电泳浓缩胶浓度怎么选取
1,看目的蛋白的大小 一般actin以下的可以跑12胶 红线左右可以用12或10跑 几百的很大的用6的胶 小蛋白12的10的一般都能跑 如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看 2，看样品浓度多少，以及你想用几次 通常我们是定到4微每微，总量10...5919......阅读全文
电泳浓缩胶浓度怎么选取
1,看目的蛋白的大小 一般actin以下的可以跑12胶 红线左右可以用12或10跑 几百的很大的用6的胶 小蛋白12的10的一般都能跑 如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看 2，看样品浓度多少，以及你想用几次 通常我们是定到4微每微，总量10...5919
浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡对电泳有影响吗？
这主要出现在初学者中，一般对电泳不会有太大的影响。前者主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致；后者是由于在解除制胶的夹子后，板未压紧而致空气进入引起的。
电泳分离技术－浓缩胶与分离胶断裂、板间有气泡的影响
一般对电泳不会有太大的影响。浓缩胶与分离胶断裂，主要原因是拔梳子用力不均匀或过猛所致;板间有气泡，是由于在解除制胶的夹子后,板未压紧而致空气进入引起的。
WB电泳浓缩胶没压成一条线
第一、样本本身含有高盐。第二、积层胶长度不足，一般样品1-2cm足矣。但是如果样本含有高盐可以考虑将积层胶加长到4cm左右。第三、缓冲液需要更换。使用多次的Buffer缓冲能力会大打折扣，如果样品珍贵难得推荐用新鲜配制电泳缓冲液，反之用3次就丢弃吧！第四、上样量有关。dxylark已经叙述。第五、电
蛋白质SDSPAGE电泳分离胶和浓缩胶的浓度如何确定
1,看目的蛋白的大小一般actin以下的可以跑12胶红线左右可以用12或10跑几百的很大的用6的胶小蛋白12的10的一般都能跑如果不考虑效率的话...能跑多慢跑多慢,越慢跑的越好看2，看样品浓度多少，以及你想用几次通常我们是定到4微每微，总量100微，用10次如果浓度小的话定到2用5次
浓缩胶的配制方法
一般同工酶可选择7?5%～10%的胶(过氧化物酶和酯酶7?5%较合适，超氧化物歧化酶用10%，可溶性蛋白可根据需要配制)。将配制好的凝胶液置真空干燥器中，抽气10Min，再加入TEMED15μl；混匀后用一细玻棒引流，沿无凹槽的玻板缓缓注入胶室中，注胶过程要防止气泡产生。胶液加到离凹槽3CM处为止，
DNA电泳（agarose胶）
DNA电泳可用于：（1）分离不同大小的DNA片段；（2）鉴定目的DNA片段；（3）纯化和回收DNA片段。实验方法原理利用DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时具有的电荷效应和分子筛效应。电荷效应是指DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电，在电场中向正极移动，且相同数量的双链DNA几乎具有等量的净电荷，能以
DNA电泳（agarose胶）
DNA琼脂糖凝胶电泳 实验方法原理 利用DNA分子在琼脂糖凝胶中泳动时具有的电荷效应和分子筛效应。电荷效应是指DNA分子在高于等电点的pH溶液中带负电，在电场
DNA电泳（agarose胶）
实验材料 DNA样品试剂、试剂盒 琼脂糖 电泳缓冲液溴化乙锭 上样缓冲液仪器、耗材 电泳仪电泳漕 透射紫外灯 胶带纸 紫外成像仪
电泳胶浓度的选择
浓缩胶一般都是5%的,下面的是5ML的配方,其余的你可以自己算了5mlH2O 3.6acrylamide mix（30%） 0.621M Tris(PH6.8) 0.6310% SDS 0.0510% AP 0.05TEMED 0.005
RNA甲醛变性胶电泳
提取样品的总RNA后，一般根据RNA的凝胶电泳图来判断RNA的质量。由于RNA容易形成二级结构，因此常用甲醛变性胶来进行RNA电泳，得到的电泳图能真实反映RNA的质量状况。一、试剂：DEPC（Sigma公司产品），MOPs（Bocherigmer公司产品），甲酰胺（Formamide，Sigma公司
非变性胶蛋白电泳
Section 2.1Nondenaturing Polyacrylamide Gel Electrophoresis of ProteinsJohn M. Walker1. IntroductionSDS-PAGE (Section 2.2) is probably the most commo
蛋白质电泳所加样品在浓缩胶中跑的不成一条直线
首先得确认你配置胶的浓度以及配胶的试剂没问题，如果浓度没问题的话，应该是胶板下面（原先圈着的胶条位置）存有气泡没有赶跑，把气泡用吸管赶走后就OK了之前我也碰到过类似情况
垂直电泳槽灌胶演示
放置凝胶三明治夹的竖板使之定位更准确* “扣紧-放开的ZL设计* 透明门便于观察 *取下凝胶三明治夹时无滴水
电泳切胶的小窍门
一些注意事项1.电泳的buffer和gel都是新制的，切胶的台子清理干净，刀片最好洗净灭菌，总之一句话就是保证切下的带没有外源dna污染。2.切胶是要把整个目的片断所在位置的胶全部回收。为了减少胶的体积，可以用相对比较薄的胶来做，只要够点样即可，也可采用薄而宽的梳子来跑胶。3.关于防护，在一般有机玻
电泳跑胶电压和时间
sds-page跑电泳时，跑到浓缩胶和分离胶分界处时一般是要换电压的。具体是40变60还是80变120要根据实际试验的时间来确定，而且这个时间的要求不会很严格，也就是说对电压的要求不严。我做这个试验时，师姐给我讲的是由80变到120~140即可
几种电泳用胶的区别
普通DNA的分离一般采用0.8%~1%的琼脂糖凝胶电泳测序胶有两种类型以前的310类型的测序仪用的是银染的聚丙烯酰胺凝胶电泳胶浓度一般在6~8%3130或3730之类的新型测序仪用的是毛吸管的分离胶如POP-7,POP-6,POP-4之类这种胶相当贵，自己没有配方是配不起来的都是买现成的胶south
电泳后跑胶跑多久
2%的琼脂糖凝胶电泳跑多少时间合适 看染料的位置就好了, 怕时间太短你可以放回去继续跑嘛
免疫电泳实验_倒胶
试剂、试剂盒Tris-巴比妥缓冲液贮液电极缓冲液琼脂糖溶液实验步骤为使琼脂糖溶液均匀铺层和得到重复的结果，玻璃板必须水平放置。为便于在免疫电泳中从第一向到第二向的转移，最好使用琼脂糖凝胶支持膜。12 ml 琼脂糖溶液在 84 cm X 94 cm 上的凝胶厚度为 1.5 mm。倒胶后约 3 分钟凝固
聚丙烯酰胺浓缩胶不凝固
不是的聚丙烯酰胺凝胶是AB组分的把1 是比例不标准2 胶水本身的问题3 是自己操作不当
蛋白质电泳槽－Western－Blot－垂直电泳制胶器漏胶问题分析
Western Blot转膜之前免不了要在蛋白质垂直电泳槽中跑胶分离蛋白质。关于制胶，大多数用户还是喜欢用电泳槽配套的制胶器来自己制胶跑电泳，经济实惠。但是很多实验室因为设备已经使用多年，常会发现垂直电泳槽的制胶器没有原来好用了，经常会有“漏胶”或者“漏液”的现象，也就是说，凝胶溶液还没有来
水平电泳槽灌胶过程方法
水平电泳槽水平电泳槽由于一般使用琼脂糖凝胶，又称“琼脂糖”水平电泳槽；同时因凝胶需浸没在缓冲液内，也称“潜水式”或“浸没式”水平电泳槽。 水平凝胶在核酸分析方面有许多优势，是分子生物学研究的主要工具，可鉴定、分离、制备DNA，并可以测定DNA的分子量
DNA电泳（agarose胶）操作方法
一、 试剂与材料：1、 琼脂糖2、 电泳缓冲液（1×TAE）3、 10mg/ml溴化乙锭4、 上样缓冲液5、 电泳仪和水平电泳漕6、 透射紫外灯7、 胶带纸 二、 操作方法 按1～2%的琼脂糖浓度（据DNA样品分子量不同而定）配胶100ml ↓ 置于微波炉内加热搅拌，至琼脂糖完全溶解
SDSGAGE分离胶的凝固时间和浓缩胶的凝固时间
这要取决于你加入催化剂的用量，可以稍多加一些TEMED，这样凝固的时间就会短了。
什么是－电荷效应－浓缩效应－转移电泳
电泳过程必须在一种支持介质中进行。Tiselius等在1937年进行的自由界面电泳没有固定支持介质，扩散和对流都比较强，影响分离效果。所以出现了固定支持介质的电泳，样品在固定的介质中进行电泳过程，减少了扩散和对流等干扰作用。最初的支持介质是滤纸和醋酸纤维素膜，目前这些介质在实验室已经应用得较少。在很
电泳跑胶SDSPAGE的定义
聚丙烯酰胺凝胶电泳是网状结构，具有分子筛效应，它有两种形式，一种是非变性聚丙烯酰胺凝胶，蛋白质在电泳中保持完整的状态，蛋白在其中依三种因素分开：蛋白大小，形状和电荷。而SDS-PAGE仅根据蛋白分子量亚基的不同而分离蛋白。这个技术首先是1967年由shapiro建立，他们发现在样品介质和丙烯酰胺凝胶
western－blot电泳的胶怎么放平？
最近实验室western blot电泳的胶做出来不够平整，仔细思考一下实验步骤，总结有一下几个方面原因供大家参考1)实验用的玻璃板必须洗干净2)过硫酸铵和TEMED的加量不合适，加量较多时，凝胶凝固过快也会胶不平，最多按照分子克隆加倍3)加完试剂以后没有很好的摇匀，导致有些部位的聚合剂浓度过高，聚合
跑电泳时为什么总是漏胶？
1）每次电泳完后，洗净玻璃、胶条和其它附件，下次用之前，用75％酒精擦拭玻璃和胶条，能有效防漏，且利于剥胶。2）避免玻璃边缘（与胶条接触处）破损很重要，尤其是下面和胶条接触的地方3）关键是找一块很平的桌面，使两块玻璃底面非常齐就行了4）胶条一定要干，跑完电泳后，胶条就放在实验台上晾着。5）下面的胶条
电泳跑胶SDSPAGE的定义
SDS-PAGE即聚丙烯酰氨凝胶电泳详细资料如下：聚丙烯酰胺凝胶电泳是网状结构，具有分子筛效应，它有两种形式，一种是非变性聚丙烯酰胺凝胶，蛋白质在电泳中保持完整的状态，蛋白在其中依三种因素分开：蛋白大小，形状和电荷。而SDS-PAGE仅根据蛋白分子量亚基的不同而分离蛋白。这个技术首先是1967年由s
19—26KD蛋白条带用多少浓缩胶
26kd蛋白用15%的胶.因为跑50kDa以上的蛋白要用10%的。50kDa-15kDa左右的话用15%的，跑更小的蛋白（比如10左右或以下的），就要适当的把胶的浓度再提高，18%或20%都可以。所以26kd蛋白用15%的胶.如果以溴酚蓝跑到胶的底部为准,26kD在10%的由下往上1/4的地方,而1