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内参即是内部参照，它们在各组织和细胞中的表达相对恒定，在检测基因的表达水平变化时常用它来做参照物 你可以去生物帮那里了解这方面的信息，那儿技术文档、视频资源丰富，我很喜欢到那里找想要的东西，而且还有很多软件可以下载，并且有软件的教材。有时间可以去看看。 包括GAPDH 、β- actin(BETA-actin) 、18sRNA、28sRNA 、B2M、ACTB、SDHA、HPRT1、ARBP内参基因 等。 在血清刺激条件下的基因表达定量研究中, B 22MG 和 18SrRNA 作为内参基因是合适的, 而 B 2act in 和GAP 2DH 则不适合。 大鼠是常用实验动物, 老年大鼠在阿尔茨海默症等模型研究中常用。我们针对老年大鼠组织实时老年大鼠肾组织中相对表达最稳定的管家基因是ACTB; 心脏和肺组织中表达最稳定的内参基因是G3pd 内参基因sdha和hprt1适合用于校正目标基因的表达量，为研究幼龄小鼠小肠组织基因表达奠定......阅读全文
这个概念一般是用在定量PCR中。定量PCR是要检测某个基因的表达，降低或者提高，但是当你得出结果以后，你并不知道是它本身的表达降低/提高了，还是你操作过程中造成的误差（比如提RNA时的损失），所以这个时候需要同时检测另外的基因作为参照。这个基因就是内参基因，这类基因是生物体或者细胞中稳定表达的基因，
关于内参基因的选择很多初级的实验人员很少会去思考这个问题，因为摆在面前的只有两种选择，β-actin和GAPDH，甚至在很多人长期的观念中对于内参的认知也仅仅停留在是一个表达量相对较高较稳定的看家基因，对于分子层面相对表达量的一个重要参照而已，至于为什么要选这两种，还有没有其他
关于内参基因的选择很多初级的实验人员很少会去思考这个问题，因为摆在面前的只有两种选择，β-actin和GAPDH，甚至在很多人长期的观念中对于内参的认知也仅仅停留在是一个表达量相对较高较稳定的看家基因，对于分子层面相对表达量的一个重要参照而已，至于为什么要选这两种，还有没有其他的内参，人们的回答往往
不同基因之间表达量差异很大，可达上千甚至上万倍之差，所以CT值差10以内属正常现象，但通常选用内参基因属于表达量较高的持家基因，如果目标基因和内存基因表达量（CT值差）过大，用内参基因来衡量目标基因的表达量（绝对值）就不完全可靠，但至少可以说明目标基因表达非常低。
内参即是内部参照，它们在各组织和细胞中的表达相对恒定，在检测基因的表达水平变化时常用它来做参照物 你可以去生物帮那里了解这方面的信息，那儿技术文档、视频资源丰富，我很喜欢到那里找想要的东西，而且还有很多软件可以下载，并且有软件的教材。有时间可以去看看。 包括GAPDH 、β- actin(BETA-
好的内参基因应该受环境影响变化较小，否则不能作为对照与处理的内参。常用内参有actin，ubiquitin，histone等等，一般物种都有常用内参，不建议在这方面发挥。
这个要看你在做PCR前的加样量是否一致。如果加样量是一致的，而内参做出来差别大（比如3-4个CT值）那说明你的实验体系有严重的问题。理论上加入的DNA量一样多，内参的CT值应该都一样。如果你能肯定加样量是一致的，那说明你的样本要么降解了，要么就是你的实验处理对内参的量产生了影响，必须换一个基因做内参
这个要看你在做PCR前的加样量是否一致。如果加样量是一致的，而内参做出来差别大（比如3-4个CT值）那说明你的实验体系有严重的问题。理论上加入的DNA量一样多，内参的CT值应该都一样。如果你能肯定加样量是一致的，那说明你的样本要么降解了，要么就是你的实验处理对内参的量产生了影响，必须换一个基因做内参
这个要看你在做PCR前的加样量是否一致。如果加样量是一致的，而内参做出来差别大（比如3-4个CT值）那说明你的实验体系有严重的问题。理论上加入的DNA量一样多，内参的CT值应该都一样。如果你能肯定加样量是一致的，那说明你的样本要么降解了，要么就是你的实验处理对内参的量产生了影响，必须换一个基因做内参
这个要看你在做PCR前的加样量是否一致。如果加样量是一致的，而内参做出来差别大（比如3-4个CT值）那说明你的实验体系有严重的问题。理论上加入的DNA量一样多，内参的CT值应该都一样。如果你能肯定加样量是一致的，那说明你的样本要么降解了，要么就是你的实验处理对内参的量产生了影响，必须换一个基因做内参