脂质体转染法的技术要点

利用脂质体转染法最重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。......阅读全文

脂质体转染法的技术要点

利用脂质体转染法最重要的就是防止其毒性,因此脂质体与质粒的比例,细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要问题,通过实验摸索的合适转染条件对于效率的提高有巨大的作用。

细胞转染脂质体转染法

阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室最方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性

脂质体转染技术特征

阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用将DNA分子包裹入内,形成DNA一脂复合体,也能被表面带负电荷的细胞膜吸附,再通过膜的融合或细胞的内吞作用,偶尔也通过直接渗透作用,DNA传递进入细胞,形成包涵体或进入溶酶体 其中一小部分DNA能从包涵体内释放,并进入细胞质中,再进一步进入核内转

脂质体介导DNA转染法

脂质体(LR)试剂是阳离子脂质体DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下最方面的转染方法之一。转染率高,优于磷酸钙法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA转染到各种细胞。用LR进行转染时,首先需要优化转染条件,应找出该批LR对转染某一特定细胞

化学转染法人工脂质体法应用

人工脂质体法采用阳离子脂质体,具有较高的转染效率,不但可以转染其他化学方法不易转染的细胞系,而且还能转染从寡核苷酸到人工酵母染色体不同长度的DNA,以及RNA,和蛋白质。此外,脂质体体外转染同时适用于瞬时表达和稳定表达,与以往不同的是脂质体还可以介导DNA和RNA转入动物和人的体内用于基因治疗。Li

脂质体介导的真核细胞转染实验——脂质体进行稳定转染

实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒DMEM仪器、耗材培养箱离心管实验步骤1.  接种细胞(见“脂质体介导短暂表达”步骤1)长至50%汇片。 2.  制备DNA/脂质体混合物,转染细胞(见“脂质体介导短暂表达”步骤2和3)。3.  每孔细胞加入1 ml DMEM-20完全培养液,37℃ 培养箱培养48

脂质体转染的定义

脂质体是磷脂分散在水中时形成的脂质双分子层,又称为人工生物膜。

关于脂质体转染法的基本信息介绍

  脂质体转染法是指阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用将DNA分子包裹入内,形成DNA一脂复合体,被表面带负电荷的细胞膜吸附,再通过膜的融合作用,偶尔也通过直接渗透作用,DNA传递进入细胞,形成包涵体或进入溶酶体 其中一小部分DNA能从包涵体内释放,并进入细胞质中,再进一步进入核

人工脂质体法转染的技术特点和应用

人工脂质体法采用阳离子脂质体,具有较高的转染效率,不但可以转染其他化学方法不易转染的细胞系,而且还能转染从寡核苷酸到人工酵母染色体不同长度的DNA,以及RNA,和蛋白质。此外,脂质体体外转染同时适用于瞬时表达和稳定表达,与以往不同的是脂质体还可以介导DNA和RNA转入动物和人的体内用于基因治疗。Li

脂质体介导的瞬时转染

实验材料靶细胞DNA试剂、试剂盒阳离子脂质D-PBSA缓冲盐溶液NaCl0.25%胰蛋白酶仪器、耗材细胞培养基还原的血清培养基无血清培养基多孔培养板实验步骤A . 贴壁细胞的转染1. 将 1.3X105 个细胞/孔接种到 6 孔培养板,加 3 ml 培养基。2. 于 37°C 的 CO2 孵箱培养至

脂质体介导的瞬时转染

实验材料 靶细胞DNA试剂、试剂盒 阳离子脂质D-PBSA缓冲盐溶液NaCl 0.25%胰蛋白酶仪器、耗材 细胞培养基还原的血清培养基无血清培养基多孔培养板实验步骤 A . 贴壁细胞的转染1. 将 1.3X105 个细胞/孔接种到 6 孔培养板,加 3 ml 培养基。2. 于 37°C 的 CO2

细胞转染脂质体的选择

脂质体靶向制剂及质量控制评价一、靶向制剂的定义与分类  靶向制剂亦称靶向给药系统(targeting drug delivery system,TDDS)。系指载体将药物通过局部给药或全身血液循环而选择性地浓集定位于靶组织、靶器官、靶细胞或细胞内结构的给药系统。  靶向制剂特点:定位浓集、控制释药、

脂质体介导的瞬时转染

            实验材料 靶细胞 DNA 试剂、试剂盒 阳离子脂质 D-PBSA缓冲盐溶液 Na

细胞转染:脂质体转染的几个实验方法

实验原理 脂质 体(LR)试剂是阳离子脂质体DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它适用于把DNA 转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下最方面的转染方法之一。转染率高,优于磷酸钙法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA转染到各种细胞。用LR进行转染时,首先需要优化转染条件,应找出该批LR对转

贴壁细胞的脂质体转染

一、实验材料1、宿主细胞CHO(贴壁细胞)2、脂质体LIPOFECTAMINE 2000(invitrogen公司)3、6孔细胞培养版4、无血清培养基OPTI-MEM(GIBICO)5、转染级质粒二、实验步骤invitrogen的LIPOFECTAMINE 2000说明书上列举了24孔、12孔、6孔

脂质体介导的细胞转染实验

实验概要学习和掌握外源基因导入真核细胞的主要方法—脂质体介导的转染。了解外源基因进入的一般性方法,观测外源蛋白的表达(绿色荧光蛋白),为染色准备实验材料。实验原理外源基因进入细胞主要有四种方法:电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和病毒介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂

方案27.12-脂质体介导的瞬时转染

方案27.12 脂质体介导的瞬时转染             实验材料 靶细胞 DNA

脂质体转染的几个实验方法

摘要: 本实验介绍了脂质体转染的几个方法。 实验原理 脂质 体(LR)试剂是阳离子脂质体DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它适用于把 DNA 转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下最方面的转染方法之一。转染率高,优于磷酸钙法,比它高5-

脂质体转染的几个实验方法

实验概要本实验介绍了脂质体转染的几个方法。实验原理脂质体(LR)试剂是阳离子脂质体DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下最方面的转染方法之一。转染率高,优于磷酸钙法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA转染到各种细胞。用LR进行转染时,首先

脂质体介导的真核细胞转染实验

脂质体介导短暂表达 脂质体进行稳定转染 哺乳动物细胞的选择标记             实验材料 哺乳动物细胞

脂质体转染的几个实验方法

实验原理 脂质 体(LR)试剂是阳离子脂质体DOTMA和DOPE的混合物(1:1)。它适用于把DNA 转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下最方面的转染方法之一。转染率高,优于磷酸钙法,比它高5-100倍,能把DNA和RNA转染到各种细胞。用LR进行转染时,首先需要优化转染条件,应找出该批LR对转

脂质体介导的真核细胞转染实验

实验材料 哺乳动物细胞试剂、试剂盒 质粒DNA完全培养基氯化铯DMEM仪器、耗材 培养皿培养箱聚苯乙烯管实验步骤 1.  按5×105细胞/孔的量在六孔板中接种指数期生长的细胞,在37℃ 5%CO2培养箱中 培养过夜,直至细胞80%汇片。(如果用100 mm 培养皿代替六孔扳,则培养细胞至80%汇片

细胞转染电穿孔转染法

电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般情况下,高电场强度会杀死50%-70% 的细胞。现在针对细胞死亡开发出了一种电转保护剂,可以大大的降低细胞的死亡率,同时提高电穿孔转染效率

物理转染法的主要类型和技术特点

包括:①显微注射②电穿孔③基因枪等,显微注射虽然费力,但是非常有效的将核酸导入细胞或细胞核的方法。这种方法常用来制备转基因动物,但却不适用于需要大量转染细胞的研究。电穿孔法常用来转染如植物原生质体这样的常规方法不容易转染的细胞。电穿孔靠脉冲电流在细胞膜上打孔而将核酸导入细胞内。导入的效率与脉冲的强度

脂质体载体用于直接体内基因转染实验

试剂、试剂盒 氯仿 DC-Chol 储存液DOPEDOTAP胆固醇储存液葡萄糖仪器、耗材 透紫外灯玻璃离心管氮气桶真空干燥器水浴超声破碎仪水浴锅挤压机聚碳酸酯膜滤器实验步骤 1.用氯仿将 30.0ml 的透紫外灯玻璃管漂洗 3 次。2.混匀用于准备脂质体的在透紫外灯玻璃管中的适当的脂质。(1)对于

脂质体载体用于直接体内基因转染实验

试剂、试剂盒氯仿DC-Chol 储存液DOPEDOTAP胆固醇储存液葡萄糖仪器、耗材透紫外灯玻璃离心管氮气桶真空干燥器水浴超声破碎仪水浴锅挤压机聚碳酸酯膜滤器实验步骤1.用氯仿将 30.0ml 的透紫外灯玻璃管漂洗 3 次。2.混匀用于准备脂质体的在透紫外灯玻璃管中的适当的脂质。(1)对于 DC-C

PEI-转染法

材料: 质粒DNA 指数生长的真核细胞 PEI (聚乙烯亚胺) 1×HBS (pH7.4) 配方: PEI 储存液(100 μM):称取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS (pH7.4)中, 0.2 μm 滤膜过滤,储存于4℃备用。 1×HBS (pH7.4): 将8.76 g

PEI-转染法

材料:质粒DNA指数生长的真核细胞PEI (聚乙烯亚胺)1×HBS (pH7.4)配方:PEI 储存液(100 μM):称取125 mg PEI 粉末溶解于50 ml 1×HBS (pH7.4)中, 0.2 μm 滤膜过滤,储存于4℃备用。1×HBS (pH7.4): 将8.76 g NaCl 溶解

基因转染技术的转染方法介绍

  1、转染  转染指通过生化或者物理方法将目的基因导入真核细胞中 。  2、感染  感染指通过病毒介导,用基因组中携带有克隆目的片断的病毒来感染靶细胞。

脂质体介导的真核细胞转染实验——质体介导短暂表达

用脂质体将DNA导人各种真核细胞的效率比其他转染方法更高,重复性更好。实验材料哺乳动物细胞试剂、试剂盒质粒DNA完全培养基氯化铯DMEM仪器、耗材培养皿培养箱聚苯乙烯管实验步骤1.  按5×105细胞/孔的量在六孔板中接种指数期生长的细胞,在37℃ 5%CO2培养箱中 培养过夜,直至细胞80%汇片。