中国实验动物学科发展40年

实验动物学是一门新兴交叉学科,它集成了生物学、兽医学、生物工程、医学、药学、生物医学工程等学科的理论和方法,以实验动物和动物实验技术为研究对象,产生实验动物资源、动物模型资源、动物实验技术、生物信息和动物实验设备等,为生命科学、医学、药学、食品、农业、环境、航空航天等相关学科发展提供系统性生物学材料和相关技术。实验动物学科既为上述相关学科的基础研究提供创新的资源和技术,也为相关学科的成果向应用转化提供评价工具,因此,实验动物学科是国家科技创新体系的支撑条件,也是国家科技成果转化和生物医药等行业发展的支撑条件,同时也是生物安全、环境安全和食品安全等国家重大安全领域不可或缺的保障条件。 实验动物是指经人工培育或人工改造,对其携带的微生物实行控制;遗传背景明确、来源清楚,用于科学实验、药品、生物制品的生产和检定及其他科学实验的动物。目前,常规的实验动物资源包括实验动物物种资源、遗传工程动物资源、人源化动物资源、人类疾病动物资源等......阅读全文

动物实验与动物仪器

  一、动物实验的主要目的   医疗器械的动物试验的主要目的是研究医疗器械的安全性,通常医学研究中的动物试验研究的主体可能是一种新诊治方法和原理,或一种新的药物的作用机理等等,它的主要研究目的是机理、有效性和安全性,这个研究可能与器械的使用存在联系,也可能不存在联系,且研究中可能没有涉及到植入或与

实验动物实验标本的采集实验——实验动物尿液采集

实验材料实验动物试剂、试剂盒水仪器、耗材收集器实验步骤尿液的采集 常用的采集方法较多,一般在实验前需给动物灌服一定量的水。(1) 代谢笼法:此法较常用,适用于大、小鼠。将动物放在特制的笼内。一般需收集 5 小时以上的尿液,最后取平均值。(2) 导尿法:常用于雄性兔、狗。动物轻度麻醉后,固定于手术台上

实验动物实验标本的采集实验——实验动物脑脊液采集

实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 狗、兔脑脊液的采集:通常采取脊髓穿刺法,穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物麻醉后侧卧位固定,头尾部尽量弯向腰部,去被毛。消毒后一手固定穿刺部位的皮肤,腰穿针垂直刺入,当有落空感及动物的后肢跳动时,针已达椎管内,抽去针芯,即

实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法

实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法:①剪尾采血:适用于少量采血,如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后,将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。

实验动物实验标本的采集实验——实验动物腹水的采集

实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤抽取大鼠、小鼠的腹水时,抓取固定动物,使动物腹部朝上,消毒皮肤,针头在腹股沟和腹中线之间刺人腹腔,腹压高时腹水自然流出,腹水少时可用注射器抽取。

动物实验时动物的选择

为了获得理想的实验结果,必须根据实验目的选择适宜的观察对象,在选择动物时,需考虑如下因素: 种属的选择不同种属的动物对同一疾病病因刺激的反应程度会有很大的差异。在选择实验动物时,尽可能选择对刺激因素较为敏感且与人类接近的种属。例如在进行发热实验时,宜首选家兔:在进行过敏反应和变态反应实验时,宜首选豚

动物免疫实验

实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应,通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面,加入抗血清,抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物,洗去未结合抗体,然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗(抗体的抗体),二抗与抗体结合,洗去未结合二抗,加底物显色剂显色,在一定波长下测定

动物免疫实验

实验概要将某种蛋白注射新西兰大耳兔产生免疫反应,通过ELISA检测免疫产生的抗体。实验原理将抗原吸附在固相载体表面,加入抗血清,抗体和抗原在载体表面形成抗原-抗体复合物,洗去未结合抗体,然后加入辣根过氧化物酶标记的二抗(抗体的抗体),二抗与抗体结合,洗去未结合二抗,加底物显色剂显色,在一定波长下测定

实验动物标记实验

实验材料兔子 小鼠试剂、试剂盒3%~5%苦味酸 0.5%中性品红 2%硝酸银实验步骤1. 染色法 适用于小动物,如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上,以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有:3%~5%苦味酸溶液(黄色)、0.5%中性品红(红色)、2%硝酸银(咖啡色)。标记的原则是

实验动物标记实验

实验材料 兔子 小鼠试剂、试剂盒 3%~5%苦味酸 0.5%中性品红 2%硝酸银实验步骤 1. 染色法 适用于小动物,如兔子、大鼠、小鼠等。此方法是将化学药品涂在动物的被毛上,以不同颜色来区分动物。常用的化学药品有:3%~5%苦味酸溶液(黄色)、0.5%中性品红(红色)、2%硝酸银(咖啡色)

啮齿类实验动物——实验动物兽医护理

实验动物兽医护理(上篇)上期小华介绍了很多动物福利的内容,那么实验动物的福利该如何具体实施?随着全球实验动物行业的发展和规范,这中间对于兽医的要求越来越高,起到与IACUC(实验动物管理与使用委员会)同等重要的监督作用。这期小华将跟您聊一聊实验动物的兽医护理在实验动物福利的具体施行方面应注意的问题。

实验动物实验标本的采集实验

(1) 大鼠、小鼠的采血方法:①剪尾采血:适用于少量采血,如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后,将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉,让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。②眼眶后静脉丛采血:一手拇指及食指抓住鼠两耳之

实验动物的取血实验

实验方法原理实验动物的采血方法很多,按采血部位不同,可分为:尾部采血(割、剪鼠尾),鼠尾刺血法,眼眶静脉丛采血,断头采血,心脏采血,颈静脉(动脉)采血,腹主动脉采血,股动(静)脉采血,耳缘剪口采血,耳静脉采血,后肢外侧小隐静脉采血,前肢内侧皮下头静脉采血,毛细血管采血,翼下采血等。实验材料家兔狗豚鼠

动物DNA提取实验

实验方法原理 在浓氯化钠(1-2 mol/L)溶液中,脱氧核糖核蛋白的溶解度很大,核糖核蛋白的溶解度很小,在稀氯化钠(0.14 mol/L)溶液中,脱氧核糖核蛋白的溶解度很小,核糖核蛋白的溶解度很大。因此,可利用不同浓度的氯化钠溶液,将脱氧核糖核蛋白和核糖核蛋白从样品中分别抽提出来。 将抽提得的

动物DNA提取实验

标签:                                    动物肝脏                                    DNA                                    提取动物肝脏DNA提取可以:(1)用于法医学鉴定;(2)

动物实验技术2

2.于第①、②、③管内分别加乙型溶血性链球菌培养物、四联球菌培养物、生理盐水各0.5m1。 3.上述3支试管每管加入5%氯化钙0.2ml,摇匀,置37℃水浴10min,待血液凝固,再继续37℃水浴约30min,观察结果。 【结果】 l.观察时,可将小试管慢慢倾斜至30°

动物实验技术1

实验动物常用作病原微生物的分离和鉴定,进行动物接种实验应选择易感性高、健康的动物。常用的动物有小鼠、豚鼠和家兔。根据实验要求可通过皮下、皮内、肌肉、腹腔、静脉等途径注射。感染动物死亡后,必要时进行尸体解剖并作病原体的检查。 一、实验动物接种法 (一)小白鼠接种法 【

动物RNA提取实验

SV总RNA试剂盒提取法 Trizol试剂提取法             实验方法原理 SV Total RNA Isolation System (SV 总RNA

实验动物免疫方案

实验材料兔子 小鼠 大鼠 绵羊 母鸡试剂、试剂盒抗原 Elisa试剂盒 消毒酒精 碘酒仪器、耗材注射器 针头 一次性手套 剪刀 镊子 动物固定架 塑料放血管 试管 血管夹 离心机 冰箱 手术器械用免疫学的基本理论和技术来诊断、预防和治疗疾病,并在此基础上开展的采用人工方法向机体输入由他人或动物产生的

实验动物处死方法

实验动物的处死方法很多,应根据动物实验目的、实验动物品种(品系)、以及需要采集标本的部位等因素,选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法,都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下,使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意,首先要保证实验人员的安全;其次要确认实验动物已经死

实验动物免疫方案

实验动物免疫方案1、抗原: 蛋白质、多肽、细胞器、细胞、组织等。2、免疫方式:皮下注射、腹腔注射、静脉注射、肌肉注射等。3、不同动物免疫所需抗原量(以蛋白免疫为例)>18-20kDa                 

实验动物免疫方案

1、抗原: 蛋白质、多肽、细胞器、细胞、组织等。2、免疫方式:皮下注射、腹腔注射、静脉注射、肌肉注射等。3、不同动物免疫所需抗原量(以蛋白免疫为例)>18-20kDa

动物实验技术1

实验动物常用作病原微生物的分离和鉴定,进行动物接种实验应选择易感性高、健康的动物。常用的动物有小鼠、豚鼠和家兔。根据实验要求可通过皮下、皮内、肌肉、腹腔、静脉等途径注射。感染动物死亡后,必要时进行尸体解剖并作病原体的检查。一、实验动物接种法(一)小白鼠接种法【材料】1.小白鼠。2.无菌注射器(1ml

实验动物捉拿、固定

捉拿和保定是动物实验操作技术中最基本最简单而又很重要的一项基本功。捉拿和保定各种动物的原则是:保证实验人员的安全,防止动物意外性损伤,禁止对动物采取粗暴动作。动物一般都是害怕陌生人接触其身体的,对于非条件性的各种剌激则更是进行防御性反抗。在捉拿、保定时,首先应慢慢友好地接近动物,并注意观察其表情,让

实验动物捉拿、固定

捉拿和保定是动物实验操作技术中最基本最简单而又很重要的一项基本功。捉拿和保定各种动物的原则是:保证实验人员的安全,防止动物意外性损伤,禁止对动物采取粗暴动作。动物一般都是害怕陌生人接触其身体的,对于非条件性的各种剌激则更是进行防御性反抗。在捉拿、保定时,首先应慢慢友好地接近动物,并注意观察其表情,让

实验动物的选择

动物实验和实验动物都要求达到实验室操作规范(good laboratory practice, GLP)和标准操作程序(standard operating procedure, SOP)这些规范和操作对实验动物和实验室条件,工作人员素质,技术水平和操作方法都要求标准化。所有药物的安全评价试

动物RNA提取实验

实验方法原理 SV Total RNA Isolation System (SV 总RNA 纯化系统)可在1小时内从组织、培养细胞和白细胞中提取纯化完整总RNA,方法简单、快速。该系统以膜为基础,根据组织类型的不同,每次最多可纯化60 mg 组织。系统包含DNase 处理步骤,直接在小离

动物实验基本操作技术之一“实验动物抓取与固定”

(一)小鼠用右手提起小鼠尾部,放在实验台上,当其向前爬行时,左手抓住两耳及头颈部皮肤,再置小鼠于左手心,拉直四肢并用手指夹住肢体固定。右手可行注射或其它操作。小鼠固定器及固定器固定法(二)大鼠右手轻轻抓住大鼠尾部向后轻拉,左手抓紧鼠两耳及头颈部皮肤,并将其固定在左手中,右手可行注射或其它操作。大鼠固

动物实验中如何进行动物称重?

动物实验是科学研究的重要手段,是现代科学技术的重要组成部分,因此直接影响着研究课题的成败和水平的高低,它的提高和发展,又会把许多领域课题的研究引入新的境界。特别是在在生命科学研究领域内,动物实验更是重要而且普遍,它在抗体研发、药物研究、新疗法研究、基因表达和敲除等等研究领域都是必不可少而又至关重要的

实验动物组织标本的制备实验

实验材料 家兔豚鼠白鼠试剂、试剂盒 营养液仪器、耗材 注射器线浴槽实验步骤 通常选用家兔、豚鼠、大白鼠或小白鼠等动物,禁食24 小时。击头致昏,以避免麻醉或失血对胃肠道机能的影响。立即打开腹腔,取出所需的胃、肠、胆囊等。去除附着的系膜或脂肪等组织。迅速放入充氧(或95%O2+5%CO2