关于蛋白表达系统—哺乳动物表达系统的介绍

哺乳动物细胞表达外源重组蛋白可利用质粒转染和病毒载体的感染。利用质粒转染获得稳定的转染细胞需几周甚至几个月时间,而利用病毒表达系统则可快速感染细胞,在几天内使外源基因整合到病毒载体中,尤其适用于从大量表达产物中检测出目的蛋白。哺乳动物细胞表达载体必须包含原核序列、启动子、增强子、选择标记基因、终止子和多聚核苷酸信号等控制元件。 根据目的蛋白表达的时空差异,可将表达系统分为瞬时、稳定和诱导表达系统。瞬时表达系统是指宿主细胞在导入表达载体后不经选择培养,载体DNA随细胞分裂而逐渐丢失,目的蛋白的表达时限短暂;瞬时表达系统的优点是简捷,实验周期短。稳定表达系统是指载体进入宿主细胞并经选择培养,载体DNA稳定存在于细胞内,目的蛋白的表达持久、稳定。由于需抗性选择甚至加压扩增等步骤,稳定表达相对耗时耗力。诱导表达系统是指目的基因的转录受外源小分子诱导后才得以开放。采用异源启动子、增强子和可扩增的遗传标记,可提高蛋白产量。 哺乳动物......阅读全文

蛋白质的短暂表达实验

实验材料 载体试剂、试剂盒 牛血清DMEM葡聚糖PBSDMSOEDTA仪器、耗材 培养皿培养箱相差显微镜离心机实验步骤1.  将目的基因亚克隆至合适的载体中得到所需的重组DNA,用小量法(5 ml 培养物)或用CsCl/溴化乙锭离心法纯化重组DNA。2.  将在DMEM-10 CS中生长汇片的COS

蛋白质的短暂表达实验

基本方案             实验材料 载体 试剂、试剂盒

Northwestern筛选蛋白表达文库实验

实验方法原理 Northwestern 筛选蛋白表达文库的方法是通过构建 IPTG 可诱导的融合蛋白表达文库(融合蛋白的 N 端由载体序列编码,C 端由克隆到载体的 cDNA 文库编码),进而诱导融合蛋白表达,并将蛋白质固定于硝酸纤维素滤膜上,以标记的 RNA 探针进行筛选,最终获取能与靶

分子克隆蛋白表达实验指南(十二)

– Note: The yield of fusion protein can be estimated by measuring the   absorbance at 280 nm. The GST affinity tag can be approximated by 1 A280 Å 0.5

蛋白质的短暂表达实验

基本方案             实验材料 载体 试剂、试剂盒

从包涵体中纯化表达蛋白

实验材料 表达靶蛋白的大肠杆菌细胞试剂、试剂盒 细胞裂解缓冲液 I细胞裂解缓冲液Ⅱ脱氧胆酸浓盐酸包涵体溶解缓冲液 I包涵体溶解缓冲液ⅡKOHPMSFSDS 凝胶加样缓冲液含尿素的 Tris-ClDNaseI溶菌酶SDS-聚丙烯酰胺凝胶仪器、耗材 Sorvall GSA 转头或相当的转头pH 试纸磨光

Northwestern筛选蛋白表达文库实验

            实验方法原理 Northwestern 筛选蛋白表达文库的方法是通过构建 IPTG 可诱导的融合蛋白表达文库(融合蛋白的 N 端由载体序列编码,C 端由克隆到载体的 cDNA 文库编码),进而诱导融合蛋白表达,并将蛋白质固定于硝酸纤维素滤

Northwestern筛选蛋白表达文库实验

Northwestern 筛选蛋白表达文库的方法是通过构建 IPTG 可诱导的融合蛋白表达文库(融合蛋白的 N 端由载体序列编码,C 端由克隆到载体的 cDNA 文库编码),进而诱导融合蛋白表达,并将蛋白质固定于硝酸纤维素滤膜上,以标记的 RNA 探针进行筛选,最终获取能与靶 RNA 分子特异性结合

有关融合蛋白表达载体的克隆

在构建融含蛋白表达载体时除了要注意插入片段的方向、读码框架与载体保持一致外,注意以下问题可能会减少一些不必要的麻烦,当外源片的插入载体起始密码的后面,另一个基因的前面时,注意检查插入后基因的两端是否引入了新的终止密码,特别是用到Klenow mung bean 核酸酶,T4 Polymerase

分子克隆蛋白表达实验指南(十四)

RbCl制备感受态细胞  需准备的灭菌器具和培养液:  SOB,Buffer 1,Buffer 2,3×200ml广口瓶,1.5ml   EP管,1×500ml离心瓶(按200ml摇菌量计算),2×50ml离心管,2×移液管(用于加Buffer 1),液氮,冰  离心管,EP管,移液管使用前均需要放

蛋白体外表达纯化

实验目的:获得目的蛋白的粗蛋白,构建反应体系;表达载体:pLM303;步骤:     1.挑菌小摇,5 ml,37℃过夜;可保菌;      2.取1 ml加到30 ml LB k+培养基中,37℃,约1.5 h,到OD600约为0.6;      3.取2 ml 作为IPTG加入之前的对照;加入I

分子克隆蛋白表达实验指南(十五)

  LB固体培养基          Tryptone              1g          Yeast Extract           0.5g          NaCl                 1g  Agar                 1.5g  加蒸馏水至总体

异源蛋白表达的基本介绍

  随着人类基因组计划的完成,蛋白表达技术已渗透到生命科学研究的各个领域。越来越多的基因被发现,其中多数基因功能不明,利用蛋白表达系统表达目的基因是研究基因功能及其相互作用的重要手段。根据不同的表达要求,如表达量高低、目标蛋白的活性和表达产物的纯化方法,可选用适当的表达系统及相应的表达策略。

酰基载体蛋白的基本表达

  随着分子生物学和基因组学研究的不断深入,有关植物不同 ACP 功能分析的研究取得了一定进展。拟南芥 ACP1 是种子中优先表达的 ACP 基因。Branen 等人构建了 35S 启动子驱动的带有 ACP1 和其上游 400bp 序列的植物表达载体,转基因的拟南芥植株在叶组织中该基因的表达增加了

LSCM表达荧光蛋白的组织

表达荧光蛋白的组织经冷冻切片制样后,可直接封片,观察并扫描图像,也可配合使用其它荧光染料进行免疫荧光抗体标记和核染色。同时表达GFP 和 RFP 荧光蛋白的组织切片,如还需作免疫荧光抗体标记,应选择可以被 633 nm 和 405 nm 波长激光器激发的荧光染料,如 CY5、Alexa fluor

分子克隆蛋白表达实验指南(十八)

15%胶                  水1.11.872.33.43.854.65.76.99.211.5        30%聚丙烯酰胺混合液2.54.2557.58.751012.5152025        1.5M Tris(pH=8.8)1.32.212.53.84.5556.37.

包涵体表达蛋白的纯化方法

Joseph SambrookPeter Maccallum Cancer Institute and The University of Melbourne, AustraliaDavid W. RussellUniversity of Texas Southwestern Medical Cen

从包涵体中纯化表达蛋白

实验方法原理蛋白质在大肠杆菌中的高水平表达,常常导致形成相差显微镜下可见的细胞质颗粒或包涵体。这些由表达蛋白聚集成的包涵体很容易与可溶性蛋白和膜结合蛋白分离。高水平表达外源蛋白的细菌经离心浓缩后,可通过机械法、超声处理法或溶菌酶加去污剂的方法进行裂解。包涵体经离心沉淀后,可用Triton X-100

关于蛋白表达系统的基本介绍

  蛋白表达系统是指由宿主、外源基因、载体和辅助成分组成的体系。通过这个体系可以实现外源基因在宿主中表达的目的。一般由以下几个部分组成:  1、宿主。表达蛋白的生物体。可以为细菌、酵母、植物细胞、动物细胞等。由于各种生物的特性不同,适合表达蛋白的种类也不相同。  2、载体。载体的种类与宿主相匹配。根

包涵体表达的蛋白的复性

包涵体表达的蛋白的复性摘要  综述了包涵体形成、包涵体分离和溶解、包涵体折叠复性的方法、复性产率低下的主要因素以及通过分子伴侣、低分子量添加物等的应用而提高了蛋白质复性产率。关键词  包涵体  蛋白质  复性Abstract  Strategies for decreasing the format

Science:miRNA控制蛋白表达的噪音

  众所周知,一些microRNA能使特定基因的表达下调,然而,对于这些小的非编码RNA的更广泛用途,人们还不是太清楚。一项新的研究表明,miRNA可作为基因组噪音的阻尼器,控制蛋白表达的变化。这项成果发表于4月3日的《Science》杂志上。  miRNA的普遍和保守,再加上它们微弱抑制绝大多数目

分子克隆蛋白表达实验指南(十六)

Amp(50mg/ml)        溶解1g Amp于足量的水中,最后定容至20ml。分装成小份于-20℃贮存。常以20~50ug/ml的终浓度添加于生长培养基,1:1000比例稀释             Kan(50mg/ml)        溶解1g Kan于足量的水中,最后定容至20ml

不用iptg诱导,蛋白会表达吗

不加IPTG也会有少量表达,即leaking

无细胞蛋白表达系统的选择

图1.  与细胞内蛋白表达相比,无细胞蛋白表达系统能够显著地节约时间。 与基于细胞的蛋白表达系统相比较,无细胞蛋白表达系统具有独特的优势,包括节约时间、提高具有功能的、可溶的、全长蛋白的总体产量。本文介绍了根据模板类型、期望产率以及下游实验等因素来选择无细胞蛋白表达系统的标准。

GST融合蛋白纯化——筛选表达株

Purification of GST fusion proteins in E.coli GSTSugden lab,McArdle Laboratory for Cancer Research ,University of Wisconsin-Madison Medical SchoolScre

重组蛋白的表达与纯化

实验概要本实验将重组大肠杆菌经过诱导培养后,获得了表达的重组蛋白,分别用Ni-NTA柱亲和层析、High Q与DEAE阴离子交换层析、Glutathione柱亲和层析进行了层析纯化,并进行了浓缩。实验步骤1. 将测序正确的质粒转化Rosetta(DE3)菌,过夜培养后,挑取单菌落,于小试管内进行IP

分子克隆蛋白表达实验指南(三)

若有非特异性条带,可进行Touchdown PCR,提高引物的特异性。     PCR反应条件:            1      94C     5min            2      94C     45s            3      65C     45s      退火温度视

原核蛋白表达常见问题

蛋白不表达或表达量很低?1、选择正确的表达载体与表达菌株• T7启动子的载体(如pET系列载体)应选用BL21(DE3),BL21(DE3) pLysS,Transetta(DE3) 等菌株。非T7启动子的表达载体 (如Tac启动子的pGEX、pMAL系列表达载体) 应选用BL21表达菌株。• 对细

分子克隆蛋白表达实验指南(十一)

SDS-PAGE胶样品排列:        MarkerUII 37CUI’I’        Marker:低分子量蛋白marker,上样10ul        UI:未诱导菌液,上样10ul。任取37C和20C中一个        I:诱导后对照,上样10ul        UI’, I’代表G