫做冷冻电子显微镜技术，简称冷冻电镜(cryo-electron microscopy， cryo-EM)。冷冻电镜是重要的结构生物学研究方法，它与另外两种技术：X射线晶体学(X-ray crystallography)和核磁共振(nuclear m