过氧化物酶体的分离和分析实验2
从豚鼠小肠黏膜中分离微过氧化物酶体实验材料黏膜细胞试剂、试剂盒蔗糖TESEDTAPMSF亮抑蛋白酶肽半硫酸盐仪器、耗材聚四氟乙烯-玻璃匀浆器实验步骤1. 处死麻醉后的豚鼠，取出全部的小肠（从胃到盲肠），用一只大的（50 ml）皮下注射器灌注冷的匀浆缓冲液来清洗其中的内容物。2. 将小肠切成大约 10 cm 长的片段。将它们放在碎冰块上的冷的玻璃培养皿中。3. 用一只玻璃片的边缘或一只小木棒轻轻地挤压并除去残余的食物颗粒及黏液。4. 从每一块小肠片段上用稍大些的压力刮下并收集黏膜细胞。5. 将黏膜细胞悬于 50 ml 的匀浆缓冲液中（总体积为 60 ml）。匀浆缓冲液：0.25 mol/L 蔗糖，10 mmol/L TES，pH 7.5，1 mmol/L EDTA（360 mg/L），PMSF（36 mg/L），亮抑蛋白酶肽半硫酸盐，0.1% 乙醇6. 用一只 Potter-Elvjhem 聚四氟乙烯-玻璃匀浆器缓慢地往复捣一次（......阅读全文
过氧化物酶体的分离和分析实验2
从豚鼠小肠黏膜中分离微过氧化物酶体实验材料黏膜细胞试剂、试剂盒蔗糖TESEDTAPMSF亮抑蛋白酶肽半硫酸盐仪器、耗材聚四氟乙烯-玻璃匀浆器实验步骤1. 处死麻醉后的豚鼠，取出全部的小肠（从胃到盲肠），用一只大的（50 ml）皮下注射器灌注冷的匀浆缓冲液来清洗其中的内容物。2. 将小肠切成大约 10
过氧化物酶体的分离和分析实验
从大鼠肝脏中分离过氧化物酶体从豚鼠小肠黏膜中分离微过氧化物酶体蛋白质及标志酶的分析实验材料肝脏 试剂、试剂盒乙醚
过氧化物酶体的分离和分析实验
从大鼠肝脏中分离过氧化物酶体 从豚鼠小肠黏膜中分离微过氧化物酶体 蛋白质及标志酶的分析 实验材料 肝脏
过氧化物酶体的分离和分析实验
实验材料 肝脏试剂、试剂盒 乙醚蔗糖TESNa4EDTAPMSF亮抑酶肽仪器、耗材 聚四氟乙烯研杵实验步骤 1. 用乙醚或其他麻醉剂使麻醉，采用断头法处死。2. 迅速取出肝脏，称重，置于冰上的重铝箔上使之迅速冰冷。3. 用剪刀将肝脏组织剪成碎片并转移到一只冰冷的 Potter-EIvjhem 匀浆器
过氧化物酶体的分离和分析实验3
蛋白质及标志酶的分析试剂、试剂盒NaFMgCl2BSA棕榈酰辅酶A氯仿-甲醇液闪试剂仪器、耗材离心机实验步骤1. 准备分析试剂：缓冲液：可以采用 Tris-HCl（0.3 moI/L，pH7.5）或 MES（0.3 mol/L，pH 5.7）。0.1 mol/L NaF0.1 mol/L MgCl2
过氧化物酶体的分离和分析实验1
从大鼠肝脏中分离过氧化物酶体实验材料肝脏试剂、试剂盒乙醚蔗糖TESNa4EDTAPMSF亮抑酶肽仪器、耗材聚四氟乙烯研杵实验步骤1. 用乙醚或其他麻醉剂使麻醉，采用断头法处死。2. 迅速取出肝脏，称重，置于冰上的重铝箔上使之迅速冰冷。3. 用剪刀将肝脏组织剪成碎片并转移到一只冰冷的 Potter-E
脂筏的分离和应用2
辅 助 方 案 4 DEAE 葡聚糖凝胶的制备材料D E A E 葡聚糖凝胶 A -25lmol/L N a O H0.5 m o l / L 乙酸：将 57. 5m l 的冰乙酸稀释于2 L 水中甲醇溶 剂 A : 30 : 60 : 8 (V /V /V ) 氯仿/甲醇/水4L 侧臂烧瓶带滤 纸
ras2抑制基因的分离实验
实验材料 酵母菌株FY 86 DAY229 DAY230 试剂、试剂盒 质粒文库DNA
ras2抑制基因的分离实验
本实验中我们有两个目标：首先是分离 ras2 缺失突变的典型抑制基因，我们将要测定究竟抑制基因是显性的还是隐性的以及在隐性抑制基因中有代表性的互补组的数量；其次，我们将分离髙拷贝抑制基因和这些菌株中的质粒，确定引起抑制的质粒，经测序确定高拷贝质粒携带的基因。实验材料酵母菌株FY 86DAY229DA
RNA分离与分析实验_分离RNA
实验材料标记细胞试剂、试剂盒乙酸缓冲液仪器、耗材漩涡器实验步骤1. 收获标记细胞。2. 小心处置上清液，用含 0.3% SDS 的 10 mmol/L 乙酸缓冲液悬浮细胞沉淀，每 1 ml 压积细胞用 10 ml 缓冲液。3. 于室温用漩涡器振荡裂解细胞。4. 加等体积的水饱和酚，充分混匀，于 60
RNA分离与分析实验
暂未评分点评实验，有机会获丁当奖励 +收藏 1人收藏RNA分离与分析实验标签： RNA
RNA分离与分析实验
实验材料 标记细胞试剂、试剂盒 乙酸缓冲液仪器、耗材 漩涡器实验步骤 1. 收获标记细胞。2. 小心处置上清液，用含 0.3% SDS 的 10 mmol/L 乙酸缓冲液悬浮细胞沉淀，每 1 ml 压积细胞用 10 ml 缓冲液。3. 于室温用漩涡器振荡裂解细胞。4. 加等体积的水饱和酚，充分混匀，
磷酸化位点分析实验磷酸肽的分离——2DPP－分离磷酸肽
实验方法原理即使纳喷 MS/MS 技术已经成功用于直接分析蛋白酶解产生的磷酸肽但是出于以下一些原因，通常建议在质谱分析前作一些分离：(1) 磷酸肽在蛋白酶切产物中通常只占少数因此容易淹没在低率度离子产生的总背景中，肽分离技术可浓缩分析物，因此会提高信噪比。(2) 如果磷酸肽被放射性标记并具有相同比活
重组DNA的分离、克隆与测序实验手册2
C. Restriction digestionRestriction enzyme digestions are performed by incubating double-stranded DNA molecules with an appropriate amount of restrict
mRNA的分离和纯化实验（一）
实验原理从细胞或组织中得到RNA是一种混合物，其中包括tRNA，rRNA和mRNA，其中RNA为75％～ 85％，tRNA占10％～16％，而mRNA仅占1%～5％，并且mRNA基因序列不同，分子量大小不均一，各基因的表达丰度也不一样。每克细胞可分离出5-10mg RNA。真核生物mRNA具
叶绿素的提取和分离实验步骤
提取：（1） 取菠菜或其他植物新鲜叶片4-5片（2g左右），洗净，擦干，去掉中脉剪碎，放入研。（2） 研钵中加入少量石英砂及碳酸钙粉，加2-3ml 95％乙醇，研磨至糊状，再加10-15ml 95％乙醇，离心35min，提取上清液过滤于三角瓶中，残渣用10ml 95％乙醇冲洗，一同过滤于三角瓶中。（
mRNA的分离和纯化实验（二）
（三） mRNA的分离1、mRNA与Oligo(dT)-纤维素结合：用移液器重新悬浮oligo(dT)-纤维素，取适量的oligo(dT)-纤维素到RNA样品中，盖上盖子，颠倒数次将oligo(dT)-纤维素与RNA混匀。于37℃水浴保温并温和摇荡15min。oligo(dT)-纤维素与RNA所需量
叶绿素的提取和分离实验步骤
提取：（1） 取菠菜或其他植物新鲜叶片4-5片（2g左右），洗净，擦干，去掉中脉剪碎，放入研。（2） 研钵中加入少量石英砂及碳酸钙粉，加2-3ml 95％乙醇，研磨至糊状，再加10-15ml 95％乙醇，离心35min，提取上清液过滤于三角瓶中，残渣用10ml 95％乙醇冲洗，一同过滤于三角瓶中。（
血细胞分离培养方法和步骤2
收集浑浊带分离获得的淋巴细胞，用无钙、镁离子的PBS洗3次后，再用培养基洗1次后计数，分瓶培养。此法分离获得淋巴细胞纯度高。分离液的制备：9% Ficoll（20℃下相对密度约1.020）24份与33.4%泛影葡胺（用泛影钠或Conray400也可，在20℃下相对密度约1.200）10份混合后，
细菌接种、分离纯化和培养技术（2）
２、涂布平板法首先把微生物悬液通过适当的稀释，取一定量的稀释液放在无菌的已经凝固的营养琼脂平板上，然后用无菌的玻璃刮刀把稀释液均匀地涂布在培养基表面上，经恒温培养便可以得到单个菌落。（图３－５，b）３、平板划线法最简单的分离微生物的方法是平板划线法。用无菌的接种环取培养物少许在平板上进行划线。划线的
关于αs2酪蛋白的离心分离和沉淀分离介绍
1、αs2-酪蛋白的离心分离 离心分离是利用不同物质之间的沉降系数或浮力密度等差异，用离心力场进行的一项分离、浓缩或提炼的物理分离分析技术。 2、αs2-酪蛋白的沉淀分离 沉淀分离是使用最广泛的酪蛋白组分分离技术，它主要是利用各酪蛋白组分在不同浓度溶液中的溶解性以及对温度、离子强度以及钙离
前剪接体和剪接体的分离及分析实验
实验方法原理 剪接体是由 RNA 和蛋白质构成的核糖核蛋白体（RNP)，它在前体 mRNA 的剪接过程中可去除前体 mRNA 的内含子。snRNP 是由 snRNA 及其结合蛋白组成，在前体 mRNA 的剪接过程起着重要作用。实验材料 PIP 10 载体核苷酸焦磷酸酶RNasinT7 RNA 聚合酶
前剪接体和剪接体的分离及分析实验
剪接体是由 RNA 和蛋白质构成的核糖核蛋白体（RNP)，它在前体 mRNA 的剪接过程中可去除前体 mRNA 的内含子。snRNP 是由 snRNA 及其结合蛋白组成，在前体 mRNA 的剪接过程起着重要作用。本实验来源「RNA 实验指导手册」主编：郑晓飞。实验方法原理剪接体是由 RNA 和蛋白质
前剪接体和剪接体的分离及分析实验
实验方法原理 剪接体是由 RNA 和蛋白质构成的核糖核蛋白体（RNP)，它在前体 mRNA 的剪接过程中可去除前体 mRNA 的内含子。snRNP 是由 snRNA 及其结合蛋白组成，在前体 mRNA 的剪接过程起着重要作用。
电泳分离的蛋白质肽谱和序列分析实验
实验材料 冻干的纯化蛋白样品试剂、试剂盒 甲酸氢溴酸过氧化氢NaOH 固体仪器、耗材 旋转蒸发器小试管实验步骤 1.加入 100ul 过氧化氢到 900ul 甲酸中，在室温下放置让，将反应产生过甲酸 (HCOOOH)。2.在冰上冷冻过甲酸至 0°C。3.在预冷的小试管中，将蛋白质溶解于 50ul 过
电泳分离的蛋白质肽谱和序列分析实验
方案1 蛋白质的过甲酸氧化实验 方案2 蛋白质还原和S-羧甲基化：大规模方法 方案3 蛋白质还原和S-羧甲基化：微量方法 方案4 用Ellman 试剂测定自由巯基和二硫键实验 方案5 蛋白质的胰酶消化实验 方案6 用溴化氰切割 M
蛋白质的表达、分离、纯化和鉴定（2）
二、氯霉素酰基转移酶重组蛋白的分离，纯化 1. NTA层析柱的准备：在层析柱中加入1mL NTA介质，并分别用8mL 去离子水，8mL上样缓冲液洗涤。 2. 重组蛋白的变性裂解：在冰浴中冻融菌体沉淀，加入5mL上样缓冲液, 用吸管抽吸重悬，超声波破裂菌体，用振荡器等轻
叶绿体的分离与观察实验原理和实验操作
实验原理将植物组织匀浆后悬浮在等渗介质中进行差速离心，是分离细胞器的常用方法。一个颗粒在离心场中的沉降速率取决于颗粒的大小、形状、稠密度，也与离心力以及悬浮介质的粘度有关。在一给定的离心场中，同一时间内，密度和大小不同的颗粒其沉降速率不同。依次增加离心力和离心时间，就能够使非均一悬浮液中的颗粒按其大
淋巴细胞的分离和激化实验
实验概要本实验从全血中收集富含白细胞的血浆，然后通过Ficoll-Hypaque离心，沉淀细胞悬于含不同细胞分裂剂的培养基中，刺激细胞生长。主要试剂1. PBS（Dulbecco）： 0.10g/L 无水CaCl2 0.20g/L KCl 0.20g/L KHPO4 0.10
微生物的分离和纯化实验
在土壤、水、空气或人及动、植物体中，不同种类的微生物绝大多数都是混杂生活在一起，（1）用于细胞分离（2）细胞纯化（3）细胞增殖培养。实验方法原理为了获得某种微生物的纯培养，一般是根据该微生物对营养、酸碱度、氧等条件要求不同，而供给它适宜的培养条件，或加入某种抑制剂造成只利于此菌生长，而抑制其他菌生长