小鼠角质细胞的分离和培养
实验步骤 1) 将 1~2 天龄新生裸鼠窒息后，置于培养皿中，用 1% 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗净裸鼠, 流水彻底冲洗，然后用 70% 乙醇洗两次。2) 上除小鼠的四肢和尾巴。3) 将小鼠从尾巴至鼻子的皮肤作一简单切口，用大鼠牙齿镊轻轻将整个身体的皮肤剥下，用一把镊子夹住身体，另一把镊子拉开皮肤。4) 将剥下的皮肤组织置于放在冰上的无菌培养皿表面，直至所有的皮肤收集完毕。5) 用 2 把大鼠牙齿钳夹住皮肤组织，在含 2.5% 胰蛋内酶的 ......阅读全文
小鼠角质细胞的分离和培养
实验步骤 1) 将 1~2 天龄新生裸鼠窒息后，置于培养皿中，用 1% 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗净裸鼠, 流水彻底冲洗，然后用 70% 乙醇洗两次。2) 上除小鼠的四肢和尾巴。3) 将小鼠从尾巴至鼻子的皮肤作一简单切口，用大鼠牙齿镊轻轻将整个身体的皮
小鼠角质细胞的分离和培养
实验概要本实验是根据Hennings等（1980）的方法改进而来的。该方案也适用于原代大鼠角质细胞的分离。主要试剂HBSS： NaCl 8g/L KCl 400mg/L KH2PO4 60mg/L 无水Na2PO4 47.86mg/L 无水葡萄糖 1000mg/L NaHCO3 350mg/L实验
小鼠角质细胞的分离和培养
实验试剂HBSS： NaCl 8g/LKCl 400mg/LKH2PO4 60mg/L无水Na2PO4 47.86mg/L无水葡萄糖 1000mg/LNaHCO3 350mg/L实验材料妊娠期BALB/c小鼠实验步骤将1~2天龄新生裸鼠窒息后，置于培养皿中，用1%碘聚乙烯吡咯烷酮液洗净裸鼠，流水彻底
小鼠角质细胞的分离和培养
实验步骤 1) 将 1~2 天龄新生裸鼠窒息后，置于培养皿中，用 1% 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗净裸鼠, 流水彻底冲洗，然后用 70% 乙醇洗两次。2) 上除小鼠的四肢和尾巴。3)
小鼠角质细胞的分离和培养
实验步骤1) 将 1~2 天龄新生裸鼠窒息后，置于培养皿中，用 1% 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗净裸鼠, 流水彻底冲洗，然后用 70% 乙醇洗两次。2) 上除小鼠的四肢和尾巴。3) 将小鼠从尾巴至鼻子的皮肤作一简单切口，用大鼠牙齿镊轻轻将整个身体的皮肤剥下，用一把镊子夹住身体，另一把镊子拉开皮肤。4) 将
小鼠角质细胞的分离和培养
实验试剂HBSS： NaCl 8g/LKCl 400mg/LKH2PO4 60mg/L无水Na2PO4 47.86mg/L无水葡萄糖 1000mg/LNaHCO3 350mg/L实验材料妊娠期BALB/c小鼠实验步骤1. 将1~2天龄新生裸鼠窒息后，置于培养皿中，用1%碘聚乙烯吡咯烷酮液洗净裸鼠，流
小鼠feeder细胞分离
You will need:13.5 day pregnant mouse (we use MTK NEO inbred white mice)2 sets sterile instrumentsone containing a pair of curved forceps and a pair o
牛角质上皮细胞的分离和培养
1) 用 1％ 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗涤牛眼，水漂洗，再用 70% 乙醇简单处理一下。2）用 3.5 mm 活组织钻孔器切取眼小块上皮组织连同其下的结缔组织（最好选取枝状角膜边缘组织)。3）将上述组织置于干燥的聚赖氨酸包被的表面，让其黏附全少 10 分钟。4) 加入培养液（MEM, 含 10%FCS，
牛角质上皮细胞的分离和培养
实验步骤1) 用 1％ 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗涤牛眼，水漂洗，再用 70% 乙醇简单处理一下。2）用 3.5 mm 活组织钻孔器切取眼小块上皮组织连同其下的结缔组织（最好选取枝状角膜边缘组织)。3）将上述组织置于干燥的聚赖氨酸包被的表面，让其黏附全少 10 分钟。4) 加入培养液（MEM, 含 10%
牛角质上皮细胞的分离和培养
实验步骤 1) 用 1％ 碘聚乙烯吡咯烷酮液洗涤牛眼，水漂洗，再用 70% 乙醇简单处理一下。2）用 3.5 mm 活组织钻孔器切取眼小块上皮组织连同其下的结缔组织（最好选取枝状
小鼠巨噬细胞的分离
基 本 方 案 1 小鼠腹腔巨噬细胞的分离材料小鼠，洁 净 环 境 中 饲 养（最好置层流柜中饲养）7 3 % (m /V ) 豚 蛋 白 胨 或 者 3 % (W V r) Brewer 硫 基 乙 酸 盐 肉 汤（Brewerthioglycollate medium，分离炎性腹腔巨嗤细胞用）7
从小鼠脾脏分离小鼠天然杀伤细胞
实验步骤基本方案12.为 检 验 细 胞 纯 度 ，可 加 入 终 浓 度 为 lOug/ml 的 抗 C D 3- F I T C 和 P K 136-PE (抗N K 1. 1 ) 抗体，进 行 流 式 分 析（第四章）。展
口腔角质形成细胞
实验材料D-PBSA 0.17%胰蛋白酶
口腔角质形成细胞
实验材料D-PBSA0.17%胰蛋白酶PET试剂、试剂盒转运培养液生长培养液含抗菌素的生长培养液手术刀和11号刀片眼科剪眼科镊2把50mm或100mm培养级Petri培养皿35mm和100mm非培养级Petri培养皿15ml锥形离心管微量加液器涂有FN C BSA的50mm培养皿实验步骤一、原代培养
何谓角质形成细胞？
组成表皮各部分的细胞可分为两大类，即角质形成细胞和树突状细胞。其中树突状细胞在形态上有树枝状突起，散在分布于角质形成细胞之间，有朗格汉斯细胞、黑素细胞和迈克尔细胞三种，朗格汉斯细胞分布在表皮的棘细胞层，黑素细胞位于基底层，迈克尔细胞仅见于口腔与生殖器黏膜等特殊部位皮肤的基底层。 角质形成细胞又
小鼠精原细胞的分离和纯化
【摘要】 目的 探讨小鼠精原细胞的分离纯化。 方法 用组合酶消化法制备7～8d小鼠的生殖细胞悬液；用Percoll不连续密度梯度法分离精原细胞。 结果 所获细胞悬液内活细胞、死细胞及细胞团的百分比分别为90.08%、9.92%及8.91%；平均每个睾丸可获得4.136×105个细胞；精原细胞主要分布
小鼠单个核细胞的分离实验
基 本 方 案 从 脾 脏 、胸腺和淋巴结制备细胞悬液材 料RPMI-5 或 DMEM-5 完全培养基新鲜分离的小鼠器官： < 6 周龄的小鼠胸腺； 6 周 至 6 个月龄的小鼠脾脏和淋巴结60 mmX 15 mm 培养皿剪 刀 和 镊 子（保 存 在 7 0 % 乙醇的烧杯中）装 有 19 G 针
小鼠精原细胞的分离和纯化
【摘要】 目的 探讨小鼠精原细胞的分离纯化。 方法 用组合酶消化法制备7～8d小鼠的生殖细胞悬液；用Percoll不连续密度梯度法分离精原细胞。 结果 所获细胞悬液内活细胞、死细胞及细胞团的百分比分别为90.08%、9.92%及8.91%；平均每个睾丸可获得4.136×105个细胞；精原细胞主要分布
小鼠精原细胞的分离和纯化
【摘要】 目的 探讨小鼠精原细胞的分离纯化。 方法 用组合酶消化法制备7～8d小鼠的生殖细胞悬液；用Percoll不连续密度梯度法分离精原细胞。 结果 所获细胞悬液内活细胞、死细胞及细胞团的百分比分别为90.08%、9.92%及8.91%；平均每个睾丸可获得4.136×105个细胞；精原细胞主要分布
小鼠精原细胞的分离和纯化
实验概要精原细胞的生理生化特性及其分裂增殖、分化、运动、衰老、死亡等项生命活动的调节机制的深入研究，精子发生机理的进一步阐明以及精原细胞异体、异种移植技术的实际应用，都迫切需要找到一种可行的方法将其分离纯化，以期得到较高产量和纯度的有活力的精原细胞，用于体外培养。资料表明，从成年啮齿类的睾丸分离粗线
小鼠单个核细胞的分离实验
实验步骤基 本 方 案 从 脾 脏 、胸腺和淋巴结制备细胞悬液材 料RPMI-5 或 DMEM-5 完全培养基新鲜分离的小鼠器官： < 6 周龄的小鼠胸腺； 6 周 至 6 个月龄的小鼠脾脏和淋巴结60 mmX 15 mm 培养皿剪 刀 和 镊 子（保 存 在 7 0 % 乙醇的烧杯中）装 有 19
小鼠神经干细胞的分离
实验概要小鼠神经干细胞的分离主要试剂0.05% Trpsin、神经干细胞的分离溶液Ⅰ、神经干细胞的分离溶液II、神经干细胞的分离溶液III、神经干细胞培养液主要设备15 mL、50 mL离心管，10%FBS包被的玻璃巴斯德管，70 μm细胞滤膜，4℃低温离心机实验步骤（1）用10%FBS（vol/v
小鼠精原干细胞分离培养
实验概要小鼠精原干细胞分离培养主要试剂0.1%明胶、DPBS、0.25%胰蛋白酶、400目细胞筛、精原干细胞培养液、1 mg/mL胶原酶Ⅳ、7 mg/mLDNase、细胞基础培养液、DMEM-C、精原干细胞冻存液(Kubota et. al., 2004a and 2004b)（4℃条件下可
原代细胞培养小鼠胚胎分离实验
原代细胞培养可应用于：（1）分子生物学；（2）细胞生物学；（3）遗传学；（4）免疫学；（5）肿瘤学；（6）病毒学等领域。实验方法原理原代细胞培养，是指直接从动物体内获取的细胞、组织或器官，在体外培养，直到第一次传代为止。这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物体内取出所需的组织（或器官），经胰酶消化，
原代细胞培养小鼠胚胎分离实验
鼠胚原代细胞培养 实验方法原理 原代细胞培养，是指直接从动物体内获取的细胞、组织或器官，在体外培养，直到第一次传代为止。这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物
原代细胞培养小鼠胚胎分离实验
鼠胚原代细胞培养 实验方法原理 原代细胞培养，是指直接从动物体内获取的细胞、组织或器官，在体外培养，直到第一次传代为止。这种培养，首先用无菌操作的方法，从动物
小鼠脾脏树突状细胞的分离方法
小鼠脾脏DC是研究最多的淋巴组织DC，其特征为组成性表达MHC-II类分子和CD11c。该细胞群可进一步分为三群：主要分布于边缘区的CD4+CD8-CD11b+DC，主要分布于T细胞区的CD4-CD8+CD11b-DC和双阴性DC----CD4-CD8+CD11b+。其中，CD8+DC表达CD1d和
小鼠ES细胞的分离方法的介绍
小鼠ES细胞的分离方法基本成熟，且已广泛应用于生命科学研究的各个领域。1981年Evans首次分离得到小鼠ES细胞，他以手术切除受精后2.5d小鼠卵巢并结合激素注射干扰子宫环境，从而使胚胎延迟着床，再回收胚胎，将其体外培养于STO细胞饲养层上，结果得到了小鼠ES细胞系。MartinGR以免疫外科
角质形成细胞的功能
角质形成细胞的主要功能是形成屏障，防止因热、紫外线辐射、水分流失、病原菌、真菌、寄生虫和病毒而造成的环境损害。入侵表皮上层的病原体可导致角质形成细胞产生促炎介质，特别是趋化因子，如CXCL10和CCL2(MCP-1)，它们将单核细胞、自然杀伤细胞、T淋巴细胞和树突状细胞吸引到病原体入侵的部位。
角质形成细胞的结构
许多结构蛋白（丝聚蛋白、角蛋白）、酶（蛋白酶）、脂质和抗菌肽（防御素）有助于维持皮肤的重要屏障功能。角化是物理屏障形成（角化）的一部分，其中角质形成细胞产生越来越多的角蛋白并经历终末分化。形成最外层的完全角化的角质形成细胞不断脱落并被新细胞取代。