电穿孔转染真核细胞实验

电穿孔转染哺乳动物细胞 植物原生质体细胞 实验材料 哺乳动物细胞 试剂、试剂盒 完全培养液 电穿孔缓冲液 仪器、耗材 电穿孔仪器 电击池 实验步骤 1. 在完全培养液中培养特转染细胞至对数生长晚期,4℃ 640 g 离心5 min,收集细胞。 2. &......阅读全文

电穿孔转染真核细胞实验

实验材料 哺乳动物细胞试剂、试剂盒 完全培养液电穿孔缓冲液仪器、耗材 电穿孔仪器电击池实验步骤 1.  在完全培养液中培养特转染细胞至对数生长晚期,4℃ 640 g 离心5 min,收集细胞。 2.  将细胞沉淀用其半量体积的预冷电穿孔缓冲液重悬洗涤,4℃ 640 g 离心5 min。3.  对于稳

电穿孔转染真核细胞实验

电穿孔转染哺乳动物细胞 植物原生质体细胞             实验材料 哺乳动物细胞

电穿孔转染真核细胞实验——电穿孔转染哺乳动物细胞

电穿孔法应用高压电击短暂或稳定地将DNA导人细胞,是一种目前大受好评的方法。它适用于多数类型的细胞,既可产生高频率的稳定转染,又可产生短暂的基因表达,并且由于其所需步骤甚少,因而比其他技术更为容易。实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒完全培养液电穿孔缓冲液仪器、耗材电穿孔仪器电击池实验步骤1.  在完全

电穿孔转染真核细胞实验——植物原生质体细胞

电穿孔法应用高压电击短暂或稳定地将DNA导人细胞,是一种目前大受好评的方法。它适用于多数类型的细胞,既可产生高频率的稳定转染,又可产生短暂的基因表达,并且由于其所需步骤甚少,因而比其他技术更为容易实验材料原生质体细胞试剂、试剂盒电穿孔缓冲液原生质溶液仪器、耗材尼龙筛网锥形管实验步骤1.  将小心切成

细胞转染电穿孔转染法

电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70% 的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以大大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率

真核细胞转染实验

学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法——脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。实验材料真核细胞试剂、试剂盒脂质体 转染液仪器、耗材CO2孵箱 离心管 6孔板

真核细胞转染实验

真核细胞的转染 实验材料 真核细胞 试剂、试剂盒 脂质体 转染液

电穿孔转染-DNA-实验

电穿孔可以有效地转染磷酸钙-DNA 沉淀物等其他方法转染效果不好的细胞系。但是,与其他转染方法一样,未使用过的细胞系进行电穿孔转染的实验条件要经过优化。本实验来源于分子克隆实验指南(第三版)下册,作者:〔美〕J. 萨姆布鲁克 D.W. 拉塞尔。实验材料指数生长的哺乳动物细胞培养液试剂、试剂盒Giem

电穿孔转染-DNA-实验

实验材料 指数生长的哺乳动物细胞培养液试剂、试剂盒 Giemsa 染液甲醇磷酸盐缓冲液丁酸钠载体 DNA细胞生长培养基仪器、耗材 组织培养皿基因脉冲器 II电穿孔设备与电转化池Sorvall H1000B 转子或类似设备实验步骤 材料缓冲液与溶液贮存液、缓冲液与试剂的成分见附录 1。稀释贮存液至所需

电穿孔法稳定转染

方案27.12 脂质体介导的瞬时转染             实验材料 L8057-Y10细胞 D-PBSA

电穿孔法稳定转染

            实验材料 L8057-Y10细胞 D-PBSA 仪器、耗材 培养瓶 培养板

电穿孔法稳定转染

实验材料L8057-Y10细胞D-PBSA仪器、耗材培养瓶培养板F12 FB培养基G418(Invitrogen)选择性培养基电穿孔电穿孔专用杯电穿孔仪II电穿孔仪-II配套的效能扩增器-Plus实验步骤表达载体与 DNA 制备:pSVTKGH,线性化 [ Selden et al.,1986]此载

电穿孔转染-DNA-实验

            实验材料 指数生长的哺乳动物细胞培养液 试剂、试剂盒 Giemsa 染液 甲醇 磷酸盐缓冲液

真核细胞的转染实验步骤

1.  在6孔板中接种1~3×105细胞/孔,加入2ml完全培养基,置CO2孵箱中37℃培养过夜。 2.  待细胞长到50-80%单层时,在无菌离心管中配制如下溶液: i.  溶液A:将4?g待转染的超纯DNA稀释到250?l无血清培养基中,静置5min ii.  溶液B:将2-25?l Lipo

真核细胞的转染实验步骤

1.  在6孔板中接种1~3×105细胞/孔,加入2ml完全培养基,置CO2孵箱中37℃培养过夜。2.  待细胞长到50-80%单层时,在无菌离心管中配制如下溶液: i.  溶液A:将4?g待转染的超纯DNA稀释到250?l无血清培养基中,静置5minii.  溶液B:将2-25?l Lipofec

磷酸钙介导的真核细胞转染实验——高效转染法

实验材料真核细胞试剂、试剂盒完全培养液TEBES仪器、耗材培养箱平板实验步骤1.  转染前一天接种呈指数生长的细胞,密度为5×105/10 cm  平板。加10 ml 完全培养液,在开始转染时细胞数应<106/平板,以留足够供细胞扩增至少2倍的表面积。2.  用TE缓冲液稀释质粒DNA至1 μg/μ

脂质体介导的真核细胞转染实验

脂质体介导短暂表达 脂质体进行稳定转染 哺乳动物细胞的选择标记             实验材料 哺乳动物细胞

脂质体介导的真核细胞转染实验

实验材料 哺乳动物细胞试剂、试剂盒 质粒DNA完全培养基氯化铯DMEM仪器、耗材 培养皿培养箱聚苯乙烯管实验步骤 1.  按5×105细胞/孔的量在六孔板中接种指数期生长的细胞,在37℃ 5%CO2培养箱中 培养过夜,直至细胞80%汇片。(如果用100 mm 培养皿代替六孔扳,则培养细胞至80%汇片

脂质体介导的真核细胞转染实验——脂质体进行稳定转染

实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒DMEM仪器、耗材培养箱离心管实验步骤1.  接种细胞(见“脂质体介导短暂表达”步骤1)长至50%汇片。 2.  制备DNA/脂质体混合物,转染细胞(见“脂质体介导短暂表达”步骤2和3)。3.  每孔细胞加入1 ml DMEM-20完全培养液,37℃ 培养箱培养48

磷酸钙介导的真核细胞转染实验

磷酸钙法 高效转染法             实验材料 真核细胞 试剂、试剂盒

磷酸钙介导的真核细胞转染实验

实验材料 真核细胞试剂、试剂盒 CaCl2HEPES缓冲液氯化铯PBS仪器、耗材 培养箱锥形管离心管实验步骤 1.  在转染前一天将细胞分入10 cm 组织培养平板中。当被转染的细胞是贴壁细胞,倍增时间为18~24 h时,一般按1:15从长满的培养皿中分细胞效果较好,转染的当天,细胞应在培养

新型电穿孔方法可温和转染贴壁细胞

  电穿孔是一种成熟的方法,可将外源分子导入培养细胞中。这个过程大家都很熟悉,是将一系列电脉冲施加在细胞上,导致细胞膜上形成非常小的孔,这样核酸、蛋白质和药物等分子就能进入细胞。  传统的电穿孔是利用大的扁平电极,将高电场施加到培养基中的细胞。然而,如果孔径太大或时间太长,可能造成相当一部分的细胞死

真核细胞利用DEAE葡聚糖的转染实验

基本方案             实验材料 DNA 试剂、试剂盒

真核细胞利用DEAE葡聚糖的转染实验

实验材料 DNA试剂、试剂盒 TBSDMEM葡聚糖DMSOPBS仪器、耗材 培养箱离心管实验步骤 1.  接种约5×105小鼠L型成纤维细胞/10 cm培养皿,培养3天至30%~50%汇片。 2.  对每个待转染培养皿,用乙醇沉淀4 μg 待转染的质粒DNA,在组织培养橱中晾干沉淀,重悬于40 μl

真核细胞利用DEAE葡聚糖的转染实验

用小鼠L型成纤维细胞来进行条件优比的,但只需稍做修改即可适用于几乎任何细胞。根据所研究的细胞类型进行方法优化十分关键。实验材料DNA试剂、试剂盒TBSDMEM葡聚糖DMSOPBS仪器、耗材培养箱离心管实验步骤1.  接种约5×105小鼠L型成纤维细胞/10 cm培养皿,培养3天至30%~50%汇片。

磷酸钙介导的质粒-DNA-转染真核细胞实验

实验材料 指数生长的哺乳动物细胞试剂、试剂盒 CaCl2氯喹Giemsa 染液甘油HEPES 盐缓冲液甲醇磷酸盐缓冲液丁酸钠TE质粒 DNA细胞生长培养基仪器、耗材 组织培养皿(60 mm) 或 12 孔板实验步骤 材料缓冲液与溶液贮存液、缓冲液与试剂的成分见附录 1。稀释贮存液至所需浓度。CaCl

磷酸钙介导的质粒-DNA-转染真核细胞实验

            实验材料 指数生长的哺乳动物细胞 试剂、试剂盒 CaCl2 氯喹 Giemsa 染液

磷酸钙介导的质粒-DNA-转染真核细胞实验

本方法中介绍的磷酸钙介导的质粒 DNA 转染贴壁细胞是对 Jordan 等建立的方法 (1996) 的改进。Jordan 等大大优化了磷酸钙介导的中国仓鼠卵巢细胞与人胚肾 293 细胞的转染方法。本实验来源于分子克隆实验指南(第三版)下册,作者:〔美〕J. 萨姆布鲁克 D.W. 拉塞尔。实验材料指数

脂质体介导的真核细胞转染实验——质体介导短暂表达

用脂质体将DNA导人各种真核细胞的效率比其他转染方法更高,重复性更好。实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒质粒DNA完全培养基氯化铯DMEM仪器、耗材培养皿培养箱聚苯乙烯管实验步骤1.  按5×105细胞/孔的量在六孔板中接种指数期生长的细胞,在37℃ 5%CO2培养箱中 培养过夜,直至细胞80%汇片。

质粒转染和病毒转染有什么本质上的区别

两者在本质上并没有区别。无论是质粒转染,还是病毒转染,均是真核细胞主动或被动导入外源DNA片段而获得新的表型的过程。随着分子生物学和细胞生物学研究的不断发展,转染已经成为研究和控制真核细胞基因功能的常规工具。在研究基因功能、调控基因表达、突变分析和蛋白质生产等生物学试验中,其应用越来越广泛。随着基因