大鼠、小鼠眼部取血实验

实验步骤可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管(一端烧制拉成直径1~1.5mm的毛细管)。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定,轻轻压迫颈部两侧,阻碍头部静脉回流,使眼球充分外突,球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管,将其插入内眦部,向眼底方向旋转插入。插入深度:小鼠为2~3mm,大鼠为4~5mm。因血压关系,血液自行流入管内,拔出针头或玻管,放松左手。为防止穿刺孔出血,可用纱布压迫眼球,达到止血目的。数分钟后可在同一穿刺孔重复取血。小鼠一次可采得血0.2ml,大鼠0.5ml。......阅读全文

实验动物的取血标准操作规程(SOP)

名称:实验动物的取血关键词:动物,取血,方法目的:规范实验动物(家兔、狗,豚鼠)取血的方法和途径,主体内容:(一)家兔1.耳缘静脉取血法选好耳缘静脉,拔去被毛,用二甲苯或酒精涂擦局部,小血管夹夹紧耳根部,使血管充血扩张。术者持粗针头从耳尖部血管,逆回流方向刺入静脉内取血,或用刀片切开静脉,血液自动流

小鼠大鼠的采血方法

割(剪)尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3~0.5cm,让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取,采血结束,伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口,割破尾动脉

大鼠灌注取脑标准操作规程(SOP)

名称:大鼠灌注取脑 标准操作规程(SOP)关键词:大鼠 灌注取脑目的: 完整取出大鼠脑部(取材)操作步骤流程:1)麻醉 2)开胸 3)心脏左心室穿针,剪开右心耳 4)生理盐水冲水 5)4%多基甲醛固定 6)取脑 7)保存或切片.1 多聚甲醛的配置:一般方法为:4%多聚甲醛PBS缓冲液配法:称取40g

大鼠及小鼠麻醉剂量

IM:肌肉注射   IV:静脉注射  SC:皮下注射  IP:腹腔注射药    物剂量途径麻醉前给药    Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC*IP*镇静剂    AcepromazineDiazepamKetami

大鼠及小鼠麻醉剂量

IM:肌肉注射   IV:静脉注射  SC:皮下注射  IP:腹腔注射药    物剂量途径麻醉前给药    Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC*IP*镇静剂    AcepromazineDiazepamKetami

小鼠、大鼠安乐死方法

投稿人:郭晓冲 中国医科大学动物部写给看文献的你们 系列四:小鼠、大鼠安乐死方法!!!当实验动物完成了它的使命后,它应该有权利没有痛苦的死去。安乐死是人类文明的产物,对实验动物进行安乐死也是文明的体现。美国兽医协会推出的动物安乐死指南(AVMAGuidelines for the Euthanasi

大鼠及小鼠麻醉剂量参考

IM:肌肉注射 IV:静脉注射 SC:皮下注射 IP:腹腔注射药    物剂量途径麻醉前给药    Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC*IP*镇静剂    AcepromazineDiazepamKetamine 0

大鼠及小鼠麻醉剂量参考(二)

药 物 剂量 途径 麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 gBW IM, IV,SC 镇静剂 Acepromazine Diazepam Xylazine Ketamine 0.5 mg/100 gBW 0.25 mg/100 gBW 1.3 mg/100 gBW 2.

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧

1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直,绷紧,这是成功的第一步。小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定。在一些非凡

大鼠及小鼠麻醉剂量参考(一)

IM:肌肉注射 IV:静脉注射 SC:皮下注射 IP:腹腔注射 药 物 剂量 途径 麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 gBW 0.12 mg/100 gBW IM, IV,SC* IP* 镇静剂 Acepromazine Diazepam Ketamine 0.07

Hamilton微量注射器在大鼠、小鼠等实验动物注射上的应用...

Hamilton微量注射器在大鼠、小鼠等实验动物注射上的应用方法和注射技巧1. 皮下注射:皮下注射较为简单,一般都取背部及后腿皮下。小鼠通常在背部皮下注射,将皮肤拉起,注射针刺入皮下,把针尖轻轻向左右摆动,容易摆动则表明已刺入皮下,然后注射药物。拔针时,以手指捏住针刺部位,可防止药液外漏。熟练者可把

科学家让不育小鼠生产大鼠精子

研究人员使用一种名为囊胚互补的技术在不育小鼠体内生成了大鼠精子细胞。这项进展8月4日发表于《干细胞报告》杂志。“研究表明,我们可以使用无菌动物作为宿主,从其他动物物种中生成生殖细胞。”瑞士苏黎世联邦理工学院干细胞生物学家、论文通讯作者Ori Bar-Nur说,“除了概念上的进步,该方法还可以用于在更

小鼠免疫实验

实验方法原理 实验材料 任意品系小鼠(6~8 周)试剂、试剂盒 PBS完全和不完全弗氏佐剂抗原仪器、耗材 22-G 注射针头带塞的 3 ml 注射器双头带塞的连接器无菌剪刀剃须刀片解剖刀片木制涂棒实验步骤 1. 准备等体积 PBS 含 25~100 μg 抗原和弗氏完全佐剂的乳化液(200~40

啮齿类实验动物临床观察:动物体征异常临床症状(三)

写在前面   发现动物行为或身体的异常变化是实验动物使用者日常工作的重要部分。在日常工作中,您有许多机会可以观察动物的正常表现和行为。观察时,头脑中要了解某只、某特殊群体或特定类型动物的正常表现是什么。当我们发现某动物表现与正常不同时,那么该变化就可以称为临床症状,因为它可能是某种临床(或可见)疾病

豚鼠的血清和血浆的制备及取血的方法

一、豚鼠的取血法(1)足背中静脉取血:助手固定动物,将其后肢膝关节伸直捉到实验者面前,实验者将动物脚背面用酒精消毒,找出背中足静脉后,以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端,右手拿注射器针刺入静脉。拔针后立即出血,呈半球状的隆起。采血后,用纱布或脱脂棉压迫止血。反复取血时,两后肢交替使用。(2)心脏取血:

豚鼠的取血法及血清和血浆的制备方法

一、豚鼠的取血法(1)足背中静脉取血:助手固定动物,将其后肢膝关节伸直捉到实验者面前,实验者将动物脚背面用酒精消毒,找出背中足静脉后,以左手的拇指和食指拉住豚鼠的趾端,右手拿注射器针刺入静脉。拔针后立即出血,呈半球状的隆起。采血后,用纱布或脱脂棉压迫止血。反复取血时,两后肢交替使用。(2)心脏取血:

眼部水肿案

  谭某某,女,62岁。2007年12月9日初诊。患者自述眼部水肿已有半年,偶有下肢肿,西医检查肝肾功能均为正常,眼睛经常流泪,夜间睡眠不实,梦多,白天嗜睡,睡醒则汗出,喜饮,素来脾气急躁。食可,大便偏干,小便正常。舌胖大而暗,舌下有瘀斑,脉弦滑。为高年气血瘀滞,而致水湿内停,发为水肿。拟以当归

大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得

关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直,绷紧,这是成功的第一步。小鼠性情较温顺,一般不会咬人,比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向前挣扎爬行时,用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤,将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部,即可将小鼠完全固定

大鼠、小鼠心脏干细胞(祖细胞)分离培养方法

心脏病是引起人类死因的一种代表性疾病,如果失去了心肌细胞,就会引起心力衰竭等心脏疾病。心肌细胞几乎没有再生能力,一旦失去就不能再生。从前认为心脏当中没有干细胞,所以心肌没有再生能力,但是近年的研究表明,成体心脏内部也会存在一些心肌干细胞。细胞培养操作:1.摘取出心脏,去掉心脏包膜,把心尖部分剪下来(

谷歌姐妹公司Verily正研制一种无痛取血仪器

  谷歌母公司Alphabet旗下Verily公司,前身为谷歌生命科学公司(Google Life Sciences),今年来一直在研制一个设备,该设备的设计目的是利用一种微型针和磁铁的系统来无痛收集血液。   由Verily的首席技术官布莱恩-奥蒂斯(Brian Otis)管理的硅谷团队,已经

小鼠智力测试实验

实验概要用经典的水迷宫法测定小鼠的智力。 主要设备自制梯子水池加热器 实验材料 小鼠 实验步骤1. 正式训练前将动物放在终点梯子附近,让其自行爬上三次。2. 第1 天训练,训练前,让动物自行爬梯一次。将挡板置于A 位置,动物在A 点入水,放时将小鼠面向池壁。训练时间定为120秒,如果在120秒内,动

分离小鼠胚胎实验

分离小鼠胚胎可以用于:(1)体外培养小鼠胚胎,摸索适宜培养条件。(2)使用胚胎进行发育生物学研究。实验方法原理胚胎是怀孕最初两个月内的幼体。囊胚、胚的早期发育和胚胎发育是一个连续过程。在体节时期,三个胚层都发生了变化。外胚层在背部中线凹陷成沟,称神经沟,沟的两岸称神经脊。神经脊逐渐接近、愈合,致使神

分离小鼠胚胎实验

            实验方法原理 胚胎是怀孕最初两个月内的幼体。囊胚、胚的早期发育和胚胎发育是一个连续过程。在体节时期,三个胚层都发生了变化。外胚层在背部中线凹陷成沟,称神经沟,沟的两岸称神经脊。神经脊逐渐接近、愈合,致使神经演变为纵贯胚体的神经管。神经管和神经

分离小鼠胚胎实验

实验方法原理 无菌条件下切除孕鼠(已知怀孕时间)子宫,分离胚胎。实验材料 DBSS试剂、试剂盒 70%乙醇仪器、耗材 培养皿尖镊子尖剪刀超净工作台本生灯实验步骤 1. 交配。将分笼的雄鼠和雌鼠合笼进行交配,雌鼠 3 天后可进入动情期,此时交配的成功率最高。这一过程可以有计划地进行,使胚胎在适宜的时间

小鼠耐力测试实验

实验概要本实验主要目的是测定小鼠的耐力。 主要设备水池 实验材料小鼠 实验步骤 1.        以小鼠体重10%的重物系于小鼠尾部。 2.        将其投入20℃左右(有的资料为24℃)水中。 3.        记录疲劳时间,以小鼠头部浸于水下10s为小鼠疲劳时间。(有资料采用小鼠头部浸

实验动物采血完全指南

采血方法的选择,决定于实验的目的所需血量以及动物种类。凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定,血液涂片以及酶活性微量分析法等,可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时,若需反复多次,应自远离心脏端开始,以免发生栓塞而影响整条静脉。例如,研究毒物对肺功能的影响、血液

生物中什么实验尽量取上清液

因为鸡血里的细胞核力含有DNA,经过离心,研磨,他的DNA从细胞核力分离出来,细胞核沉淀到底部,上清液里含有的红细胞蛋白都漂浮在上清液里,细胞核比较重,沉淀在底部,所以要出去没用的东西,只要含有DNA的细胞核.

实验动物血液标本的采集

实验概要本文介绍了实验动物(小鼠和大鼠、豚鼠、兔、猴等)血液标本的采集方法。实验步骤1. 小鼠和大鼠血液标本的采集   1) 割(剪)尾采血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒,然后浸在45℃左右的温水中数分钟,使尾部血管充盈。再将尾擦干,用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0

大鼠与小鼠肥胖模型饲料和造模注意事项

一、大鼠小鼠肥胖模型饲料分类和选择大鼠和小鼠的肥胖模型饲料有很多种,如何选择所要使用的模型饲料呢,首先要了解模型饲料的分类。从使用的原料角度,模型饲料分为两类:日粮型,纯化型⒈日粮型是用普通饲料(所谓“基础饲料”)按一定比例与脂肪、蛋白质等原料混合而成,特点是成本和价格较低,缺点是其中有大量、甚至未

大鼠肝细胞分离实验

实验方法原理经肝门静脉或肝门静脉分支插管,用无钙缓冲液灌洗肝 15 min,再用酶溶液灌洗 15 min。收集和洗涤细胞,计数有活力的肝细胞。试剂、试剂盒L-15 Leibovitz 培养液Ham F12 培养液胞培养液HMM SF无钙 HEPES 缓冲液胶原蛋白酶液5% 戊巴比妥钠肝素仪器、耗材聚