手把手教你质粒转染
胞转染是指将外源分子如DNA，RNA等导入真核细胞的技术。常规转染技术可分为瞬时转染和稳定转染（永久转染）两大类。本实验室主要是质粒转染、miRcroRNA转染、慢病毒转染、药物转染、多肽转染等。 一. 实验材料及试剂 六孔板、CO2培养箱、EP管、酒精灯等；无血清培养基、MEM-α或DMEM、CO2培养箱、EP管、质粒、细胞等 二、实验内容 1当六孔板中细胞密度达90％时，准备转染，将无血清培养基、MEM-α或DMEM取出复温并注意平衡好（以六孔板为例，其他孔板都可以按照说明书进行）； 2取出细胞，将培养基换成无血清培养基，放回孵箱培养； 3取灭菌的EP管，按要求混好质粒（约4ug/孔），每管250uL DMEM，混匀； 4另取EP管，加入lipofectamine 2000（5 uL/孔）和MEM-α或DMEM（250uL/孔），轻轻混匀后室温静置5min； 5将上述两个EP管混匀； 6室温静置20mi......阅读全文
cas9－质粒转染细胞后多长时间过流式
看你想不想让cas9整合入细胞核了。如果只是筛选的话，24-48小时，一般的启动子应该已经启动基因表达了
转染质粒后多长时间蛋白表达达到最高峰
需要根据具体情况进行具体分析，推荐从以下角度进行分析：对细胞表达目的蛋白的时间进行梯度设计，分别取样然后做SDS-PAGE\WB分析；参考实验室经验数据；尝试采用磁珠IP试剂盒产品（义翘有相关产品）进行小量样品的快速纯化；
基因枪介导pVaxDsredIRESEGFP质粒转染体外培养细胞
[摘要] 目的：建立基因枪子弹制备以及转染体外培养cos-7细胞系的方法，观察基因枪介导真核表达质粒pVax-Dsred-IRES-EGFP在细胞内的表达情况。 方法：亚精氨、氯化钙沉淀法制备子弹，利用原子力显微镜观察子弹制备（DNA+金颗粒）情况；以基因枪的方法分别转染对照组和实
基因枪介导pVaxDsredIRESEGFP质粒转染体外培养细...（一）
基因枪介导pVax-Dsred-IRES-EGFP质粒转染体外培养细胞系的实验研究张 亮1 阎瑾琦1马继尧2 王 浩1 刘 宁1 贾锐1 韩 刚2 董金凯2 田仁礼2 于继云[1]1.军事医学科学院 基础医学研究所，北京 100850； 2.解放军总医院 泌尿外科，北京 100853 [摘要] 目的
基因枪介导pVaxDsredIRESEGFP质粒转染体外培养细...（三）
2讨论 基因枪技术, 又称为微粒轰击技术( Particle Bombardment Technology),其基本原理就是将外源基因包裹到比重较大而化学性质很稳定的微米级的金或钨上,然后用微粒加速装置打入靶细胞或组织。早期多用于在植物中转移基因。它通过提供给包裹有DNA的金颗粒很高的初速度,使
杆状病毒表达系统用于表达单一非融合蛋白的转染质粒
由于外加的多角体蛋白或其它的氨基酸可能对外源蛋白的生物活性或细胞定位产生影响，所以用于表达非融合型蛋白的转移载体被广泛应用。几种不同的策略被用于设计高水平表达非融合蛋白的转移载体： (1)如pAcRP[5]系列等，都在多角体基因启动子启始密码ATG上游引入一个单一的限制性多克隆位点； (2)
基因枪介导pVaxDsredIRESEGFP质粒转染体外培养细...（二）
2 结果 2.1 重组质粒pVax-DsRed-IRES-EGFP的酶切鉴定 pVax载体是被美国药品及食物鉴定委员会承认的用于疫苗临床使用的真核表达载体，它具有卡那霉素抗性，非常适合于人体的应用。制备基因枪子弹之前，先对本室构建保存的真核表达载体pVax-Dsred-IRES-EGFP
转染
细胞传代(1) 试验准备：200ul/1mlTip头各一盒（以上物品均需高压灭菌），酒精棉球，废液缸，试管架，微量移液器，记号笔，培养皿，离心管。(2) 弃掉培养皿中的培养基，用1ml的PBS溶液洗涤两次。(3) 用Tip头加入1ml Trypsin液，消化1分钟（37。C，5%CO2 )。用手轻拍
细胞转染脂质体转染法
阳离子脂质体表面带正电荷，能与核酸的磷酸根通过静电作用，将DNA分子包裹入内，形成DNA脂复合物，也能被表面带负电的细胞膜吸附，再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中，是目前实验室最方便的转染方法之一，其转染率较高，优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性
细胞转染电穿孔转染法
电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内，这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下，高电场强度会杀死50%-70% 的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂，可以大大的降低细胞的死亡率，同时提高电穿孔转染效率
转染和转染效率测定步骤
LIPOFECTAMINE 2000转染试剂转染步骤此实验步骤设计用来进行24孔板贴壁细胞的瞬时或稳定转染，其为设计用来在生长培养基中直接加入复合物。1. 转染前一天，胰酶消化细胞并计数，细胞铺板，使其在转染日密度为90%。细胞铺板在0.5ml含血清，不含抗生素的正常生长的培养基中。2. 对于每孔细
基因枪介导pVaxDsredIRESEGFP质粒转染体外培养细胞系的
基因枪介导pVax-Dsred-IRES-EGFP质粒转染体外培养细胞系的实验研究 张 亮1 阎瑾琦1马继尧2 王 浩1 刘 宁1 贾锐1 韩 刚2 董金凯2 田仁礼2 于继云[1] 1.军事医学科学院 基础医学研究所，北京 100850； 2.解放军总医院 泌尿外科，北京 1008
双荧光素酶报告基因实验怎么转染目的和内参两种质粒
（1） 用生物信息学方法分析并预测启动子区可能的转录因子结合位点。（2）设计引物用PCR法从基因组DNA中克隆所需的靶启动子片段，将此片段插入到荧光素酶报告基因质粒（pGL3-basic）中。（3）筛选阳性克隆，测序。扩增克隆并提纯质粒备用。
双荧光素酶报告基因实验怎么转染目的和内参两种质粒
（1） 用生物信息学方法分析并预测启动子区可能的转录因子结合位点。（2）设计引物用PCR法从基因组DNA中克隆所需的靶启动子片段，将此片段插入到荧光素酶报告基因质粒（pGL3-basic）中。（3）筛选阳性克隆，测序。扩增克隆并提纯质粒备用。
基因转染技术的转染方法介绍
1、转染 转染指通过生化或者物理方法将目的基因导入真核细胞中 。 2、感染 感染指通过病毒介导，用基因组中携带有克隆目的片断的病毒来感染靶细胞。
各种转染试剂的中文转染方法
FuGENE6（Roche）转染步骤： 转染前一天将细胞分至培养板，转染当天细胞应50-80％融合。将细胞以1-3×105/2 ml接种于6孔板后孵育过夜将达到如此密度。 将FuGENE6 Reagent在室温孵育10-15分钟。使用之前将FuGENE6颠倒混匀一下。 1. 在PCR管中加入不含血
DNA转染
DNA转染· Transfection of Mammalian Cells Using Lipofectamine (LTI)· Guide to Eukaryotic Transfections with Cationic Lipid Reagents (PDF)
细胞转染
脂质体介导法 磷酸钙沉淀法 实验方法原理 外源基因进入细胞主要有四种方法：电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的
基因转染技术的病毒方法转染介绍
病毒作为基因转染是基因递送良好的工具，病毒载体的优点有： （1）在转化的细胞中传播重组的DNA分子作为稳定的遗传成分； （2）可能将有缺陷的或突变的基因置于病毒调节信号的控制下以进行研究； （3）能将克隆的基因作为病毒微染色体的一部分 ，并能进行分离； （4）转移效率较高。其主要缺点是病
转染的概念和常规转染技术分类
转染(transfection)是细胞在一定条件下主动或被动导入外源DNA片段而获得新的表型的过程。常规转染技术可分为瞬时转染和稳定转染（永久转染）两大类。
基因转染技术的转染与分析介绍
具体的基因转染条件应参考所使用的试剂和方法进行优化。靶基因被导入细胞后，一般在转染后48小时，靶基因即在细胞内表达。根据不同的实验目的，48小时后即可进行靶基因表达的检测等实验。如若建立稳定的细胞系，则可对靶细胞进行筛选，根据不同基因载体中所含有的抗性标志选用相应的药物，最常用的真核表达基因载体
细胞转染实验的实验步骤细胞转染
1）转染试剂的准备A.将400ul去核酸酶水加入管中，震荡10秒钟，溶解脂状物。B.震荡后将试剂放在－20摄氏度保存，使用前还需震荡。2）选择合适的混合比例（1：1－1：2/脂质体体积：DNA质量）来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA，震荡
质粒
Extrachromosomal Elements-Plasmids (Michael Blaber)What's plasmid? Find answer here. It provides background information on the features of plasmid
瞬时转染分析法
摘要： 介绍5种瞬时转染分析法：瞬时转染分析法、稳定转染分析法、体外转录分析法、转基因分析法和同源重组分析法. 1.瞬时转染分析法 目前有很多功能性分析方法用于研究转录调控,最常用的方法是瞬时转染分析法.该方法是通过一定的转染程序将含目的调控区
LSCM细胞转染
细胞转染对于活细胞实验，需要实验设备能够维持细胞的生长。显微镜上需要配备合适的热台，可控制一定的 CO2 浓度、合适的湿度和温度等。此外，是否是倒置显微镜? 能否使用高倍镜、油镜或水镜观察细胞? 为了便于成像，一般使用底部为玻璃片的细胞培养皿。由于显微镜并不是无菌的环境，因此对于一般的活细胞实验并不
真核转染
一些真核蛋白在原核宿主细胞中的表达不但行之有效而且成本低廉，然而许多在细菌中合成的真核蛋白或因折叠方式不正确，或因折叠效率低下，结果使得蛋白活性低或无活性。不仅如此，真核生物蛋白的活性往往需要翻译后加工，例如二硫键的精确形成、糖基化、磷酸化、寡聚体的形成或者由特异性蛋白酶进行的裂解等等，而
siRNA的转染
将制备好的siRNA，siRNA表达载体或表达框架转导至真核细胞中的方法主要有以下几种： 1.磷酸钙共沉淀将氯化钙，RNA(或DNA)和磷酸缓冲液混合，沉淀形成包含DNA且极小的不溶的磷酸钙颗粒。磷酸钙-DNA复合物粘附到细胞膜并通过胞饮进入目的细胞的细胞质。沉淀物的大小和质量对于磷酸钙转染的成功至
细胞瞬时转染
摘要： 通过脂质体介导转染法及电穿孔等基因转染技术，将靶基因导入细胞，一般在转染后48小时左右，靶基因即可在细胞内表达。根据不同的实验目的，48小时后即可进行靶基因表达的检测等实验。 原理： 通过 脂质 体介导转染法及电穿孔等基因转染技术，将靶基因导入细
细胞瞬时转染
细胞瞬时转染可用于（1）观察目的基因功能（2）表达蛋白在某种细胞中的功能（短时间即可进行观察，但效应会很快丢失）。实验方法原理通过脂质体介导转染法及电穿孔等基因转染技术，将靶基因导入细胞，一般在转染后48小时左右，靶基因即可在细胞内表达。根据不同的实验目的，48小时后即可进行靶基因表达的检测等实验。
细胞瞬时转染
细胞瞬时转染 实验方法原理 通过脂质体介导转染法及电穿孔等基因转染技术，将靶基因导入细胞，一般在转染后48小时左右，靶基因即可在细胞内表达。根据不同的实验目的