细胞转染实验的实验步骤细胞转染

1)转染试剂的准备A.将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。B.震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2)选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡后在加入合适体积的转染试剂,再次震荡。5)将混合液在室温放置10—15分钟。6)吸去培养板中的培养基,用PBS或者无血清培养基清洗一次。7)加入混合液,将细胞放回培养箱中培养一个小时。8)到时后,根据细胞种类决定是否移除混合液,之后加入完全培养基继续培养24-48小时。......阅读全文

细胞转染实验的实验步骤细胞转染

1)转染试剂的准备A.将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。B.震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2)选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA,震荡

细胞转染实验的实验步骤

细胞传代(1)试验准备:200ul/1mlTip头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培养皿,离心管。(2)弃掉培养皿中的培养基,用1ml的PBS溶液洗涤两次。(3)用Tip头加入1mlTrypsin液,消化1分钟(37。C,5%CO2)。用手轻拍培养瓶壁,

细胞转染实验的步骤

细胞传代(1)试验准备:200ul/1mlTip头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培养皿,离心管。(2)弃掉培养皿中的培养基,用1ml的PBS溶液洗涤两次。(3)用Tip头加入1mlTrypsin液,消化1分钟(37。C,5%CO2)。用手轻拍培养瓶壁,

细胞转染实验的实验步骤细胞传代

(1)试验准备:200ul/1mlTip头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培养皿,离心管。(2)弃掉培养皿中的培养基,用1ml的PBS溶液洗涤两次。(3)用Tip头加入1mlTrypsin液,消化1分钟(37。C,5%CO2)。用手轻拍培养瓶壁,观察到细

真核细胞的转染实验步骤

1.  在6孔板中接种1~3×105细胞/孔,加入2ml完全培养基,置CO2孵箱中37℃培养过夜。 2.  待细胞长到50-80%单层时,在无菌离心管中配制如下溶液: i.  溶液A:将4?g待转染的超纯DNA稀释到250?l无血清培养基中,静置5min ii.  溶液B:将2-25?l Lipo

真核细胞的转染实验步骤

1.  在6孔板中接种1~3×105细胞/孔,加入2ml完全培养基,置CO2孵箱中37℃培养过夜。2.  待细胞长到50-80%单层时,在无菌离心管中配制如下溶液: i.  溶液A:将4?g待转染的超纯DNA稀释到250?l无血清培养基中,静置5minii.  溶液B:将2-25?l Lipofec

细胞转染实验的步骤介绍

  一、细胞传代  (1)试验准备:200ul/1mlTip头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培养皿,离心管。  (2)弃掉培养皿中的培养基,用1ml的PBS溶液洗涤两次。  (3)用Tip头加入1mlTrypsin液,消化1分钟(37。C,5%CO2)

真核细胞转染实验

真核细胞的转染 实验材料 真核细胞 试剂、试剂盒 脂质体 转染液

昆虫细胞转染实验

实验材料昆虫细胞试剂、试剂盒胎牛血清脂质体转染剂仪器、耗材培养皿锥形瓶培养箱离心机转子实验步骤1.  接种2x106个Sf9细胞于60 mm 培养皿,在含10%胎牛血清的完全培养液或无血清培养液中培养,于27℃培养30~60 min,让细胞贴壁。2.  相应于毎一待转染的培养皿,吸取40 ul 无菌

昆虫细胞转染实验

实验材料 昆虫细胞试剂、试剂盒 胎牛血清脂质体转染剂仪器、耗材 培养皿锥形瓶培养箱离心机转子实验步骤 1.  接种2×106个Sf9细胞于60 mm 培养皿,在含10%胎牛血清的完全培养液或无血清培养液中培养,于27℃培养30~60 min,让细胞贴壁。2.  相应于毎一待转染的培养皿,吸取40

细胞转染实验介绍

一、实验目的学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法——脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。二、实验原理上图所示是脂质体介导转染的示意图,它显示了外源质粒进入细胞的一般过程。外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介

细胞转染实验目的

学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法—脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。

昆虫细胞转染实验

基本方案             实验材料 昆虫细胞 试剂、试剂盒

昆虫细胞转染实验

基本方案             实验材料 昆虫细胞 试剂、试剂盒

真核细胞转染实验

学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法——脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。实验材料真核细胞试剂、试剂盒脂质体 转染液仪器、耗材CO2孵箱 离心管 6孔板

细胞转染实验的实验原理

外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法、脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和

细胞转染实验的实验目的

学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法—脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。

细胞转染实验的原理

外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法、脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;病毒法是利用包装了外源基因的病毒感染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和

细胞转染实验的目的

学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法—脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。

痘苗载体转染细胞实验

CaCl2 法 DOTAP 法             实验方法原理 将感兴趣的外源基因亚克隆到质粒转移载体上,外源基因的两端为痘苗病毒基因组非必需基因片段。随后,将重组质

痘苗载体转染细胞实验

实验方法原理 将感兴趣的外源基因亚克隆到质粒转移载体上,外源基因的两端为痘苗病毒基因组非必需基因片段。随后,将重组质粒转染病毒感染的细胞,痘苗病毒基因组与质粒上同源的部分发生同源重组。应用适当的筛选方案,经几轮噬斑纯化,从细胞裂解物中获得重组病毒。实验材料 pSCll/pRB21/pSC65/pLW

细胞转染实验的实验步骤第二次细胞传代

1) 在转染后24小时,观察实验结果并记录绿色荧光蛋白表达情况。2) 再次进行细胞传代,按照免疫染色合适的密度0.8X105个细胞/35mm培养皿将细胞重新放入培养皿中。3) 在正常条件下培养24小时后按照染色要求条件固定。

细胞转染常用步骤

1. 转染试剂的准备① 将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。② 震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2. 选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体 [1]  体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGF

细胞瞬时转染步骤

原理:通过脂质体介导转染法及电穿孔等基因转染技术,将靶基因导入细胞,一般在转染后48小时左右,靶基因即可在细胞内表达。根据不同的实验目的,48小时后即可进行靶基因表达的检测等实验。应用:观察目的基因及其表达蛋白在某种细胞中的功能(短时间即可进行观察,但效应会很快丢失)。一般流程:1)细胞接种:转染实

细胞转染:脂质体转染的几个实验方法

实验原理 脂质 体(LR)试剂是阳离子脂质体DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它适用于把DNA 转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下最方面的转染方法之一。转染率高,优于磷酸钙法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA转染到各种细胞。用LR进行转染时,首先需要优化转染条件,应找出该批LR对转

转染细胞的稳定筛选实验

本实验主要用于获得含目的外源基因的真核细胞。实验方法原理外源基因转染真核细胞后整合入基因组DNA,能够长期存在于细胞中,随染色体复制而传给子代。外源基因进入培养细胞一般要经过几天才能够整合入基因组DNA。实验材料转染细胞试剂、试剂盒抗生素培养基胰酶仪器、耗材6孔板24孔板96孔板CO2培养箱滤纸片培

转染细胞的稳定筛选实验

            实验方法原理 外源基因转染真核细胞后整合入基因组DNA,能够长期存在于细胞中,随染色体复制而传给子代。外源基因进入培养细胞一般要经过几天才能够整合入基因组DNA。 实验材料

表皮细胞的转染实验技巧

表皮细胞广泛遍布于身体,正常的表皮细胞较难转染,尤其是使用基于脂质体技术的转染试剂。我们使用电转(Amaxa)方法转染正常人的结肠表皮细胞并得到了65%的GFP标记细胞。非常感谢SignaGen,现在我们使用GenJet Ver II可以成功转染正常人的结肠表皮细胞并且转染效率显著提高至75%。

转染细胞的稳定筛选实验

实验材料 转染细胞试剂、试剂盒 抗生素培养基胰酶仪器、耗材 6孔板24孔板96孔板CO2培养箱滤纸片培养瓶实验步骤 1.确定抗生素作用的最佳浓度:不同的细胞株对各种抗生素有不同的敏感性,因此在筛选前要做预试验,确定抗生素对所选择细胞的最低作用浓度。1) 提前24 小时在96 孔板或24 孔板中接种细

细胞转染的常用步骤

1. 转染试剂的准备① 将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。② 震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。2. 选择合适的混合比例(1:1-1:2/脂质体 [1]  体积:DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGF