原生质体的收集、纯化与活力测定介绍
经酶解处理后，得到的混合物是一个由原生质体、细胞团与细胞碎片等组成的混合液，只有将杂质和酶液去掉，使原生质体纯化，才能进行培养。（1）收集：原生质体混合液用滤网（40-100 µm）去掉没有降解的细胞及组织，收集滤液。（2）洗涤：将网下物低速离心，去掉上清液,再加无酶液的CPW液悬起原生质体，再离心，弃上清，重复几次即可。（3）纯化：采用上浮法和下沉法两种纯化方法。上浮法是将酶解的原生质体与蔗糖溶液（23%左右）混合，下沉法是先将原生质体与13%的甘露醇混合，然后加到23%的蔗糖溶液顶部，形成一个界面。两种方法中，均在100×g 下离心5-10分钟，会在蔗糖溶液顶部形成一条原生质体带。用吸管将带轻轻地吸出来，用培养基悬浮离心，然后稀释到104-105个/ml，用于培养。（4）活力测定：原生质体培养前通常要进行活力检查，以便知道其状态是否正常。测定原生质体活力的方法主要有观察胞质环流（Cytoplasmic streaming）、......阅读全文
原生质体的收集、纯化与活力测定介绍
经酶解处理后，得到的混合物是一个由原生质体、细胞团与细胞碎片等组成的混合液，只有将杂质和酶液去掉，使原生质体纯化，才能进行培养。（1）收集：原生质体混合液用滤网（40-100 µm）去掉没有降解的细胞及组织，收集滤液。（2）洗涤：将网下物低速离心，去掉上清液,再加无酶液的CPW液悬起原生质体，再离心
原生质体的活力测定
检验原生质体是活细胞还是死细胞染色法：①二乙酸荧光素（FDA）法：FDA本来没有荧光，当其进入细胞后被脂酶分解为具有荧光的极性物，不能透过质膜，而是留在细胞内发出荧光。因此能发出荧光的是具有活性的原生质体。②酚藏花红染料法:具有活性的原生质体均不着色，而死去的原生质体立即染成红色。③伊文思蓝染色法：
原生质体的纯化方法
原生质体的纯化方法：沉降法、漂浮法、界面法。
酶的纯化与活力测定
酶的纯化与活力测定在酶学和酶工程的生产和研究中，经常需要进行酶活力的测定，以确定酶量的多少以及变化情况。酶活力测定是在一定条件下测定酶所催化的反应速度。在外界条件相同的情况下，反应速度越大，意味着酶的活力越高。1 酶活力测定的方法酶活力测定的方法很多，如化学测定法、光学测定法、气体测定法等。酶活力测
酶的纯化与活力测定
在酶学和酶工程的生产和研究中，经常需要进行酶活力的测定，以确定酶量的多少以及变化情况。酶活力测定是在一定条件下测定酶所催化的反应速度。在外界条件相同的情况下，反应速度越大，意味着酶的活力越高。1 酶活力测定的方法酶活力测定的方法很多，如化学测定法、光学测定法、气体测定法等。酶活力测定均包括两个阶段：
原生质体的应用介绍
由于没有细胞壁，原生质体为作物遗传改良和植物学研究提供了极为有利的试验材料。原生质体可以用于下面几种研究。1. 用作细胞杂交服务于作物改良2. 用作遗传转化的对象3. 研究细胞壁的发生过程4. 筛选突变体5. 膜的结构、运输、激素接受位点等的研究6. 用于分离细胞器和大分子7. 种质资源保存
原生质体融合的发展与研究
1960年，Cocking用酶法制备高等植物原生质体首次获得成功；1970年，Power首次用硝酸钠进行为诱导剂进行了较大规模的原生质体诱导融合；1971年，Nagata和Takebe首次从离体烟草原生质体培养中获得再生完整植株；1972年，Carlson首次获得粉蓝烟草和郎氏烟草的细胞杂种，这也是
原生质体培养的方法介绍
主要有液体浅层培养法、液体悬滴培养、固体平板法、固液双层培养法（应用最广泛）、琼脂糖珠培养法。
原生质体的分离方法介绍
机械分离法 ：常用于分离藻类原生质体，采用渗透方法使细胞发生质壁分离，用刀把细胞壁切破，使原生质体流出。（手工操作难度大，得率低，费时费力）酶解分离法：用酶（琼脂酶，果胶酶，纤维素酶等）将细胞壁分解。（条件温和，原生质体完整性好，活力高，得率高） 因此原生质体制备多采用酶解法，此法操作过程分为：取材
原生质体发生融合的介绍
由于在自然条件下，原生质体发生融合的频率非常低，因此在实际育种过程中要采用一定方法进行人为诱导融合。两株出发菌株制备好的原生质体可以通过化学因子或电场诱导的方法进行融合。 [3] 化学因子诱导是把两个亲株的原生质体混合在一起，加入融合剂聚乙二醇（ polyethylene glycol，PEG
原生质体的鉴定方法介绍
即检验所获得的原生质体是否是真正的原生质体（1）低渗胀破法：把原生质体放入低渗透溶液中，在显微镜下观察原生质体从低渗溶液中吸水胀破的过程。如果是真正的原生质体，因为没有细胞壁，这样在胀破后留下的残迹应该是无形的。如果原生质体还带有部分细胞壁，则原生质体从无壁部分吸水向外膨胀直至胀破，破碎后留下的残迹
原生质体融合的基本介绍
植物体细胞杂交（plant somatic hybridization）,又称原生质体融合（Protoplast fusion ）是指将植物不同种、属，甚至科间的原生质体通过人工方法诱导融合，然后进行离体培养，使其再生杂种植株的技术。植物细胞具有细胞壁，未脱壁的两个细胞是很难融合的，植物细胞只有
植物原生质体的特点介绍
植物原生质体具有以下的特点： ①无细胞壁的物理障碍； ②能获得遗传性状和生理性状较一致的细胞群体； ③植物原生质体同样具有全能性； ④用组织培养方法可进行大量繁殖。 这些有利的特征决定了原生质体是一个极好的实验体系，在植物育种上有广泛用途。
关于原生质体的基本介绍
原生质体是细胞壁以内各种结构的总称,也是组成细胞的一个形态结构单位，活细胞中各种代谢活动均在此进行。原生质体包括细胞膜（cell membrane）、细胞质（cytoplasm）、细胞核（nucleus）和细胞器（organelle）等。原生质体化学成分十分复杂,其组分也随着细胞不断的新陈代谢活
原生质体的概念
原生质体（Protoplast）：指采用机械或酶解法去掉细胞壁的裸露细胞。
原生质体的培养
原生质体（Protoplast）：指采用机械或酶解法去掉细胞壁的裸露细胞。一、原生质体的应用 由于没有细胞壁，原生质体为作物遗传改良和植物学研究提供了极为有利的试验材料。原生质体可以用于下面几种研究。1. 用作细胞杂交服务于作物改良2. 用作遗传转化的对象3. 研究细胞壁的发生过程4. 筛选
原生质体融合的融合过程介绍
将植物细胞A与植物细胞B用纤维素酶和果胶酶处理，得到不含细胞壁的原生质体A和原生质体B，运用物理方法或是化学方法诱导融合，形成杂种细胞，再利用植物细胞培养技术将杂种细胞培养成杂种植物体。①杂交时间：植物细胞杂交是从细胞融合开始，到培育成的新植物体结束。a.原生质体制备：用酶解法去除细胞壁（纤维素酶和
同时测定小麦原生质体的电流与离子流，发现电流与K+...
同时测定小麦原生质体的电流与离子流，发现电流与K+密切相关，与Ca2+无关关键词：微电极离子流测定 ( Microelectrode Ion-Flux Estimation); 膜片钳（Patch clamp）参考文献：Matthew G. et al. The Plant Journal. 200
原生质体的细胞核的介绍
除细菌和蓝藻外，所有的植物细胞都含有细胞核，通常一个细胞只具有一个细胞核。细胞核位于细胞中央，一般呈圆形、卵圆形，或稍伸长，也有其他形状的，如某些植物花粉的营养核为不规则裂瓣。细胞核大小相差很大，直径般为10~20um，在光学显微镜下可以观察到，经过固定和染色后可以看到其内部构造，有核膜、核仁、
G.灵芝原生质体的制备与再生
实验概要G.灵芝原生质体的制备与再生，对G.灵芝原生质体单核化十分重要。本实验主要介绍G.灵芝原生质体的制备与再生方法。灵芝有两种不同类型的菌丝（单倍体菌丝和二倍体菌丝）。利用原生质体再生的方法可以分离成一个单细胞，也许只含一套染色体。首先，我们把菌丝体消化成单个原生质体。然后，稀释成适当浓度的原生
细菌原生质体融合
一、目的要求: 了解原生质体融合技术的原理. 学习并掌握以细菌为材料的原生质体融合技术. 二、基本原理: 原核微生物基因重组主要可通过转化、转导、接合等途径,但有些微生物不适于采用这些途径,从而使育种工作受到一定的限制.1978 年第三届国际工业微生物遗传学讨论会上,有人提出
细菌原生质体融合
一、目的要求: 了解原生质体融合技术的原理. 学习并掌握以细菌为材料的原生质体融合技术. 二、基本原理: 原核微生物基因重组主要可通过转化、转导、接合等途径,但有些微生物不适于采用这些途径,从而使育种工作受到一定的限制.1978 年第三届国际工业微生物遗传学讨论会上,有人提出微
原生质体的细胞膜相关介绍
细胞膜又称质膜，是指细胞质与细胞壁相接触的一层生物膜，在光学显微镜下不可见，须采用高渗溶液处理后发生质壁分离时，能在是原生质体表面看到一层光滑的薄膜。细胞膜的主要功能包括选择透性和调节代谢等。选择透性表现在能阻止可溶性蛋白质和糖等多种有机物从细胞内渗出，同时又能使水、无机盐和其他的必需营养物质进
关于原生质体融合的历史进展介绍
1960年，Cocking用酶法制备高等植物原生质体首次获得成功； 1970年，Power首次用硝酸钠进行为诱导剂进行了较大规模的原生质体诱导融合； 1971年，Nagata和Takebe首次从离体烟草原生质体培养中获得再生完整植株； 1972年，Carlson首次获得粉蓝烟草和郎氏烟草的
关于原生质体的现生特性介绍
融合后的原生质体具有生物活性，但不具有细胞壁，无法表现优良的生产性状，不能在普通培养基上生长，必须设法让它长出细胞壁，所以将重新形成细胞壁的过程称为再生。再生培养基必须具有与原生质体内相同的渗透压，常用含有Ca2+、Mg2+或增加渗透压稳定剂的完全培养基。把融合的原生质体涂布于添加渗透稳定剂的高
原生质体培养的意义
①植物原生质体是细胞无性系变异和突变体筛选的重要来源；②植物原生质体是细胞融合工作的基础；③植物原生质体是植物遗传工程的理想受体和遗传饰变的理想材料；④在细胞生物学与遗传理论研究上的应用。
植物原生质体的制备
原生质体是指植物细胞去掉细胞壁的裸露部分。它在培养条件下，①具有再生细胞壁，进行连续的细胞分裂并再生成完整植株的能力；②具有摄取外源大分子、细胞器，以及细菌，病毒的能力，因此是进行遗传操作，基因转移的好材料；③通过同种和异种植物的原生质体融合，可产生异核体，实现体细胞杂交，培育出新品种。 实验原理
原生质体融合的原理
两个具有不同遗传性状的细胞，采用适宜的水解酶溶解细胞壁后，在自发情况或融合剂作用下，两个原生质体接触，融合成为异核体，经过繁殖复制进一步核融合，形成杂合二倍体，再经过染色体交换产生重组体，达到基因重组的目的，并在适宜的条件下再生出细胞壁，对重组体进行生产性能、生理生化和遗传特性分析获得所需重组子。其
概述原生质体的制备
原生质体是植物或微生物细胞去掉壁以后的内含物。原生质体的制备主要是在高渗压溶液中加入细胞壁分解酶，将细胞壁剥离，结果剩下由原生质膜包住的类似球状的原生质体，它保持原细胞的一切活性。 制备原生质体首先需要选择供融合的两个亲株。要求亲株的性能稳定并带有遗传标记，一般以营养缺陷型和抗药性等遗传性状为
植物原生质体的制备
实验材料 油菜或菠菜或烟草试剂、试剂盒 氯化钙、蒸馏水、2蔗糖、酶解液仪器、耗材 显微镜、离心机、离心管、剪刀、镊子、吸管、培养皿、载玻片、盖玻片