藻类植物的采集和培养实验(一)

实验方法原理 实验材料 藻类植物仪器、耗材 工具袋 25 号浮游生物网塑料瓶(或试剂瓶) (100mL) 广口瓶 (250mL 500mL) 大镊子采集刀吸管铅笔标签纸纸袋(或信封)等实验步骤 1 淡水藻类的采集方法(1) 浮游藻类在较大较深水面,可用浮游生物网在水中作"∞"字形来回慢慢拖动采集。采集后将网垂直提出水面,打开网底的阀门,将采集到的标本注入标本瓶(或广口瓶)中。同时做好采集记录、编号,并在瓶上贴上标签,或用铅笔在纸条上写上编号,放入瓶中。在较浅较小水体中,可直接用广口瓶灌注或用吸管吸取后再移入瓶中。(2) 固着藻类以固着器或假根固着于岩石、本生植物或其他基质上的藻类(如刚毛深、丝藻)等,采集时可直接用手或镊子采下。如果不能保证标本的完整,则须用采集刀刮取或连基物一起采下。(3)气生藻类对生活于潮湿的地面上、墙角、树皮上及花盆壁上的藻类可自接用采集刀刮下放入纸袋中。2 常见淡水......阅读全文

藻类植物的采集和培养实验_藻类植物采集方法

实验材料藻类植物仪器、耗材工具袋25 号浮游生物网塑料瓶(或试剂瓶) (100mL)广口瓶 (250mL500mL)大镊子采集刀吸管铅笔标签纸纸袋(或信封)等实验步骤1 淡水藻类的采集方法(1) 浮游藻类在较大较深水面,可用浮游生物网在水中作"∞"字形来回慢慢拖动采集。采集后将网垂直提出水面,打开网

藻类植物的采集和培养实验_藻类植物分离培养

实验材料藻类植物仪器、耗材工具袋25 号浮游生物网塑料瓶(或试剂瓶) (100mL)广口瓶 (250mL500mL)大镊子采集刀吸管铅笔标签纸纸袋(或信封)等实验步骤常见藻类的分离和培养(1)衣藻的分离和培养①藻种分离把野外采集来的衣藻水样,经显微镜镜检后,倒入广口瓶内,置于窗台向阳处,由于衣藻有趋

藻类植物的采集和培养实验

实验方法原理实验材料藻类植物                                                          仪器耗材工具袋   25 号浮游生物网  塑料瓶(或试剂瓶) (100mL)  广口瓶 (250mL  500mL)  大镊子  采集刀  吸管  标签纸

藻类植物的采集和培养实验(一)

实验方法原理 实验材料 藻类植物仪器、耗材 工具袋 25 号浮游生物网塑料瓶(或试剂瓶) (100mL) 广口瓶 (250mL 500mL) 大镊子采集刀吸管铅笔标签纸纸袋(或信封)等实验步骤 1 淡水藻类的采集方法(1) 浮游藻类在较大较深水面,可用浮游生物网在水中作"∞"字形来回慢慢拖动采集。采

藻类植物的采集和培养实验(二)

实验方法原理 实验材料 藻类植物仪器、耗材 工具袋 25 号浮游生物网塑料瓶(或试剂瓶) (100mL) 广口瓶 (250mL 500mL) 大镊子采集刀吸管铅笔标签纸纸袋(或信封)等实验步骤 常见藻类的分离和培养(1)衣藻的分离和培养①藻种分离把野外采集来的衣藻水样,经显微镜镜检后,倒入广口瓶内,

血培养——标本采集

采血指征临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者:发热(≥38℃)或低温(≤36℃)、寒战、 白细胞增多(>10×109/L,特别有“核左移”未成熟的或杆状核白细胞增多)、 粒细胞减少(成熟的多核白细胞

怎样采集痰培养标本?

医生开出痰标本培养的目的是了解下呼吸道细菌感染的情况,因此采集下呼吸道标本,防止污染是关键,如果采集不当,培养了非感染细菌,则不但失去了培养的价值,反而延误治疗。    一. 痰标本的来源:下呼吸道痰、气管抽吸物(TA)、支气管肺灌洗吸出液、支气管刷子、气管内管、肺穿刺或活组织等。    二. 使用

痰培养标本采集须知

痰培养的目的事检查痰液中的致病菌。可根据需要进行需氧菌培养、厌氧菌培养、结核杆菌培养、或真菌培养,用于呼吸道感染的病因诊断。痰培养的理论依据是致病菌应高于污染菌,据此,对痰液进行定量培养和半定量培养。常与药物敏感试验一起进行。标本采集须知:1、自然咳痰法:患者早上起床后用清水漱口,不要刷牙,立即从下

痰培养的标本采集

痰培养是呼吸道感染病原学诊断最常用的方法,同时,痰培养的检验结果及药敏试验在指导临床抗生素使用方面也发挥了非常重要的作用。标本采集方法    医师或护士直视下采集标本,病人先漱口,去除表面的菌群,让病人深咳,收集从下呼吸道咳出的痰液。临床上约半数咳痰标本不合格!    咳痰途经口咽部,不可避免地受到

粪便标本培养应如何采集

腹泻为大便送检的重要指征,婴幼儿和小儿可见高热惊厥。当疑为细菌性痢疾、肠炎、肠结核和顽固性腹泻时,应在急性期采集,亦最好在用药之前,以提高检出率。肠热症患者应在两周以后采集医`学教育网搜集整理。采用自然排便法或直肠拭子法,挑取有脓血,粘液部位的粪便2~3g置于无菌容器中送检。注意事项:①为提高检出率

粪便标本培养的采集方法

腹泻为大便送检的重要指征,婴幼儿和小儿可见高热惊厥。当疑为细菌性痢疾、肠炎、肠结核和顽固性腹泻时,应在急性期采集,亦最好在用药之前,以提高检出率。肠热症患者应在两周以后采集理。采用自然排便法或直肠拭子法,挑取有脓血,粘液部位的粪便2~3g置于无菌容器中送检。注意事项:①为提高检出率,要采集新鲜粪便作

如何正确采集血培养标本

血培养采血时间应在患者接受抗生素治疗之前,患者寒战时或发热初期采血。超过发热峰值后,病原菌逐渐被机体免疫系统清除,从而降低检出率。血培养采血部位宜采用外周静脉血,不建议采用动脉血或通过血管内导管采血。只有在怀疑导管相关性血流感染时,可以分别通过导管和外周静脉采取相同量的血标本,同时送细菌室进行培养。

如何正确采集血培养标本

(1) 培养瓶消毒程序,如消毒培养瓶橡皮塞,待干燥后使用。(2)皮肤消毒程序,如用消毒液从穿刺点向外螺旋形消毒,至消毒区域直径达5cm 以上,待干后采血。(3) 静脉穿刺和培养瓶接种顺序,如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头,直接注入血培养瓶,先注入厌氧菌培养瓶,避免注人空气,后注入其他培养瓶,轻轻混

藻类植物光合强度测定

原理 藻类植物在光合作用中吸收CO2 ,放出氧气。测定盛藻容器水中的含氧量,即可计算出藻类植物的光合强度。 以Winkler氏法测水中溶解的氧,方法准确而且简单易行。甚至极谱测氧都需用此法校准。 本法是根据向定量的水中加入二氯化锰(MnCl2 )及氢氧化钠,二者反应产生氢氧化亚

血培养概述及血样采集和培养瓶接种

血培养是把静脉穿刺获得的血液接种到一个或多个培养瓶或培养管中,用来发现、识别细菌或其它可培养分离的微生物(如大肠杆菌、念珠菌属、霉菌属等),这些微生物存在于血液中形成菌血症或真菌菌血症。在病人的血液中检测出微生物对感染性疾病的诊断、治疗和预后有重要的临床意义。当细菌或真菌在血液中迅速繁殖超出单核吞噬

植物组织培养的培养材料采集和消毒

  要根据培养目的适当选取材料,选择原则:易于诱导、带菌少。要选取植物组织内部无菌的材料。这一方面要从健壮的植株上取材料,不要取有伤口的或有病虫的材料。另一方面要在晴天,最好是中午或下午取材料,决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。因为健壮的植株和晴天光合作用、呼吸作用旺盛的组织,有自身消毒作用,这

血培养概述及血样采集和培养瓶接种

血培养是把静脉穿刺获得的血液接种到一个或多个培养瓶或培养管中,用来发现、识别细菌或其它可培养分离的微生物(如大肠杆菌、念珠菌属、霉菌属等),这些微生物存在于血液中形成菌血症或真菌菌血症。在病人的血液中检测出微生物对感染性疾病的诊断、治疗和预后有重要的临床意义。当细菌或真菌在血液中迅速繁殖超出单核吞噬

血液培养标本采集的那些事

血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节!但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情,由于不了解问题所在,引发的主要后果是血培养阳性率下降,这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。因此,临床微生物检验标本采集应规范化。     1、最佳采血时间:尽可能在抗菌药物使用前

血培养标本的采集和运输

血流感染的发生发展可以严重威胁患者的生命,其正确诊断不仅可以减少抗菌药物的误用和滥用,同时可以大大地改善患者的预后,降低患者的病死率,减少医疗花费。本文向读者详细介绍血培养标本采集时间、套数、血量要求、样本运输、皮肤消毒注意事项、导管相关性血流感染以及感染性心内膜炎诊断规范、快速鉴定血培养中的念珠菌

卵母细胞的采集和培养

⒈促排卵法(超数排卵):用促性腺激素处理,促雌性动物排卵,从输卵管中冲取卵子⒉直接获取法:A.从已屠宰母畜的卵巢中采集卵母细胞,在体外经人工培养为成熟的卵子B.从活体动物的卵巢中吸取卵母细胞,在体外经人工培养为成熟的卵子

尿液细菌培养的标本采集须知

泌尿系统感染(urinary tract infection ,UTI )是临床上较为常见的一种感染性疾病,其发病率仅次于呼吸道感染。尿液细菌培养因能确定泌尿感染和分离感染菌进行药敏实验,被广泛开展。而尿细菌培养中采用最多的标本是中段尿,而此种标本影响因素众多。了解这些影响因素、逐一控制,对

血培养标本的采集与运送

 一 、血培养的适应症  发热(> 38°C) ;体温过低(< 36°C) ;白细胞增多(>10×109/L,特别有“核左移”时);粒细胞减少(成熟的多形核白细胞<1×109/L);低血压;局部感染:肺炎、尿路感染、脑膜炎;突发精神萎靡的儿童或老年人;虚弱、精神状态错乱、体重突然下降的老年人

浅谈如何正确采集血培养标本

血培养采血时间应在患者接受抗生素治疗之前,患者寒战时或发热初期采血。超过发热峰值后,病原菌逐渐被机体免疫系统清除,从而降低检出率。血培养采血部位宜采用外周静脉血,不建议采用动脉血或通过血管内导管采血。只有在怀疑导管相关性血流感染时,可以分别通过导管和外周静脉采取相同量的血标本,同时送细菌室进行培养。

自动血培养系统的血培养标本采集与运送

  血培养标本采集与运送  (1)一般应在抗生素使用前、患者发热初期或开始出现寒战时采集标本。  (2)根据需要选择适当的培养基。  (3)患者抽血后直接注入血培养瓶,应先需氧瓶后厌氧瓶,贴好条码,尽快送检。若不能及时送检,可于室温保存,不可放置冰箱保存。  (4)实验室收到标本后检查无误,即刻放入

血液培养标本采集的注意事项

  血培养标本采集和运送是血液细菌培养成功的重要环节!但由于标本的采集和运送常有护士或医生完成,所以也是最容易忽视的事情,由于不了解问题所在,引发的主要后果是血培养阳性率下降,这也是目前国内血培养阳性率低的主要原因。因此,临床微生物检验标本采集应规范化。    1、最佳采血时间:尽可能在抗菌药物使用

植物组培的培养材料采集简介

  要根据培养目的适当选取材料,选择原则:易于诱导、带菌少。要选取植物组织内部无菌的材料。这一方面要从健壮的植株上取材料,不要取有伤口的或有病虫的材料。另一方面要在晴天,最好是中午或下午取材料,决不要在雨天、阴天或露水未干时取材料。因为健壮的植株和晴天光合呼吸旺盛的组织,有自身消毒作用,这种组织一般

尿培养样本采集与送检五问

一问:尿培养样本的采集方法有哪几种?    1. 清洁中段尿。尽量留取早晨第一次尿液,先用清水清洗会阴部,然后消毒会阴部和尿道口,最后用无菌干棉球擦干消毒剂,弃去开始的尿液,以冲刷尿道口的细菌,留取能代表膀胱部分病原菌的中段尿10~20ml,直接排入专用的无菌广口容器中。  2. 导尿管尿。方法一:

细胞培养标本的采集及保存

细胞培养标本的采集及保存:1. 血清:全血标本请于室温放置2小时或4℃过夜后于1000 x g离心20分钟,取上清即可检测,或将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。2. 血浆:可用EDTA或肝素作为抗凝剂,标本采集后30分钟内于2 - 8° C 1000 x g离心15分钟,或将标本放

血液细菌培养标本的采集和处理

  1.采血时机  在患者发热期间越早越好,最好在抗菌治疗前,以正在发冷发热前半个小时为宜。  2.采血次数及间隔  急性发热性疾病需马上做抗菌治疗或急性骨髓炎、化脓性关节炎等要紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2份标本。对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min;必要时次日

关于淋球菌培养的标本采集介绍

  男性患者前尿道取材时,应用细小无菌棉拭伸入尿道2~4cm处,略作捻转后取出。女性患者宫颈取材时,应用温水湿润扩阴器,然后将棉拭插入宫颈管内1cm处,稍转动并停留半分钟后取出。从直肠取材时,应将棉拭插入肛门2.5cm处。检查淋菌性咽炎时,应从扁桃体或扁桃体窝处取材。