干细胞稳定转染操作步骤

外源基因进入细胞主要有三种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法,实际上其基本原理都是利用不同的方法在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入,但是由于前两者的效率低且伤害较大,所以现在除了对于一些特殊细胞系,一般的转染方法都利用脂质体。利用脂质体转染和其他方法一样,最重要的就是防治其毒性,因此脂质体与治理的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。本实验学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法 — 脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白)。【试剂与仪器】1 、胎牛血清。2 、双抗溶液(链霉素 100μg+ 青霉素 100 单位)。3 、DMEM 培养基。4 、转染试剂( LIPOFECTAMINE 2000 )。5 、细胞培养基( DMEM+10%NCS )。6 、PBS 。7、无血清培养基。8 .......阅读全文

干细胞稳定转染操作步骤

外源基因进入细胞主要有三种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法,实际上其基本原理都是利用不同的方法在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入,但是由于前两者的效率低且伤害较大,所以现在除了对于一些特殊细胞系,一般的转染方法都利用脂质体。利用脂质体转染和其他方法一样,最重要的就是防治其毒性,因此脂质体与

电穿孔法稳定转染

方案27.12 脂质体介导的瞬时转染             实验材料 L8057-Y10细胞 D-PBSA

电穿孔法稳定转染

            实验材料 L8057-Y10细胞 D-PBSA 仪器、耗材 培养瓶 培养板

电穿孔法稳定转染

实验材料L8057-Y10细胞D-PBSA仪器、耗材培养瓶培养板F12 FB培养基G418(Invitrogen)选择性培养基电穿孔电穿孔专用杯电穿孔仪II电穿孔仪-II配套的效能扩增器-Plus实验步骤表达载体与 DNA 制备:pSVTKGH,线性化 [ Selden et al.,1986]此载

转染细胞的稳定筛选实验

本实验主要用于获得含目的外源基因的真核细胞。实验方法原理外源基因转染真核细胞后整合入基因组DNA,能够长期存在于细胞中,随染色体复制而传给子代。外源基因进入培养细胞一般要经过几天才能够整合入基因组DNA。实验材料转染细胞试剂、试剂盒抗生素培养基胰酶仪器、耗材6孔板24孔板96孔板CO2培养箱滤纸片培

转染细胞的稳定筛选实验

            实验方法原理 外源基因转染真核细胞后整合入基因组DNA,能够长期存在于细胞中,随染色体复制而传给子代。外源基因进入培养细胞一般要经过几天才能够整合入基因组DNA。 实验材料

转染细胞的稳定筛选实验

实验材料 转染细胞试剂、试剂盒 抗生素培养基胰酶仪器、耗材 6孔板24孔板96孔板CO2培养箱滤纸片培养瓶实验步骤 1.确定抗生素作用的最佳浓度:不同的细胞株对各种抗生素有不同的敏感性,因此在筛选前要做预试验,确定抗生素对所选择细胞的最低作用浓度。1) 提前24 小时在96 孔板或24 孔板中接种细

稳定转染的基本概念

一般来说(由细胞类型决定),形成稳定转染细胞的效率比瞬时转染(transient transfection)的效率低1到2个数量级。利用可选择的遗传标记物有利于从非转染细胞的中分离出稀少的稳定转染物。

稳定转染细胞时,质粒总是丢失

稳定转染的细胞株,就是转染后质粒可以稳定整合到基因组上不会因细胞分裂而丢失。区别于质粒瞬时转染不能长时间保留质粒在细胞里。

稳定转染细胞株的构建

1. 2 稳定转染细胞株的构建原理:稳定转染,就是转染的质粒DNA整合到宿主细胞染色体上,使宿主细胞可长期表达目的基因及蛋白。需要在瞬时转染基础上对靶细胞进行筛选或者应用高转染效率的病毒,根据不同基因载体中所含有的抗性标志选用相应的药物进行细胞传代,从而得到可稳定表达目的基因的细胞系。应用:    

脂质体介导的真核细胞转染实验——脂质体进行稳定转染

实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒DMEM仪器、耗材培养箱离心管实验步骤1.  接种细胞(见“脂质体介导短暂表达”步骤1)长至50%汇片。 2.  制备DNA/脂质体混合物,转染细胞(见“脂质体介导短暂表达”步骤2和3)。3.  每孔细胞加入1 ml DMEM-20完全培养液,37℃ 培养箱培养48

CHO细胞的稳定转染与基因表达

1、pcDNA3.1+-gD的线性化: pcDNA3.1+使用说明书推荐了以下几个酶作为线性化酶(BglⅡ MfeⅡ Bst1107Ⅰ Eam1105Ⅰ PvuⅠ ScaⅠ SspⅠ),通过DNAMAN分析gD序列发现其带有MfeⅡ酶切位点。2、转染前一天,在60mm的dish中接种8×105个细胞

哺乳动物细胞基因稳定转染的实验

分析基因的功能常需要形成含有稳定整合了该基因的哺乳动物细胞系。在转染中大约有1/104细胞将稳定整合外源因而可用一显性(正向)选择标记来分离稳定的转化细胞。用可高效转染的细胞系来确保转染成功。另外,应包括合适的对照以确定目的基因无细胞毒性。实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒完全培养液仪器、耗材培养箱离

哺乳动物细胞基因稳定转染的实验

实验材料 哺乳动物细胞试剂、试剂盒 完全培养液仪器、耗材 培养箱离心管实验步骤 1.  确定所要转染的细抱系能呈独立集落生长。对于贴壁细胞,在10 cm 组织培养培养皿中接种约100个细胞,培养10~12天,毎4天换液1次。亚甲蓝染色后对成活的细胞集落进行计数。 2.  确定母代细胞的选择条件:将一

哺乳动物细胞基因稳定转染的实验

基本方案             实验材料 哺乳动物细胞 试剂、试剂盒

腺病毒介导EGFP基因转染神经干细胞

摘要: 本实验从新生SD大鼠海马组织中分离神经干细胞,并通过观察携带EGFP基因的腺病毒(Ad/ EGFP)转染NSCS后EGFP表达规律及转染对NSCS的活力、增殖、分化等的影响,探讨EGFP作为NSCS的示踪标志物的可行性,为进一步的NSCS移植研究提供体外研究

筛选稳定表达细胞株转染后多久药物筛选

稳定细胞株筛选是一个长期的过程,稳定细胞株筛选优化,有许多条件需要摸索,而且是从源头开始①在构建载体时,目的基因直接整合到细胞染色体组上,最好不要通过先瞬转在筛选稳定细胞株的这种方法,因为转染效率没有保证②高表达载体的构建,哺乳动物表达量一直是它自身的缺点,最好根据高表达载体定向的驯化细胞,提高蛋白

稳定转染:从G418浓度确定到单克隆化鉴定2

c、显微镜下观察细胞完全松散开,就可以在你感兴趣的局部加培养基,并吸走你的可隆了呀;d、具体消化的时间,你注意摸索一下,如果在步骤2中显微镜下见细胞尚未完全松散开,可以再重复的,直到松散开,能够被吸走为止。我的建议:1、在100mm dish中挑克隆,细胞分的稀一点。2、把细胞全部消化下来,在96孔

稳定转染:从G418浓度确定到单克隆化鉴定1

一、筛选之前确定G418浓度:1、由于每种细胞对G418的敏感性不同,而且不同的厂家生产的G418有效成分的比重不同,一般1g的粉剂中有效的G418含量大约为 0.722g。2、G418是新霉素的类似物,两者都是通过抑制核糖体的功能和蛋白质的合成而杀死细胞的。但是新霉素对真核细胞无作用而G418对细

稳定转染:从G418浓度确定到单克隆化鉴定3

5、方法5.关于稳转的方法,好像园子里很多研究者都用的是有限稀释法来作,但是我们实验室基本上都不用九十六孔做有限稀释来作单克隆的,一般的做法都是这样:1.3.5cm皿铺细胞,长到大概80%以上的时候作转染。2.转染后一天消化,传到一个大皿(1:6)或者两个大皿(1:12)。3.再过一天后加入带G41

转染

细胞传代(1) 试验准备:200ul/1mlTip头各一盒(以上物品均需高压灭菌),酒精棉球,废液缸,试管架,微量移液器,记号笔,培养皿,离心管。(2) 弃掉培养皿中的培养基,用1ml的PBS溶液洗涤两次。(3) 用Tip头加入1ml Trypsin液,消化1分钟(37。C,5%CO2 )。用手轻拍

细胞转染电穿孔转染法

电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70% 的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以大大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率

转染和转染效率测定步骤

LIPOFECTAMINE 2000转染试剂转染步骤此实验步骤设计用来进行24孔板贴壁细胞的瞬时或稳定转染,其为设计用来在生长培养基中直接加入复合物。1. 转染前一天,胰酶消化细胞并计数,细胞铺板,使其在转染日密度为90%。细胞铺板在0.5ml含血清,不含抗生素的正常生长的培养基中。2. 对于每孔细

细胞转染脂质体转染法

阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室最方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性

日本首次建立癌症干细胞稳定细胞系

近年来,干细胞治疗应用研发成热点■李勤  近日,日本中外制药株式会社(Chugai)在世界上首次成功建立具有结肠癌干细胞性质的稳定细胞系。  该研究由新加坡Pharma Logicals Research公司、日本Forerunner Pharma Research公司与中外制药株式

各种转染试剂的中文转染方法

FuGENE6(Roche)转染步骤: 转染前一天将细胞分至培养板,转染当天细胞应50-80%融合。将细胞以1-3×105/2 ml接种于6孔板后孵育过夜将达到如此密度。 将FuGENE6 Reagent在室温孵育10-15分钟。使用之前将FuGENE6颠倒混匀一下。 1. 在PCR管中加入不含血

基因转染技术的转染方法介绍

  1、转染  转染指通过生化或者物理方法将目的基因导入真核细胞中 。  2、感染  感染指通过病毒介导,用基因组中携带有克隆目的片断的病毒来感染靶细胞。

DNA转染

DNA转染·         Transfection of Mammalian Cells Using Lipofectamine (LTI)·         Guide to Eukaryotic Transfections with Cationic Lipid Reagents (PDF)

细胞转染

脂质体介导法 磷酸钙沉淀法             实验方法原理 外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的

电转化仪高效转染mRNA进入小鼠受精卵形成稳定突变体

摘要随着小鼠基因组序列测序完成,许多研究都围绕着功能基因参与的生物学过程,特别是发育和疾病研究领域。那么稳定遗传修饰的模型动物对于阐明基因的作用十分重要,然而,传统的方法,包括在胚胎干细胞中的同源重组或是构建小鼠嵌合体,既耗时又耗力。然而新的基因组编辑方法明显的优化这个过程。在有效的基因组编辑方法中