小鼠、大鼠安乐死方法
投稿人：郭晓冲 中国医科大学动物部写给看文献的你们 系列四：小鼠、大鼠安乐死方法！！！当实验动物完成了它的使命后，它应该有权利没有痛苦的死去。安乐死是人类文明的产物，对实验动物进行安乐死也是文明的体现。美国兽医协会推出的动物安乐死指南（AVMAGuidelines for the Euthanasia of Animals）提供了可以参考的安乐死方法。（为什么不用中国的？因为中国的指南还等待着各位去努力制定。）指南内推荐的方法，是被广泛接受和认可的方法，给动物带来的痛苦和紧张都很小。我把我认为有用的部分摘录如下，更多内容请大家查阅上述指南。推荐的小鼠、大鼠安乐死方法：1 过量麻醉：静脉或腹腔注射3倍麻醉剂量的巴比妥类药物。2 颈椎脱臼：动物需小于200g。3 二氧化碳窒息：将动物放入清洁的容器内，缓慢通入二氧化碳。随着二氧化碳浓度的升高，动物会慢慢的没有痛苦的死去。一般10分钟足以使动物死亡，但使用二氧化碳窒息法安乐死的......阅读全文
小鼠、大鼠安乐死方法
投稿人：郭晓冲 中国医科大学动物部写给看文献的你们 系列四：小鼠、大鼠安乐死方法！！！当实验动物完成了它的使命后，它应该有权利没有痛苦的死去。安乐死是人类文明的产物，对实验动物进行安乐死也是文明的体现。美国兽医协会推出的动物安乐死指南（AVMAGuidelines for the Euthanasi
小鼠大鼠的采血方法
割（剪）尾采血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器(刀或剪刀)割去尾尖0.3～0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉
大鼠、小鼠心脏取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。
大鼠、小鼠断头取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精剪刀实验步骤 这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时。
大鼠、小鼠心脏取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 先将动物仰卧固定，左手食指在左侧第3～4肋间触到心尖搏动最强处，右手用连有针头的注射器在此穿刺。由于心脏跳动血液进入注射器。小鼠约0.5～0.6ml，大鼠约0.8～1.2ml。
大鼠及小鼠麻醉剂量
IM:肌肉注射 IV:静脉注射 SC:皮下注射 IP:腹腔注射药 物剂量途径麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC*IP*镇静剂 AcepromazineDiazepamKetami
大鼠及小鼠麻醉剂量
IM:肌肉注射 IV:静脉注射 SC:皮下注射 IP:腹腔注射药 物剂量途径麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC*IP*镇静剂 AcepromazineDiazepamKetami
大鼠、小鼠眼部取血实验
可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管（一端烧制拉成直径1～1.5mm的毛细管）。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定，轻轻压迫颈部两侧，阻碍头部静脉回流，使眼球充分外突，球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管，将其插入内眦部，向眼底方向旋转插入。插入深度：小鼠为2～
大鼠、小鼠断头取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材小动物实验台注射器酒精剪刀实验步骤这需要二人配合操作，采血者用左手将大（小）鼠的头颈部握紧，右手抓住躯干和后肢，将颈部暴露。助手用剪刀将鼠颈剪断（用力要大），采血者应迅速将大（小）鼠倒置，让血滴入容器。此方法用于实验结束后血液采集量大时
大鼠、小鼠眼部取血实验
实验步骤可采用眼球后静脉丛取血法。用7号针头连接1ml的注射器或10ml长玻璃管（一端烧制拉成直径1～1.5mm的毛细管）。取血时左手抓住鼠两耳之间的皮肤使头固定，轻轻压迫颈部两侧，阻碍头部静脉回流，使眼球充分外突，球后静脉丛充血。右手持注射器或玻管，将其插入内眦部，向眼底方向旋转插入。插入深度：小
大鼠、小鼠大血管取血实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。
大鼠、小鼠大血管取血实验
实验方法原理可采用颈动（静）脉、股动（静）脉、腹主动脉等方法取血。在这些部位取血均须麻醉后固定动物，然后作动（静）脉分离手术，使其充分暴露，用注射器沿大血管平行方向刺入，抽取所需血量。或直接用剪刀剪断大血管吸取，但切断动脉时，要防止血液喷溅。 实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤
大鼠及小鼠麻醉剂量参考
IM:肌肉注射 IV:静脉注射 SC:皮下注射 IP:腹腔注射药 物剂量途径麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 g BW0.12 mg/100 g BW IM, IV, SC*IP*镇静剂 AcepromazineDiazepamKetamine 0
大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 注射器实验步骤 先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
大鼠、小鼠剪尾尖取血实验
实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧
1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些非凡
大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材注射器实验步骤先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
大鼠及小鼠麻醉剂量参考（二）
药 物 剂量 途径 麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 gBW IM, IV,SC 镇静剂 Acepromazine Diazepam Xylazine Ketamine 0.5 mg/100 gBW 0.25 mg/100 gBW 1.3 mg/100 gBW 2.
大鼠、小鼠剪尾尖取血实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
大鼠及小鼠麻醉剂量参考（一）
IM:肌肉注射 IV:静脉注射 SC:皮下注射 IP:腹腔注射 药 物 剂量 途径 麻醉前给药 Atropine 0.002-0.005 mg/100 gBW 0.12 mg/100 gBW IM, IV,SC* IP* 镇静剂 Acepromazine Diazepam Ketamine 0.07
科学家让不育小鼠生产大鼠精子
研究人员使用一种名为囊胚互补的技术在不育小鼠体内生成了大鼠精子细胞。这项进展8月4日发表于《干细胞报告》杂志。“研究表明，我们可以使用无菌动物作为宿主，从其他动物物种中生成生殖细胞。”瑞士苏黎世联邦理工学院干细胞生物学家、论文通讯作者Ori Bar-Nur说，“除了概念上的进步，该方法还可以用于在更
大鼠、小鼠心脏干细胞（祖细胞）分离培养方法
心脏病是引起人类死因的一种代表性疾病，如果失去了心肌细胞，就会引起心力衰竭等心脏疾病。心肌细胞几乎没有再生能力，一旦失去就不能再生。从前认为心脏当中没有干细胞，所以心肌没有再生能力，但是近年的研究表明，成体心脏内部也会存在一些心肌干细胞。细胞培养操作：1.摘取出心脏，去掉心脏包膜，把心尖部分剪下来（
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得
关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定
老药新用或可治疗小鼠与大鼠心脏损伤
中新网北京8月27日电 (记者 孙自法)施普林格·自然旗下专业学术期刊《自然-心血管研究》最新发表一篇生物学论文称，研究表明，常用于治疗多发性硬化症的药物醋酸格拉替雷(Glatiramer-acetate)，可在小鼠和大鼠中修复心脏病发作或心力衰竭后的心脏损伤。该论文介绍，心力衰竭是全球发病率和死亡
大鼠与小鼠肥胖模型饲料和造模注意事项
一、大鼠小鼠肥胖模型饲料分类和选择大鼠和小鼠的肥胖模型饲料有很多种，如何选择所要使用的模型饲料呢，首先要了解模型饲料的分类。从使用的原料角度，模型饲料分为两类：日粮型，纯化型⒈日粮型是用普通饲料（所谓“基础饲料”）按一定比例与脂肪、蛋白质等原料混合而成，特点是成本和价格较低，缺点是其中有大量、甚至未
科学家在小鼠体内生成大鼠前脑组织
4月25日，中国科学院脑科学与智能技术卓越创新中心杨辉组和周海波组、美国得克萨斯大学西南医学中心吴军组联合中国科学院动物研究所郭帆组，在《细胞》（Cell）上在线发表了题为Generation of rat forebrain tissues in mice的研究论文。该研究提出了高效的异种囊胚
老药新用或可治疗小鼠与大鼠心脏损伤
施普林格·自然旗下专业学术期刊《自然-心血管研究》最新发表一篇生物学论文称，研究表明，常用于治疗多发性硬化症的药物醋酸格拉替雷(Glatiramer-acetate)，可在小鼠和大鼠中修复心脏病发作或心力衰竭后的心脏损伤。 该论文介绍，心力衰竭是全球发病率和死亡率的一个主要原因，过去的研究强调
从全血里纯化单个核细胞（人、大鼠和小鼠）
所需仪器：XL03RH型控温离心机（低速冷冻离心机，可使用24*15ml离心管，水平转子）；抽血注射器（大小与抽血体积相一致）试剂：Optiprep；Tricine-缓冲盐溶液（TBS,仅小鼠血）0.85%（质量浓度）NaCl，10mmol/L Tricine-NaOH（ph = 7.4）。 方法：
－中科院动物所：大鼠小鼠“碰出”新型干细胞
自然界中偶尔会出现不同物种之间的杂交，动物界包括斑马（斑马和马）、皮弗洛牛（北美野牛和肉牛）以及众所周知的骡子（驴和马），而植物界的杂交水稻就是人们最耳熟能详的例子。这种暧昧关系的重要作用并不在于制造后代，而在于利用杂交的优势产生第三种和亲代完全不同的品种。不过在自然状态下，野生动物发生杂交行为
如何解决大鼠尾静脉注射比小鼠还难的问题？
其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似，只是...... 因为大鼠，个体更大，难固定、易挣扎；尾巴颜色深，不易辨别血管；尾巴质地更粗糙，扎针力度要更大； 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴，可见大鼠尾巴的质地粗糙，难辨别血管的特点： 小鼠尾巴（左）和大鼠尾巴（右） 大鼠尾静