双向电泳前去垢剂和离液剂对蛋白质的增溶作用实验

实验材料:蛋白质 试剂、试剂盒:十二烷基麦芽糖苷 阳离子去垢剂  ......阅读全文

双向电泳前去垢剂和离液剂对蛋白质的增溶作用实验

实验材料 蛋白质试剂、试剂盒 十二烷基麦芽糖苷阳离子去垢剂尿素贮存液尿素-硫脲贮存液仪器、耗材 超速离心机IPGphor 装置实验步骤 3.1 用于 IEF 的蛋白质样品在尿素中的溶解1. 固体样品溶解(如组织或细胞颗粒)在这种情况下,在终端溶解体积中往往忽略样品的体积。样品溶液含有尿素(终浓度

双向电泳前去垢剂和离液剂对蛋白质的增溶作用实验

实验材料:蛋白质  试剂、试剂盒:十二烷基麦芽糖苷                                                                  阳离子去垢剂                                                    

双向电泳前去垢剂和离液剂对蛋白质的增溶作用实验

实验材料蛋白质试剂、试剂盒十二烷基麦芽糖苷阳离子去垢剂尿素贮存液尿素-硫脲贮存液仪器、耗材超速离心机IPGphor 装置实验步骤3.1 用于 IEF 的蛋白质样品在尿素中的溶解1. 固体样品溶解(如组织或细胞颗粒)在这种情况下,在终端溶解体积中往往忽略样品的体积。样品溶液含有尿素(终浓度 9~9.5

关于溶解包涵体的基本内容介绍

  最经常使用溶解包涵体的试剂包括离液剂或者去垢剂。  最经常使用的溶解和制备蛋白质的离子型的离液剂最早于1969年Hatefi等人发展的离子型的去垢剂如SDS是另外一种溶解包涵体蛋白质和膜蛋白质的试剂,但是一般不用来大规模的生产,而是用来定性。除了强酸、强碱和利用有机溶剂来提取疏水性很强的蛋白质以

蛋白质技术——双向电泳

实验概要蛋白质组研究的发展以双向电泳技术作为核心.  双向电泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分离约1000个E.coli蛋白,并表明蛋白质谱不是稳定的,而是随环境而变化.  双向电泳原理简明,第一向进行等电聚焦,蛋白质沿pH梯度分离,至各自的等电点;随后,再沿垂直的方向进行分子

蛋白质的双向电泳实验

等电聚焦法             实验方法原理 蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦( Isoelect rofocusing ,IEF) , 根据蛋白质的等电点不同进行分离;

蛋白质的双向电泳实验

实验方法原理 蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦( Isoelect rofocusing ,IEF) , 根据蛋白质的等电点不同进行分离; 第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳( SDS-PAGE ) , 按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后, 可以得到蛋白质分子的等电点

谷类植物种子蛋白质提取实验

实验材料 白蛋白球蛋白试剂、试剂盒 提取液漂洗液溶解液烧化剂甘油溶液实验步骤 3.1 种子总蛋白提取的普适方法使用普适方法的目的在于从研磨好的种子中提取总蛋白质,不考虑具体的蛋白质种类 。此方法由 Damerval 等 [ 9] 及 Granier [ 10 ] 提出,它可以用于所有的种子,参见第

谷类植物种子蛋白质提取实验

实验材料白蛋白球蛋白试剂、试剂盒提取液漂洗液溶解液烧化剂甘油溶液实验步骤3.1 种子总蛋白提取的普适方法使用普适方法的目的在于从研磨好的种子中提取总蛋白质,不考虑具体的蛋白质种类 。此方法由 Damerval 等 [ 9] 及 Granier [ 10 ] 提出,它可以用于所有的种子,参见第 1 章

谷类植物种子蛋白质提取实验

实验材料白蛋白                                                                  球蛋白                                                          试剂、试剂盒提取液      

蛋白质双向电泳过程与体会

    双向电泳IEF (sigma)IEF(not IPG)/SDS-PAGE最简单的装备推荐如下,适合于没多少money做IPG又想做“热”的所谓蛋白质组的.    IEF用Biorad的圆盘电泳槽(不行用国产的吧,不推荐),SDS-PAGE用六一厂的就可以了(ft,六一厂应该给我money吧,

蛋白质双向电泳过程与体会

蛋白质双向电泳过程与体会 双向电泳IEF (sigma) IEF(not IPG)/SDS-PAGE最简单的装备推荐如下,适合于没多少money做IPG又想做“热”的所谓蛋白质组的,嘻嘻! IEF用Biorad的圆盘电泳槽(不行用国产的吧,不推荐),SDS-PAGE用六一厂的就可以了(ft,六一厂应

蛋白质组学样品处理方法

  蛋白质组学研究已经成为后基因组时代的研究热点,是生命科学研究领域又一个新的突破口。本文从对疏水性强的蛋白质、极性蛋白质、高丰度蛋白的处理、低丰度蛋白的富集和对样品溶液中干扰性物质的去除以及对不同染色后质谱前处理等方面综述了蛋白质样品的一般处理方法。  1. 不溶性蛋白质的处理  天然状态的蛋白质

包涵体染色的方法有哪些

包涵体染色的方法有哪些?原理是什么包涵体染色的方法有哪些?原理是什么包涵体染色的方法有哪些?原理是什么蛋白包涵体-溶解原理及方法2009年03月15日;维持包涵体内蛋白质结构的作用力是分子内的作用力,;1.遵循标准;包涵体蛋白质的溶解同样是一个工艺的关键的步骤;(1)快速溶解的动力学;;(2)与蛋白

包涵体染色的方法有哪些?原理是什么

蛋白包涵体-溶解原理及方法2009年03月15日;维持包涵体内蛋白质结构的作用力是分子内的作用力,;1.遵循标准;包涵体蛋白质的溶解同样是一个工艺的关键的步骤;(1)快速溶解的动力学;;(2)与蛋白质的结合是可逆的;;(3)对细胞碎片的分离方法没有干扰作用;;(4)对温度没有依赖作用;;(5)抑制蛋

双向电泳(twodimensional-electrophoresis,2DE)1

一、蛋白质组学概论随着人类基因组计划的实施,生命科学步入了后基因组时代,出现了不同于以往经典生物实验科学的全新的研究方式─“生物大科学”。这种生物大科学的核心思想是整体性研究,即以生物体内某类物质为对象进行完整的研究。过去对生命活动的研究仅限于研究细胞内个别的基因或蛋白质,而基因组学和蛋白质组学的目

包涵体的简介

基因工程定义:在某些生长条件下,大肠杆菌能积累某种特殊的生物大分子,它们致密地集聚在细胞内,或被膜包裹或形成无膜裸露结构,这种水不溶性的结构称为包涵体(Inclusion Bodies,IB)。病毒在增殖的过程中,常使寄主细胞内形成一种蛋白质性质的病变结构,在光学显微镜下可见。多为圆形、卵圆形或不定

蛋白质的双向电泳注意事项

蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦(Isoelectrofocusing, IEF),根据蛋白质的等电点不同进行分离;第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE),按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后,可以得到蛋白质分子的等电点和分子量信息。注意事项:1. 一向聚焦与二

蛋白质的双向电泳实验方法

第一向(等电点聚焦,IEF)1)凝胶条的准备1.以帽凝胶端(2个校准环:4mm和10mm)朝下,将4根玻璃管插入两个凝胶灌注装置的每个托架中,这样玻璃管恰好站在两个分隔室之一的“充填船”上。从玻璃管顶端到玻璃管底端拉入PP线(小心,线不易移动),否则以后将不能用它们将胶溶液拉上来。2.溶解分离胶溶液

蛋白质的双向电泳注意事项

  蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦(Isoelectrofocusing, IEF),根据蛋白质的等电点不同进行分离;第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE),按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后,可以得到蛋白质分子的等电点和分子量信息。   注意事项:   1

蛋白质的双向电泳注意事项

  蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦(Isoelectrofocusing, IEF),根据蛋白质的等电点不同进行分离;第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE),按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后,可以得到蛋白质分子的等电点和分子量信息。   注意事项:   1

蛋白质的双向电泳注意事项

蛋白质的双向电泳的向为等电聚焦(Isoelectrofocusing, IEF),根据蛋白质的等电点不同进行分离;第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE),按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后,可以得到蛋白质分子的等电点和分子量信息。注意事项:1. 一向聚焦与二向电泳之

双向电泳的实验相关试剂配制

1.        Bradford 工作液95%乙醇             25ml       先用乙醇溶解考马斯亮兰G250,溶解完后再加磷85%磷酸             52ml       酸,最后超纯水定容至500ml。过滤后置于棕色瓶考马斯亮兰G250      0.035g 

溶解包涵体蛋白质的方法—去垢剂的介绍

  去垢剂是一种最经济的溶解包涵体蛋白质的方法,一个最大的优点是溶解的蛋白质有可能保持全部的生物活性,说明在此条件下保持了蛋白质的四级结构。最重要的是稀释以后蛋白质的聚集比其它溶剂生成的很少。阳离子型、阴离子型的和非离子型的去垢剂都可以使用,使用时的浓度一般高于去垢剂的临界胶束浓度(CMC),通常是

安瓿剂与输液剂的制备

实验方法原理 1.  安瓿的处理  将纯化水灌入安瓿内, 经100 ℃加热30分钟,趁热甩水,再用滤清的纯化水、注射用水灌满安瓿,甩水,如此反复三次,以除去安瓿表面微量游离碱、金属离子、灰尘和附着的砂粒等杂质。洗净的安瓿,立即以120~140 ℃温度烘干,备用。2.  垂熔玻璃滤器的处理  将垂熔玻

蛋白质的双向电泳实验_等电聚焦法

蛋白质的双向电泳的第一向为等电聚焦( Isoelect rofocusing, IEF) , 根据蛋白质的等电点不同进行分离; 第二向为SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳( SDS-PAGE ) , 按亚基分子量大小进行分离。经过电荷和分子量两次分离后, 可以得到蛋白质分子的等电点和分子量信息。本实验目的是

双向电泳仪的研究方向

随着技术的飞速发展,已能分离出10 000个斑点(spot)。 当双向电泳斑点的全面分析成为现实的时候,蛋白质组的分析变得可行。样品制备(sample prepareation)和溶解同样事关2-DE的成效,目标是尽可能扩大其溶解度和解聚,以提高分辨率。用化学法和机械裂解法破碎以尽可能溶解和解聚蛋白

双向电泳

实验概要本实验介绍了双向电泳技术,先进行等电聚焦电泳(按照pI分离),然后再进行SDS-PAGE(按照分子大小),经染色得到二维分布的蛋白质图。实验原理双向凝胶电泳的原理是第一向基于蛋白质的等电点不同用等电聚焦分离,第二向则按分子量的不同用SDS-PAGE分离,把复杂蛋白混合物中的蛋白质在二维平面上

双向电泳

蛋白质组研究的发展以双向电泳技术作为核心. 双向电泳由O’Farrell’s于1975年首次建立并成功地分离约1 000个E.coli蛋白,并表明蛋白质谱不是稳定的,而是随环境而变化. 双向电泳原理简明,第一向进行等电聚焦,蛋白质沿pH梯度分离,至各自的等电点;随后,再沿垂直的方向进行分子量

木本植物蛋白质提取实验

实验材料 树皮试剂、试剂盒 沉淀缓冲液漂洗缓冲液溶解缓冲液仪器、耗材 离心管实验步骤 3.1 提取总蛋白质 (见注释 5)( 1 ) 将去塞的 10 ml 空离心管称重。我们选用韧性好的聚碳酸酯旋盖圆底高速离心管。( 2 ) 细胞碎裂:500 mg 新鲜组织(保存在 -80°C ) 在液氮中用研钵和