DNA电泳拖尾严重是什么原因
现在实验室大多用的是提取试剂盒，如果自制溶液碱性过强会有可能出现拖尾现象，蛋白沉降步骤不完全也会有可能导致基因组dna降解出现拖尾现象。类似于溶液方面的问题一般比较容易排除，而且比较容易改正。电泳结果拖尾大部分原因与实验操作有关，在加入碱性溶液裂解细胞后操作需要轻柔，静置时间不宜过长，剧烈震荡以及静置时间过长均可导致质粒dna断裂，电泳结果中出现拖尾现象。......阅读全文
RNA电泳条带拖尾原因
提得RNA溶液降解，有DNA污染。需要处理耗材，台面，电泳槽，仪器的RNA酶污染，防止RNA降解，外源RNA酶清除剂，能有效替代致癌物DEPC使用，能够高效清除各种外源RNA酶，如RNase H,RNase T等。
提质粒最后电泳拖尾什么原因
第一有可能质粒的双链DNA破碎了，看来是你第一步重悬的过程对DNA造成一定程度的损害了，按说2000rpm，5min沉淀菌体，然后再加I液重悬，震荡1min就应该搞定的，顶多2min；第二种可能就是RNA没有除干净，拖尾的就是小分子的RNA片段，试着多加点RNA酶吧
酶切电泳条带拖尾的原因
建议你做如下改进：1.原始质粒上样2ul,电泳检测,确定质粒质量没问题；2.所有酶切体系均改为10ul,其中质粒2ul,酶0.1ul （双酶切时另一种酶也加0.1ul ）,buffer终浓度为 1×,剩下为去离子水.酶切时间为4小时左右.3.电泳用的凝胶最好为新鲜配制的,浓度视质粒大小而定,一般为1
DNA电泳拖尾严重是什么原因
现在实验室大多用的是提取试剂盒，如果自制溶液碱性过强会有可能出现拖尾现象，蛋白沉降步骤不完全也会有可能导致基因组dna降解出现拖尾现象。类似于溶液方面的问题一般比较容易排除，而且比较容易改正。电泳结果拖尾大部分原因与实验操作有关，在加入碱性溶液裂解细胞后操作需要轻柔，静置时间不宜过长，剧烈震荡以及静
电泳分离技术－带拖尾的形成原因
主要是样品融解效果不佳或分离胶浓度过大引起的。 处理办法:加样前离心;选择适当的样品缓冲液,加适量样品促溶剂;电泳缓冲液时间过长,重新配制;降低凝胶浓度。
TLC拖尾现象
拖尾现象原因：样品浓度过大，层析板过载解决方法：直接降低样品浓度或者是上样量。原因：样品对硅胶的吸附能力过强解决方法：对不同体系加入不同的调节剂，酸体系加冰醋酸，碱体系加氨水。原因：展开剂的极性与样品极性不符，不能做到有效展开解决方法：调节展开剂极性。原因：展开剂对样品的溶解度不够解决方法：换极性相
TLC为什么会拖尾？拖尾现象如何处理？
（1）样品溶度过大，TLC板过载，这种情况通过降低样品溶度或者上样量验证；（2）样品未完全溶解，TLC板上有未溶的固体样品，点板一定要是溶液形式；（3）TLC板吸潮，放烘箱110oC活化30分钟即可；（4）样品为强极性物质，含有氨基或者羧基等极性官能团，可以在展开剂中加入酸或者碱；（5）硅胶板在出厂
SDSPAGE电泳的时候有拖尾的现象
可能样品不纯，蛋白降解也可能是你的上样量比较大，建议做个不同浓度的试试。可能酶切时间太长或缓冲体系不好。
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
1、 可以考虑是不是样品不纯，目的产物与杂带相差不大，所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker,marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2 、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液，加2微升溴酚蓝便可，注意上样浓度；3、可能是原液浓度太大造成的；4、可能DNA已降解。5、在提取前对样品进
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
原因有以下：1、 可以考虑是不是样品不纯，目的产物与杂带相差不大，所以要多跑一段时间才有尾巴。参考marker,marker应该不会有。如果有的话说明配胶有问题。2 、琼脂糖检测DNA一般去1~5微升原液，加2微升溴酚蓝便可，注意上样浓度；3、可能是原液浓度太大造成的；4、可能DNA已降解。5、在提
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾的原因
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.
为何出现峰拖尾？
①柱超载--降低样品量,增加柱直径采用较高容量的固定相; ②峰干扰--清洁样品，调整流动相; ③硅羟基作用--加三乙胺，用碱致钝化柱，增加缓冲液或盐的浓度降低流动相pH值，纯化样品; ④柱内烧结不锈钢失效--更换烧结不锈钢，加在线过滤器，过滤样品; ⑤柱塌陷或形成短路通道--更换色谱
如何改善拖尾现象
可供改变的条件：流动相：甲醇-水（1:1）流速 增大流速（如2ml/min)柱温 100样品 1% glycerol进样量 3ul最好一次改变一个条件,看那个条件改进最好
如何改善拖尾现象
可供改变的条件：流动相：甲醇-水（1:1）流速 增大流速（如2ml/min)柱温 100样品 1% glycerol进样量 3ul最好一次改变一个条件,看那个条件改进最好
电泳图如下，marker有拖尾现象，是怎么回事
很可能是胶没煮好！煮的时候要沸腾三次，摇匀，不然胶的密度不均一。电压，电压过高也会拖带可以适当提高电泳槽里面的缓冲液浓度。如果还是不好，可以换一个稍微宽一点的梳子，一般效果会好很多。
气相色谱峰拖尾
1.把进样时间缩短。2.极可能是气路漏气，检查一下色谱柱接口处是否漏气。3.把进样体积减少效果会好点。
如何消除PCR的拖尾
消除PCR拖尾的方法：1、纯化模板2、更换Buffer3、适当提高退火温度4、适量用酶5、适当降低dNTP和镁离子的浓度6、减少循环次数PCR拖尾产生的原因：1、模板不纯2、Buffer不合适3、退火温度偏低4、酶量过多5、dNTP、Mg 2*浓度偏高6、循环次数过多
气相色谱峰拖尾
1.把进样时间缩短。2.极可能是气路漏气，检查一下色谱柱接口处是否漏气。3.把进样体积减少效果会好点。
J－峰拖尾问题分析
衬管，色谱柱被污染；有活性点 清洗，更换之 （如有必要）；2.衬管，色谱柱安装不党，存在死体积 注射甲烷，峰若拖尾，则重新安装；3.色谱柱柱头不平 用金刚砂切割，使之平；4.固定相的极性指标与样品分析不匹配 换匹配的柱子；5 样品流通路线中有冷井 消除路线中的过低温度区；6.衬管或色谱柱中有堆积切割
如何消除PCR的拖尾
消除PCR拖尾的方法：1、纯化模板2、更换Buffer3、适当提高退火温度4、适量用酶5、适当降低dNTP和镁离子的浓度6、减少循环次数PCR拖尾产生的原因：1、模板不纯2、Buffer不合适3、退火温度偏低4、酶量过多5、dNTP、Mg 2*浓度偏高6、循环次数过多
如何消除PCR的拖尾
消除PCR拖尾的方法：1、纯化模板2、更换Buffer3、适当提高退火温度4、适量用酶5、适当降低dNTP和镁离子的浓度6、减少循环次数PCR拖尾产生的原因：1、模板不纯2、Buffer不合适3、退火温度偏低4、酶量过多5、dNTP、Mg 2*浓度偏高6、循环次数过多
如何消除PCR的拖尾
消除PCR拖尾的方法：1、纯化模板2、更换Buffer3、适当提高退火温度4、适量用酶5、适当降低dNTP和镁离子的浓度6、减少循环次数PCR拖尾产生的原因：1、模板不纯2、Buffer不合适3、退火温度偏低4、酶量过多5、dNTP、Mg 2*浓度偏高6、循环次数过多
如何消除PCR的拖尾
消除PCR拖尾的方法：1、纯化模板2、更换Buffer3、适当提高退火温度4、适量用酶5、适当降低dNTP和镁离子的浓度6、减少循环次数PCR拖尾产生的原因：1、模板不纯2、Buffer不合适3、退火温度偏低4、酶量过多5、dNTP、Mg 2*浓度偏高6、循环次数过多
气相色谱峰拖尾
1.把进样时间缩短。2.极可能是气路漏气，检查一下色谱柱接口处是否漏气。3.把进样体积减少效果会好点。
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾是什么原因
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.
DNA琼脂糖凝胶电泳出现拖尾是什么原因
电泳出现拖尾现象,英文成为smear,就是弥散.其原因,主要从以下两个方面考虑：1、PCR产物自身原因：往往由于酶量过多或酶的质量差,dNTP浓度过高,Mg2+浓度过高,退火温度过低,循环次数过多,而造成PCR的非特异性产物 过多.对策：①减少Taq酶的量,或调换另一来源的酶.②减少dNTP的浓度.
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾
由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62〜65°C之间，
SDSPAGE电泳的时候有拖尾的现象是为什么
可能样品不纯，蛋白降解也可能是你的上样量比较大，建议做个不同浓度的试试。可能酶切时间太长或缓冲体系不好。
琼脂糖凝胶电泳跑的DNA为什么会拖尾
由于酶量过多或酶的质量差，dNTP浓度过高，Mg2+浓度过高，退火温度过低，循环次数过多，而造成PCR的非特异性产物 过多。对策：减少Taq酶的量，或调换另一来源的酶；减少dNTP的浓度；适当降低Mg2+浓度；增加模板量，减少引物的用量，减少循环次数，提高退火温度。琼脂糖的熔点在62〜65°C之间，