sdspage蛋白条带怎么分析
bandscan比较专业哦，可以用的。1.因为其他地方也有一定的灰度，所以条带所在区域灰度之和会小于100%。归一化嘛，就是把这四个值乘以一个系数，使它们之和等于100%就是了。2.这四个条带是斜的，分析起来很麻烦，要作较正的。普通的分析软件不知有没有这个校正功能。即使有，作起来也麻烦。......阅读全文
19—26KD蛋白条带用多少浓缩胶
26kd蛋白用15%的胶.因为跑50kDa以上的蛋白要用10%的。50kDa-15kDa左右的话用15%的，跑更小的蛋白（比如10左右或以下的），就要适当的把胶的浓度再提高，18%或20%都可以。所以26kd蛋白用15%的胶.如果以溴酚蓝跑到胶的底部为准,26kD在10%的由下往上1/4的地方,而1
AMPK做出来两条带，这是蛋白降解了吗
估计跟常温放置有关系，要是多余的那个条带比你的目的蛋白条带小的话，那么可能就是目的蛋白降解了，你可以重新电转再杂交试试。电转后的膜最好要4℃保存。而且，你也可以查查目的蛋白的相关资料，看这个蛋白是不是有不同的多聚体形式，也有可能是这种情况导致的。
为什么Western－blot－出现两个目标蛋白条带
1.因为WB的一抗识别的蛋白质的表位是顺序表位，不是空间表位，所以WB状态下的抗原-抗体识别，与非变性的生理条件下的抗原-抗体识别不同。2.WB之前，先用分子筛纯化同时也是检测一下目的蛋白产物是否成功。也就是目的蛋白是否成功表达了，而且在提取后稳定存在了。3.非特异性的条带分子量偏大可能是SDS P
为什么marker条带非常弱或者根本没有条带？
出现上述情况可能是：marker上样量较低，可适当增加上样量；2. 凝胶质量较差或凝胶凝固不均匀也会导致电泳条带弱或根本没有条带；3. 电泳时间过长导致marker条带跑出凝胶，可缩短电泳时间，降低电压，增加凝胶浓度。
条带转移(Band－Shift)
Or gel mobility shift assay, gel shift assay, gel retardation, electrophoretic mobility shift assay (EMSA) EMSA Using Oligos (Mike A. Dyer)Anneal two
marker条带非常模糊，无法辨别具体条带问题分析
出现上述情况，可能有以下几个原因：1. marker条带出现了降解。请确保在使用过程中避免核酸酶污染；2. 电泳缓冲液陈旧。电泳缓冲液多次使用后，离子浓度降低，pH值上升，缓冲能力减弱，从而影响电泳效果，建议经常更换电泳缓冲液；3. 电泳条件不合适。电泳时电压应不超过20V/cm，温度应低于30℃；
PCR只有引物二聚体的条带，没有目的基因条带
如果实验目的只是基因型鉴定，对PCR产物无其他要求的话，二聚体并非不能忍受，可以尝试以下方法优化反应条件：1.确定DNA模板为阳性，即确定含有目标序列；2.对退火温度设置温度梯度，琼脂糖电泳检测是否有目标条带，即使可能并不清晰；3.选取最清晰的温度，在PCR体系中设置镁离子浓度梯度，选取最理想的条件
蛋白质印迹法阳性条带异常的原因和解决办法
可能原因验证或解决办法抗体结合不充分增加抗体浓度，延长孵育时间酶失活直接将酶和底物进行混合，如果不显色则说明酶失活了。选择在有效期内、有活性的酶联物标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低设置阳性对照，如果阳性对照有结果，但标本没有则可能是标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。可考虑增加标本上样量解决靶蛋白含量
电泳图谱中，蛋白条带的颜色深浅和宽度表示什么
电泳图谱中颜色深浅代表含量高低，宽度与蛋白样品的不均一性有关，含有不同分子量的蛋白种类越多弥散宽度越大。
电泳图谱中，蛋白条带的颜色深浅和宽度表示什么
电泳图谱中颜色深浅代表含量高低，宽度与蛋白样品的不均一性有关，含有不同分子量的蛋白种类越多弥散宽度越大。
电泳图谱中，蛋白条带的颜色深浅和宽度表示什么
你好，电泳图谱中颜色深浅代表含量高低，宽度与蛋白样品的不均一性有关，含有不同分子量的蛋白种类越多弥散宽度越大。
western－blot的条带分析
你的对照组是什么？对照组有没有出现问题？有问题的话是很可能是你在操作过程中有问题膜的质量是否有问题？
pcr扩增没有条带
你降低引物浓度，增加模版浓度，做一个梯度PCR试试
western－blot－条带怎么分析
把条带圈出来然后点测量 就是measure 出来的那个mean的数值就是灰度 应该说是白度值 条带越深数值越小
条带移位分析的概念
中文名称条带移位分析英文名称band-shift analysis定 义不同大小的分子在区带电泳中移动的速度不同，当某种分子与另一种分子特异性结合后，它在电泳带中的位置就发生了变化，由此可以分析不同分子间的相互作用。应用学科生物化学与分子生物学（一级学科），方法与技术（二级学科）
PCR电泳目的条带很浅
可以照胶的时候去调节亮度，对比和γ射线，然后会清楚一些。同时，你优化下PCR扩增条件之类的，提高扩增效率。
PCR电泳目的条带很浅
可以照胶的时候去调节亮度，对比和γ射线，然后会清楚一些。同时，你优化下PCR扩增条件之类的，提高扩增效率
为什么出现多条带？
为什么出现多条带，每个加样槽中都出现了多条带，而且好像都很有规律，为什么？是封闭时间不够吗？做Western必须要内参吗？一抗、或二抗抗体浓度太高，多克隆抗体本身的非特异性反应，抗体的特异性不强，目的蛋白经过处理后发生变化，而内参的条带基本均匀一致，这样才有说服力。表明的确是处理因素造成目的蛋白的变
如何分析电泳条带
许多分子，如氨基酸、 多肽、 核苷酸等都具有可电离基团，在电场的作用下，这些带电分子会向着与其所带电荷极性相反的电极方向移动，这就是电泳，由于各种离子的移动速率不同，就把各种不同物质分开，前后分成了一排一排，在光学仪器下便显示为一条条的光带，这就是电泳条带，人们可以根据条带的宽窄和位置利用已有的资料
PCR电泳无条带原因
可能的原因及对应的解决方案如下：酶失活或在反应体系中未加入酶。Taq DNA 聚合酶因保存或运输不当而失活，往往通过更换新酶或用另一来源的酶以获得满意的结果。模板含有杂质。特别是对甲醛固定及石蜡包埋的组织常含甲酸，造成 DNA 脱嘌呤而影响 PCR 的结果。变性温度是否准确：PCR 仪指示温度与实际
植物的总RNA是两条带还是三条带好
RNA电泳般显示3条带：18S、28S5.8S植物RNA能显示于3条带像说7条带其条带少S应该同物种关系都显示于3条带原由于植物细胞内线粒体叶绿体两细胞器含少量RNA
为什么marker条带出现不规则的条带（如哑铃状等）？
出现上述情况，多与以下几个原因有关：电泳缓冲液陈旧。老化的电泳缓冲液离子浓度降低，pH值上升，缓冲能力减弱，从而影响电泳效果，建议经常更换电泳缓冲液；2. 电泳条件不合适。电泳时电压应不超过20V/cm，电压太高可能也会导致marker条带出现不规则现象。此外，凝胶质量差以及凝胶冷却时凝固不均匀也会
植物的总RNA是两条带还是三条带好
RNA电泳般显示3条带：18S、28S5.8S植物RNA能显示于3条带像说7条带其条带少S应该同物种关系都显示于3条带原由于植物细胞内线粒体叶绿体两细胞器含少量RNA
如何分析SDSPAGE电泳图扫描后图上蛋白条带的量
SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法，图上蛋白条带不能做到精确定量。一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。比如用已知蛋白量的样品（BSA）和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道，通过对比染色后样品的大小，颜色，深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
如何分析SDSPAGE电泳图扫描后图上蛋白条带的量
SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法，图上蛋白条带不能做到精确定量。一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。比如用已知蛋白量的样品（BSA）和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道，通过对比染色后样品的大小，颜色，深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
如何分析SDSPAGE电泳图扫描后图上蛋白条带的量
SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法，图上蛋白条带不能做到精确定量。一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。比如用已知蛋白量的样品（BSA）和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道，通过对比染色后样品的大小，颜色，深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
如何分析SDSPAGE电泳图扫描后图上蛋白条带的量
SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法，图上蛋白条带不能做到精确定量。一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。比如用已知蛋白量的样品（BSA）和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道，通过对比染色后样品的大小，颜色，深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
WB－条带大小和蛋白预测八字不合？先检查这－5－点！
实验室玄学千千万，预测和结果不符占一半。WB 实验是各位艾粉们，时常光顾的一个实验。但就是这样一个初级又常用的实验，却会出现各种稀奇古怪的问题。比如在 WB 实验鉴定蛋白时，我们得到的蛋白质条带大小常常会和预测值有所偏差。这是身患「强迫症」的艾粉们不能忍的。如果是实验出错或者预测不准这种情况，小艾是
如何分析SDSPAGE电泳图扫描后图上蛋白条带的量
SDS-PAGE检测蛋白是一种定性的检测方法，图上蛋白条带不能做到精确定量。一般只能通过一些对照样品来比较分析图上蛋白条带的量。比如用已知蛋白量的样品（BSA）和需检测的蛋白样品跑在附近的泳道，通过对比染色后样品的大小，颜色，深浅来估计出需检测蛋白样品的量。
PCR不能扩增出目的条带
建议：1、用引物在ncbi里去查，看看是否完全匹配，国外文献尚有错误，如果是国内的......；2、不是提高退火温度，而是降低，看看是否有非特异性的产物；3、有条件的话，建议找一个阳性对照，质粒最方便。如果没有这个基因的，可以找一个看家基因的，再合成一对引物，做阳性对照。检查整个体系中是否有问题。阳