PCR实验操作程序
1. 在无菌的0.5ml或0.2ml离心管中按下列操作程序加样： 反应物 加样顺序 体积(μl) 终浓度 去离子水 1 29.4 10×Buffer B 2 5 1× 4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L MgCl2 4 3 1.5mmol/L 有义引物 5 2.6 0.25μmol/L 反义引物 6 2.6 0.25μmol/L 模板 7 2 0.1μg TaqDNA聚合酶 8 0.4 1unit 2. 用微量可调加样器和一次性Tip向每一管中加50μl矿物油。每加一管换一次Tip。 3. 振荡每只管，然后短暂离心。 4. 将管放到预热的热循环中，按下列程序开始循环： 预变性 94℃ 4分钟 1次 变性 94℃ 1分钟 退火 37-65℃ 1分钟 延伸 72℃ 1分钟 循环30次 终延伸 72℃ 7分钟 1次 保存 4℃ 5. 将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳，分析结果。电......阅读全文
PCR实验操作程序
1. 在无菌的0.5ml或0.2ml离心管中按下列操作程序加样：反应物 加样顺序 体积(μl) 终浓度去离子水 1 29.410×Buffer B 2 5 1×4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L MgCl2 4 3 1.5mmol/L有义引物 5 2.6 0.25μmol/L反义引物
PCR实验操作程序
1. 在无菌的0.5ml或0.2ml离心管中按下列操作程序加样： 反应物 加样顺序 体积(μl) 终浓度 去离子水 1 29.4 10×Buffer B 2 5 1× 4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L MgCl2 4 3 1.5mmol/L 有义引物 5 2.6 0.
PCR实验操作程序
1. 在无菌的0.5ml或0.2ml离心管中按下列操作程序加样：反应物 加样顺序 体积(μl) 终浓度去离子水 1 29.410×Buffer B 2 5 1×4×dNTP混合物 3 5 各200μmol/L MgCl2 4 3 1.5mmol/L有义引物 5 2.6 0.25μmol/L反义引物
PCR技术操作程序与优化方法
作者：李爱丽等 来源：生物技术通报典型的PCR操作在此处仅列出—般PCR操作过程，具体影响因素的优化将在本章第二节讨论，每一个具体操作前都需进行必要的优化。（一） 试剂（1）引物根据待扩增DNA不同，引物亦不同，引物的设计见本章第三节。（2）耐热DNA聚合酶：此酶是从耐热细菌中分离出来的，能耐受高温
典型PCR操作程序与优化方法
一、 试剂(1)引物根据待扩增DNA不同，引物亦不同，引物的设计见(2)耐热DNA聚合酶：此酶是从耐热细菌中分离出来的，能耐受高温(93—100c)，不同耐热DNA聚合酶的特性详见本章第4节。 Perkin—E1mer—cetus公司、N、F、Bio1ab、PharMacia公司、国内华美公司、复旦
典型PCR操作程序与优化方法
一、 试剂(1)引物根据待扩增DNA不同，引物亦不同，引物的设计见http://ask.bbioo.com/special/experiment/PrimerDesign.htm。(2)耐热DNA聚合酶：此酶是从耐热细菌中分离出来的，能耐受高温(93—100c)，不同耐热DNA聚合酶的特性详见本章第
逆转录RTPCR实验操作程序及注意事项
实验操作过程中必须带口罩、手套，实验室尽量避免人员干扰。RT-PCR的试剂都应在冰上融化，等完全融化后再取；用过的试剂应瞬间离心后放回-20℃保存；试剂应按顺序加，加完后再混匀离心。加入试剂前在管壁上做好标记，避免加错试剂；加过一种试剂后将EP管盖子的方向改变，避免重复和漏加；不同试剂和样品要更换吸
PCR室间质量控制操作程序
1．目的：室间质评（EQA）是实验室质量控制体系中重要部分，是保证患者检验结果和其报告的准确性和可靠性，以及各实验室间结果的可比性的重要手段。2．适用范围：卫生部或省临检中心下发的PCR室间质控血清检测。3．负责人： 操作人：4．程序：4.1质控标本的接收和验收：收到质控血清后由相关人
实时荧光定量PCR扩增和结果分析的标准操作程序
1 目的:保证扩增及结果分析的标准化、规范化。 2 该SOP变动程序:本文件的变动，可由任一使用该文件的工作人员提出，报经室技术负责人，由季度组长会议决定。如通过则公布实行。 3 使用范围:使用GeneAmp 5700型扩增仪的实时荧光定量PCR实验室。 4 标准程序4.1 核酸扩增标准程序
ELISA试剂盒实验操作程序总结
实验开始前，各试剂均应平衡至室温（试剂不能直接在37℃溶解）；试剂或样品稀释时，均需混匀，混匀时尽量避免起泡。实验前应预测样品含量，如样品浓度过高时，应对样品进行稀释，以使稀释后的样品符合elisa试剂盒的检测范围，计算时再乘以相应的稀释倍数。加样：分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释
植物培养实验的操作程序以及选用实验仪器
培养基配制的操作程序：1、加琼脂和无离子水至定容量的70%左右，加热使琼脂溶解；2、琼脂溶解后，加入培养基母液、激素、糖等，稍加热使糖溶解；3、糖溶解，加无离子水至定容量；4、充分搅拌后，测pH值至要求值；5、培养基分装入瓶后灭菌。组培玻璃器皿的选择和清洗1、玻璃器皿的选择（1）试管—适合于初代培养
实时－PCR－实验
试剂、试剂盒 PCR Super Mix-UDGROX 染料蒸馏水反向引物正向引物仪器、耗材 ABIPRISM7700 型号系列检测系统实验步骤 一、材料1. 缓冲液、溶液和试剂以 50ul 反应体系为例。Platinum Quantitative PCR Super Mix-UDG(Invitro
实时－PCR－实验
本方法运用 PlatinumQuantitativePCRSuperMix-UDG。进行实时 PCR 时，应该有一套设备可以检测每次 PCR 循环时释放的荧光信号。并且还能检測 FAM 和 JOE 激发后分别释放出的 520mn 和 550nm 的发射波。本实验来源于 PCR 实验指南（第二版），作
PCR实验操作
PCR实验操作 PCR是极为重要的DNA增殖技术，应用层面非常广，其中包括了核酸探针的制备。如果一段DNA已经被次选殖至载体上，要以PCR扩增这段DNA时，可根据质体multiple cloning sites两边的序列，选用适当的核酸引子 （universal primers） 进行扩增反
pcr实验步骤
一、 样品RNA的抽提1. 取冻存已裂解的细胞，室温放置5分钟使其完全溶解。2. 两相分离 每1 ml的TRIZOL试剂裂解的样品中加入0.2 ml的，盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后，15到30℃孵育2到3分钟。4℃下12 000 rpm离心15分钟。离心后混合液体将分为下层的红色酚相，中间层以
实时－PCR－实验
试剂、试剂盒 PCR Super Mix-UDG ROX 染料 蒸馏水 反向引物 正向引物 仪器
免疫PCR实验
实验方法原理 免疫PCR主要由两个部分组成，第一部分的免疫反应类似于普通的酶联免疫吸附试验（ELISA）的测定过程；第二部分即通常的PCR检测，抗原分子的量最终由PCR产物的多少来反映。第一步中，首先用待测抗原（如牛血清白蛋白（ESA））包被微滴板孔，再加入相应的特异抗体，于是抗体就与固相上的抗原结
双重PCR实验
随着转基因农作物的大量种植，其安全性问题也日益受到人们的重视。2002年我国要求对转基因农作物实行标签管理。抗草甘膦（glyphosate）大豆 （商品名，roundup ready soybean）是在传统大豆株Variety A5403中转入外源基因CAMV-35S启动子、抗草甘膦基因CP4-E
PCR实验技术
PCR实验技术 PCR（聚合酶链式反应） 【原理】 PCR（polymerase chain reaction）用于在体外将微量的目标DNA大量扩增，以便进行分析。反应体系：①样品DNA；②引物（primer），是人工合成的一对寡核苷酸
降落PCR实验
实验材料 基因样品仪器、耗材 PCR实验步骤 1. 反应体积为50 μl。2. 人CD137胞膜外区基因的PCR扩增体系：CD137-pCDNA3质粒4 μl，P1，P2各0.5 μmol/L，MgCl2 2 mmol/L，dNTP 0.4 mmol/L，Taq 5 U。3. hIgG1Fc片
诱变－PCR－实验
试剂、试剂盒 氯仿 异戊醇乙醇矿物油或者一个蜡珠3mol L NaOAc5 mmol L MnCl2突变 PCR 缓冲液DNA 聚合酶Native Taq 或 AmpliTaq DNA 聚合酶高纯度的脱氧核苷 5'-三磷酸dNTP 混合物模板 DNA引物琼脂糖凝胶用溴化乙锭染色仪器、
定量PCR实验
实验材料 限制性内切核酸酶反转录酶热稳定 DNA 聚合酶dCTP靶核酸试剂、试剂盒 扩增缓冲液dNTP 贮存液胎盘 RNase 抑制剂仪器、耗材 琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶屏蔽型枪头离心管正向排液式移液器PCR 仪实验步骤 一、材料1. 缓冲液与溶液10X 扩增缓冲液4 种 dNTP 贮存液（20
诱变－PCR－实验
诱变 PCR 最大的优势是以一种没有偏好的方式引入了各种类型的突变，而不是获得高水平的单一的扩增。本实验来源于 PCR 实验指南（第二版），作者：种康，瞿礼嘉。试剂、试剂盒氯仿 异戊醇乙醇矿物油或者一个蜡珠3mol L NaOAc5 mmol L MnCl2突变 PCR 缓冲液DNA 聚合酶Nati
菌落PCR实验
菌落PCR标签： 菌落 PCR菌落PCR（Colony PCR）可不必提取基因组DNA，不必酶切鉴定，而是直接以菌体热解后暴露的DNA为模板进行PCR扩增，省时少力。建议使用载体上的通用引物。通常利用此方法进行重组体的筛选或者DNA测序分析。最后的PCR产物大小是载体通用引物之间的插入片断大小。
诱变－PCR－实验
试剂、试剂盒 氯仿 异戊醇 乙醇 矿物油或者一个蜡珠 3mol L NaOAc 5 mmol L MnCl2 突变 PCR 缓冲液
PCR实验操作
PCR是极为重要的DNA增殖技术，应用层面非常广，其中包括了核酸探针的制备。如果一段DNA已经被次选殖至载体上，要以PCR扩增这段DNA时，可根据质体multiple cloning sites两边的序列，选用适当的核酸引子 （universal primers） 进行扩增反应；比较常用的引子包括S
实验室仪器氮吹仪操作程序
1、将氮吹仪提升到最高位置,并锁紧。 2、将样品试管放置到样品定位架上,用样品定位架弹簧固定试管,试管底部处于支撑托盘上,记录样品所放位置。如果支撑托盘过低,则拧松支撑托盘中心环上的两个定位螺钉。上升支撑托盘,直到试管底部位于托盘上,距定位架不低于15mm。调整支撑托盘,使狭缝对准试管。再次拧
定量PCR实验技术－QPCR
Quantitative PCRJoseph SambrookPeter Maccallum Cancer Institute and The University of Melbourne, AustraliaDavid W. RussellUniversity of Texas Southwes
反向PCR－（inversePCR）实验步骤
inverse-PCR是克隆插入片段侧翼序列非常有效的方法。通常采用的Tail-PCR假阳性太多，而Inverse-PCR一般只要有特异条带，基本上就是目的片段。基本步骤如下：1、反向PCR（Inverse PCR）原理：反向PCR是克隆T-DNA插入位点侧翼DNA序列非常有效的方法。a. 选择合适
反向PCR－（inversePCR）实验步骤
inverse-PCR是克隆插入片段侧翼序列非常有效的方法。通常采用的Tail-PCR假阳性太多，而Inverse-PCR一般只要有特异条带，基本上就是目的片段。基本步骤如下：1、反向PCR（Inverse PCR）原理：反向PCR是克隆T-DNA插入位点侧翼DNA序列非常有效的方法。a. 选择合适