westernblot转膜过程中需要注意些什么
最重要的就是SDS-PAGE胶和膜之间不要有气泡。。其次就是转膜的电压和时间要和蛋白大小对应上......阅读全文
western－blot转膜的原理
电场力作用条件下，带电粒子（PAGE胶中的蛋白）会发生定向迁移；蛋白大小如果超过膜孔径（0.22μm or 0.45μm），不会透过膜；WB用的膜具有蛋白吸附作用；
western－blot－的转膜缓冲液
目的是为了消除电荷对电泳的影响，western各步骤的缓冲液基本上都是要加的。
western－blot－试验中蛋白转膜总转不上去
当然，首先要考虑的问题是你转过头了，蛋白质跑出去了。其次你的电流有点大，你也没说转了多久？用的干转还是湿转？是不是拿出来的时候很热？这种情况有可能使蛋白质降解。我们一般是湿转用100mA转2小时， 干转所需电流更小。
western－blot转膜是怎么做的
蛋白免疫印迹( Western Blot) 是将电泳分离后的细胞或组织总蛋白质从凝胶转移到固相支持物NC膜或PVDF 膜上。目前主流方法是电转印法，分为湿式转印与半干转印。湿式转印是将胶块垂直方向夹在湿式转印槽内进行电转印。以E-Blotter湿转槽为例，一般使用垂直电泳槽的缓冲液槽体，将内部垂直电
western－blot转膜－膜上有白点点怎么回事
封闭的时候才出现的白点，是不是奶粉没有完全溶解啊。重新溶解下奶粉，然后用0.45或者0.21um的滤膜过滤一下，看情形能不能好转。另外还得根据结果来看，如果白点最后显影都变成黑点，奶粉没有溶解的可能性就比较大了。
Western－Blot转膜时胶和膜放反了有影响吗
那蛋白就都转到滤纸上去了，没有到膜上。你找点丽春红染染膜看看，估计膜上什么也没有哇。不用往下做了。当然，如果你在膜上看到预染Marker了，还是值得再去尝试一下的。
免疫印迹（Western－Blot）不同蛋白的转膜条件
蛋白来源:RAW264.7 总蛋白蛋白名称:一些转录因子蛋白分子量:40~70 KDWB 用膜类型、孔径:0.45 NC转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒流 400 mA转膜时间:60~90 minPS. 其实吧,以我的经验来看,除非目的蛋白特别小,或者特别大,不然转膜时间真的不是那么重要, 曾经因为
Western转膜步骤
下面的步骤适用于通过Xcell Ⅱ转印系统进行蛋白印记的大部分应用。为达到最佳效果，用户的优化是必要的。I. 所需材料：•Xcell SureLock™或Xcell Ⅱ™ Mini-Cell以及Blot Module（Cat. Nos. EI10001, EI9001及EI9051）•电泳后的迷你胶
Western－Blot转膜技术要点
这个年过的有点崎岖，在面对社会性问题时疫情给我们带来了很多正能量，相信很多还没返校的人已经给自己立了flag。在我们回望过去的一年，这个时代已经变了。任何的进步都被透明公开的呈现在我们面前，而我们看到的好消息远比自己收获的多，所以我们总忍不住问自己，“我成长了吗？”“我的实验能顺利些吗？” “我
Western－blot转印的优化
从SDS凝胶中进行Western蛋白转印的优化需要对一系列参数进行考虑。目的是转印所有凝胶上的蛋白并将其定量地转移到转印膜上。进行高效转印需要一定程度的优化，尤其是对于大分子量和小分子量蛋白。转印后，凝胶上应不残留或残留很少的蛋白。可以在转印后进行染色进行检测。转移出凝胶的蛋白应该仅在接触凝胶的膜的
Western－Blot转膜技术要点
这个年过的有点崎岖，在面对社会性问题时疫情给我们带来了很多正能量，相信很多还没返校的人已经给自己立了flag。在我们回望过去的一年，这个时代已经变了。任何的进步都被透明公开的呈现在我们面前，而我们看到的好消息远比自己收获的多，所以我们总忍不住问自己，“我成长了吗？”“我的实验能顺利些吗？” “我的科
western－blot转膜过程中需要注意些什么
最重要的就是SDS-PAGE胶和膜之间不要有气泡。。其次就是转膜的电压和时间要和蛋白大小对应上
western－blot－电泳液和转膜缓冲液的配方
5*SDS-PAGE电泳缓冲液 0.125M tris 15.1g, 1.25M glycine 94g,0.5% SDS 5.0g,加入800ml去离子水，搅拌溶解。加去离子水将溶液定容至1L后，室温保存。用的时候稀释成1*的就可以了。转膜缓冲液的配制方法：39mM glycine 2.9g,48
western转膜放置问题
1. 定义转膜时与胶接触的一面为“正”2. 封闭时使用封闭液，液体盖过膜就好，所以无所谓正反3. 假如用暗室显影法，将显影的试剂与“正”面接触，胶片与“正面”接触4. 假如用荧光的话，理论上“正”面朝下，扫描，但实际操作过程中貌似都可以的
Western－blot使用哪种膜好？
可以考虑，转移缓冲液中加入20%甲醇，因为甲醇可以降低蛋白质洗脱效率，但可增加蛋白质和NC膜的结合能力，甲醇可以防止凝胶变形，甲醇对高分子量蛋白质可延长转移时间；转移缓冲液中加入终浓度0.1% SDS，也是为了增加转移效率；用优质的转移膜，或使用小孔径的NC膜，低浓度胶，提高转移电压/电流，增加转移
western－blot实验怎么样转膜能够节省时间
转膜你用的是湿转的方法吗？湿转速度比较慢，一般的半干转能快点，30-45min转完，现在市面上有很多快速半干转，3-15min可以完成转印，可以在转膜这一步节约一些时间。我还能想到另外一个可以节约时间的部分，就是检测，如果以前压胶片，现在可以考虑用成像仪，这个也可以节省一些时间。至于抗体孵育的时间，
western转膜时间和电流
300mA90分钟,我们是1.0的胶厚度,要是0.75也行,但1.5mm的厚胶要时间长一些,另外你做的蛋白如果超过100kd建议时间更长一些,若是小蛋白就减少转模时间,立春红确定最适时间
Western－不同转膜方法的取舍
转膜:小分子量的蛋白半干转效果比较好，大分子量（100KD）以上建议湿转。具体转膜条件需要多摸一下。30-80KD半干转恒流1mA/cm2，1-1.5h 都可以，大分子湿转100V，2.5h以上应该可以，转完膜丽春红染出的条带比较清楚的话，一般都能有结果。湿转，Buffer一定要预冷，最好提前一天配
western－blot－半干转时滤纸上出现蓝色
western blot 半干转时滤纸上出现蓝色marker一般是代表转过了western blot 半干转一般是电压10V转膜30分钟就可以了，时间长了就转到滤纸上去了所以western blot 半干转时滤纸上出现蓝色marker一般是代表转过了
western转膜后marker拖尾原因
western转膜有时候marker深，有时候浅是很正常的事情因为不同批次转膜的时候，电压电流缓冲液温度等等条件不可能完全保持一致，在各种条件变化的情况下，很容易造成批次间的差异，具体表现就是有时候marker深，有时候浅所以western转膜有时候marker深，有时候浅是很正常的事情
western－blotting转膜是根据什么原理
原理：westernblotting转膜一般采用“滤纸-凝胶-膜-滤纸”夹心法，凝胶靠近负极，膜靠近正极。因为蛋白上结合有sds，因而带负电，在电流的作用下会从负极向正极运动，从而转移到膜上。
western－blotting转膜是根据什么原理
原理：westernblotting转膜一般采用“滤纸-凝胶-膜-滤纸”夹心法，凝胶靠近负极，膜靠近正极。因为蛋白上结合有sds，因而带负电，在电流的作用下会从负极向正极运动，从而转移到膜上。
BioRad（伯乐）Western－Blot半干法转膜的十大注意事项
首先讲转膜仪的清洗：Do not immerse the unit in liquid. Use special care when cleaning the anode plate to avoid scratching or marring the platinum. Do not use
Western－转膜时用干转还是湿转效果比较好？
关键看效果怎么细分，干转，速度快，效率稍低，湿转，速度比较慢，转移效率高。但是最主要看蛋白的分子量大小。如果普通分子量为主，干转就挺好的，效率非常高，几分钟就做完了。分子量特别大，又没有其他人的方案做参考，可以先试试湿转。就是几个小时等得比较痛苦。好几个人做的话，真是等到花儿也谢了。至于说效果，不是
做western转膜，用湿转电泳，还是半干转电泳好
半干转要用专门的半干转膜仪，而湿转用电泳仪配附件即可；半干转所需时间较短，但控制不好，中间发热比较大容易把膜和胶烘坏；而湿转耗时较长，尤其对大分子量的蛋白转膜效果较好。相对来讲，还是湿法转膜的实验室多一些。
Western－转膜时用干转还是湿转效果比较好
关键看效果怎么细分，干转，速度快，效率稍低，湿转，速度比较慢，转移效率高。但是最主要看蛋白的分子量大小。如果普通分子量为主，干转就挺好的，效率非常高，几分钟就做完了。分子量特别大，又没有其他人的方案做参考，可以先试试湿转。就是几个小时等得比较痛苦。好几个人做的话，真是等到花儿也谢了。至于说效果，不是
做western－blot洗膜时间可以缩短吗
这取决于你的抗体的特异性怎么样。洗膜时间通常是一定的，但是如果你的抗体表现很好，想要缩短也是没有问题的。但是如果做完以后，结果非特异多，或者不干净，那么保证洗膜时间，甚至延长，或者是改进洗膜液的成分都是有必要的。
请教western转膜封闭后怎么办
western blot中封闭主要是起去除非特异性吸附的作用在western blot转膜时，PVDF膜在甲醇活化后是带电的，因而在转膜时会将蛋白吸附。封闭的目的就是要将PVDF膜上无蛋白的部分空隙用奶粉填满，以免孵抗体的时候一抗二抗与之结合，产生非特异条带或者是背景杂乱。所以western blo
western－blot－NC膜可以反复用多少次
此膜是可以重复使用的。所以多个指标也只需要跑一次胶，但是首先要保证你的蛋白在胶上面，跑个MARK作个参照，对应一下分子量，不要切胶上把你要检测的蛋白给切除了。我们实验室的做法是再次使用的使用先用2%的NAOH洗5分钟，水洗5~10分钟，重新封闭，加一抗二抗，效果很好的！
Western－Blot－(AP)
主要试剂1. Membrane Blocking buffer:5% Milk 0.05% of Tween 20 PBS2. antibody dilution buffer: PBS 0.05% of Tween20 1.0% Milk(or BSA) 3. washing buffer: