电泳迁移率变动分析的实验方法
通常用32P标记DNA分子，而不标记蛋白质。电泳结束后，用放射自显影技术显现具放射性标记的DNA条带位置。如果细胞蛋白提取物中不存在与同放射性标记的DNA探针结合的蛋白质，那么所有放射性标记都将出现在凝胶的底部；反之，将会形成DNA-蛋白质复合物，由于受到凝胶阻滞的缘故，放射性标记的DNA条带就会出现在凝胶的不同部位。......阅读全文
地乐施实验检查的实验方法介绍
家兔随机分成4组，除阳性对照组6只外，其余各组为每组8只，雌雄各半。25%氨基甲酸乙酯1g/kg，静注麻醉，测定Ⅱ导联心电图；开胸，经右心房进行冠状窦插管，插管经FF-030电磁血流量探头，探头接电磁血流量计读出冠状窦血流量，即冠状循环血流量。回血进颈外静脉回输体内[2]。十二指肠插管，供给药用
实验室常用实验方法介绍实验室常见的三种浓缩方法
浓缩浓缩是实验室中最常用的样品处理手段之一,药物有效成分提取,农残分析,药物筛选,液相、气相、质谱分析前处理等等都会涉及浓缩,浓缩的方法也有很多,各有所长,各有侧重,可选择的仪器也有很多。常见有氮吹仪、旋转蒸发仪、真空浓缩仪、冷冻干燥机等等。仪器氮吹仪旋转蒸发仪离心浓缩仪器原理将氮气快速、连续、可控
中间丝的分离方法实验
从培养的细胞中分离Ⅰ~Ⅲ型中间丝 从组织中分离中间丝 实验材料 细胞
原位PCR实验的基本方法
① 固定组织或细胞：将组织细胞固定于预先用四氟乙烯包被的玻片上，并用多聚甲醛处理，再灭活除去细胞内源性过氧化物酶。 ②蛋白酶K消化处理：用60ug/ml的蛋白酶K将固定好的组织细胞片55℃消化处理2h后，96℃2min以灭活蛋白酶K。 ③PCR扩增：在组织细胞片上，加PCR反应液，覆盖并加液
实验动物的麻醉方法3
四、实验动物用药量的确定及计算方法（一）动物给药量的确定观察一种药物对实验动物的作用时，一个重要的问题就是给动物用多大的剂量较合适。剂量太小，作用不明显，剂量太大，又可能引起动物中毒致死。可以按下述方法确定剂量：1. 先用少量小鼠粗略地探索中毒剂量或致死剂量，然后用小于中毒量的剂量，或取致死量的若干
中间丝的分离方法实验
从培养的细胞中分离Ⅰ~Ⅲ型中间丝从组织中分离中间丝实验材料细胞 试剂、试剂盒蛋白酶抑制剂
关于垂体实验的方法介绍
脑垂体：53号切片，小牛垂体，甲基蓝伊红染色 被膜：结缔组织构成，染成天蓝色。 实质部：漏斗，漏斗腔（垂体腔），结节部，神经部（染成淡蓝色），中间部（染成粉红色），垂体裂和远侧部（染成紫色和红色）的位置关系。 与丘脑下部相连的部分称为漏斗柄，向下为正中隆起，正中隆起两侧为结节部。垂体的前部
RNAi的实验原理与方法
近年来的研究表明，将与mRNA对应的正义RNA和反义RNA组成的双链RNA(dsRNA)导入细胞，可以使mRNA发生特异性的降解，导致其相应的基因沉默。这种转录后基因沉默机制(post-transcriptional gene silencing, PTGS)被称为RNA干扰（RNAi）。一、RNA
TUNEL检测的实验方法
对于贴壁细胞或细胞涂片a. PBS或HBSS洗涤一次。b. 如果细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。c. 用4%多聚甲醛或碧云天生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30-60分钟。d. 用PBS或HBSS洗涤一次。e. 加入含0.1% Triton X-100的PBS，冰浴孵育2分钟。f
TUNEL检测的实验方法
a. PBS或HBSS洗涤一次。b. 如果细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。c. 用4%多聚甲醛或碧云天生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30-60分钟。d. 用PBS或HBSS洗涤一次。e. 加入含0.1% Triton X-100的PBS，冰浴孵育2分钟。f. 转步骤5。 a.
TUNEL检测的实验方法
a. PBS或HBSS洗涤一次。b. 如果细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。c. 用4%多聚甲醛或碧云天生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30-60分钟。d. 用PBS或HBSS洗涤一次。e. 加入含0.1% Triton X-100的PBS，冰浴孵育2分钟。f. 转步骤5。 a.
场景恐惧的实验方法
分为训练和测试两阶段 （一）训练阶段（第一天） 1．调试仪器，以确保格栅地板有电流刺激，扩音器有声音刺激，并分别记录电流强度和声音强度（分贝）。 2．将大鼠放入条件恐惧箱2min（A相），记录这最初2min内动物的凝滞（freezing）时间作基线。 3．接着加入卡嗒声，80Db,30s(B相)。
实验动物的麻醉方法2
二、麻醉方法（一）全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射，产生中枢神经系统抑制，呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关，当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后，动物逐渐清醒，不留后遗症。1. 吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气
相对定量实验的方法介绍
相对定量实验有两种方法：标准曲线法和CT值比较法。如果使用标准曲线法，可以使用绝对标准品，也可以使用相对标准品，而且相对标准品在实验操作上更为简便易行。相对标准品是只知道样品中DNA或RNA的稀释比例而不需要知道其分子数目的标准品，典型的做法是将一个已知pg数的样品做一系列梯度稀释。CT值比较法是
荧光实验方法的选择
在荧光分析中，可以采用不同的实验方法以进行分析物质浓度的测量。其中最简单的是直接测定的方法。只要分析物质本身法荧光，便可以通过测量其荧光强度以测定其浓度。许多有机芳族化合物和生物物质有内在的荧光性质，通常可以直接进行荧光测定。若有其他干扰物质存在时，则应预先采用掩蔽或分离的办法加以消除。 对于有
实验动物的抓取固定方法
正确的抓取固定动物，是为了不损害动物健康，不影响观察指标，并防止被动物咬伤，保证实验顺利进行。抓取固定动物的方法依实验内容和动物类而定。抓取固定动物前，必须对各种动物的一般习性有所了解，抓取固定时既要小心仔细，不能粗暴，又要大胆敏捷，确实达到正确抓取固定动物的目的。（一）小鼠抓取固定方法小鼠温顺，一
TUNEL检测的实验方法
对于贴壁细胞或细胞涂片a. PBS或HBSS洗涤一次。b. 如果细胞贴得不牢，可以干燥样品使细胞贴得更牢。c. 用4%多聚甲醛或碧云天生产的免疫染色固定液(P0098)固定细胞30-60分钟。d. 用PBS或HBSS洗涤一次。e. 加入含0.1% Triton X-100的PBS，冰浴孵育2分钟。f
淀粉水解的实验方法
实验所需药品和器具：淀粉、水、碘溶液、20%的硫酸、10%氢氧化钠、2%的硫酸铜、酒精灯、试管夹、试管等。实验过程：1、试管1中加入0.5g淀粉和4ml水，试管2中加入0.5g淀粉和4ml20%的硫酸溶液。加热两试管3~4min。2、 把试管2中的部分溶液倒入试管3中，留作下一步实验用。3、 向试管
淀粉水解的实验方法
实验所需药品和器具：淀粉、水、碘溶液、20%的硫酸、10%氢氧化钠、2%的硫酸铜、酒精灯、试管夹、试管等。实验过程：1、试管1中加入0.5g淀粉和4ml水，试管2中加入0.5g淀粉和4ml20%的硫酸溶液。加热两试管3~4min。2、 把试管2中的部分溶液倒入试管3中，留作下一步实验用。3、 向试管
实验动物编号的常规方法
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。（一）颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。经常应用的涂染化学药品有：①、涂染红色：0.5%中性红或品红溶液。 ②、涂染黄色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸银溶液。标记时用毛笔或棉签蘸取上述
中间丝的分离方法实验
实验材料 细胞试剂、试剂盒 蛋白酶抑制剂裂解缓冲液解聚缓冲液组装缓冲液仪器、耗材 匀浆器实验步骤 1. 从培养皿或瓶中吸去培养基并用 5 ml 含蛋白酶抑制剂的冰冷的 PBS 洗细胞。2. 每 75cm2 瓶或培养皿用 1 ml 冰冷的裂解缓冲液 5 分钟裂解细胞。裂解缓冲液：在 PBS 中加入：1
吲哚实验的操作方法
将菌接种至蛋白胨水培养基中,37℃下 在培养液中加入乙醚1～2ml，静置片刻后乙醚层浮于培养液的上面，此时沿管壁缓慢加入5～10滴吲哚试剂(加入吲哚试剂后切勿摇动试管，以防破坏乙醚层影响结果观察)，如有吲哚存在，乙醚层呈现玫瑰红色，此为吲哚试验阳性反应，否则为阴性反应，阳性用“+”、阴性用“-
磁共振的实验方法
通常，当外加恒定磁场Be在0.1～1.0T（材料的内磁场BBe）时，各种与电子有关的磁共振频率都在微波频段，而核磁共振频率则在射频频段。这是因为原子核质量与电子质量之比至少1836倍的缘故。虽然观测这两类磁共振分别应用微波技术和无线电射频技术，但其实验装置的组成与测量原理却是类似的。磁共振实验装置由
实验动物全身麻醉的方法
全身麻醉：麻醉药经呼吸道吸入或静脉、肌肉注射,产生中枢神经系统抑制,呈现神志消失，全身不感疼痛，肌肉松弛和反射抑制等现象，这种方法称全身麻醉。其特点为抑制深浅与药物在血液内的浓度有关,当麻醉药从体内排出或在体内代谢破坏后,动物逐渐清醒，不留后遗症。吸入麻醉法 麻醉药以蒸气或气体状态经呼吸道吸入而产生
包涵体的实验方法
1、机械破碎2、超声破碎3、化学方法破碎 可以破坏蛋白的次级键从而增溶蛋白。如有人在pH>9.0溶解牛生长激素和牛凝乳蛋白酶包涵体。有些蛋白可以溶解在60mMHCl中。这些方法只适合于少部分蛋白的增溶。变性剂的使用浓度和作用时间：一般在偏碱性性的环境中如pH8.0-9.0，尿素在碱性环境中不稳定，一
实验动物标本的采集方法
实验概要本文介绍了实验动物标本(脑脊液、骨髓、消化液、腹水、胸水、尿液等)的采集方法。实验步骤1. 脑脊液的采集 1) 脊髓穿刺法狗、兔脑脊液的采集通常采取脊髓穿刺法。穿刺部位在两髂连线中点稍下方第七腰椎间隙。动物轻度麻醉后，侧卧位固定，使头部及尾部向腰部尽量弯曲，剪去第七腰椎周围的被毛。消毒
实验动物编号的常规方法
常用的标记法有染色、耳缘剪孔、烙印、号牌等方法。（一）颜料涂染这种标记方法在实验室最常使用，也很方便。经常应用的涂染化学药品有：①、涂染红色：0.5%中性红或品红溶液。 ②、涂染黄色：3～5%苦味酸溶液。 ③、黑色：煤焦油的酒精溶液。 ④、涂染咖啡色：2%硝酸银溶液。标记时用毛笔或棉签蘸取上述
淀粉水解的实验方法
实验所需药品和器具：淀粉、水、碘溶液、20%的硫酸、10%氢氧化钠、2%的硫酸铜、酒精灯、试管夹、试管等。实验过程：1、试管1中加入0.5g淀粉和4ml水，试管2中加入0.5g淀粉和4ml20%的硫酸溶液。加热两试管3~4min。2、 把试管2中的部分溶液倒入试管3中，留作下一步实验用。3、 向试管
实验动物的麻醉方法1
麻醉（anesthesia）的基本任务是消除实验过程中所至的疼痛和不适感觉，保障实验动物的安全，使动物在实验中服从操作，确保实验顺利进行。一、常用的麻醉药（一）常用局部麻醉剂：普鲁卡因，此药毒性小，见效快，常用于局部浸润麻醉，用时配成0.5％～1％；利多卡因，此药见效快，组织穿透性好，常用1％～2％
实验动物的剖检方法
实验概要本文介绍了实验动物的剖检方法。实验步骤动物尸体取仰卧位，将四肢固定，用水浸湿被毛。从下颌中央开始到耻骨联合正中垂直切口，用骨剪把左右肋骨剪断后，将胸骨向前下方翻开，即可暴露胸、腹腔。按胸腔、腹腔、颅腔的次序观察各脏器位置、形状及彼此相互关系，然后分别取下。先在胸腔入口处切断食道和气管，将心和