库德毕赤酵母有发酵功能吗
有。库德毕赤酵母具有发酵功能，原理是利用重组库德毕赤酵母进行发酵，能够耐受高温、高盐、高浓度乙醇、高渗透压。......阅读全文
转化毕赤酵母
实验概要本实验介绍了毕赤酵母的转化方法。主要试剂1. 转化当天，配制下列试剂：存于4度5% SDS溶液RD(Regeneration Dextrose) 融化琼脂100ml2. 溶液：转化试剂40%PEG：用水配制40%(w/v)PEG3350(试剂纯)CaT：20mMTris pH7.5，20mM
毕赤酵母电转化
实验概要本实验介绍了毕赤酵母电转化方法。该方法无需产生去壁细胞，是产生毕赤酵母重组子的简便方法。与去壁细胞效率相似。实验步骤1. 细胞准备： 1) 在含5mlYPD 的50ml 离心管中，培养毕赤酵母，30 度过夜。 2) 取0.1-0.5ml 过夜培养物，接种含500ml 新鲜培养基的2L
毕赤酵母LiCl－转化方法
实验概要本文介绍了毕赤酵母LiCl 转化方法。该程序是电转化的替代方法。转化效率为102-103cfu/ug线性化DNA。主要试剂溶液准备：不能用醋酸锂，一定要用氯化锂1. 用无菌去离子蒸馏水配制1M LiCl，过滤除菌，用无菌水稀释2. 用无菌去离子蒸馏水配制50%PEG(3350)，过滤除菌，存
重组毕赤酵母的表达
实验概要本文介绍了重组毕赤酵母目的基因表达的方法及条件，为毕赤酵母表达因素给予指导，但对于任何表达系统，最优化条件因表达蛋白的特征而不同。实验步骤1. Mut 胞内或分泌表达：为检测表达条件是否有效，可培养GS115β-gal (Mut )(胞内表达-半乳糖苷酶)。亲代载体转化GS115 或KM71
毕赤酵母如何做表达
Pichia.pastoris酵母菌体内无天然质粒，所以表达载体需与宿主染色体发生同源重组，将外源基因表达框架整合于染色体中以实现外源基因的表达。包括启动子、外源基因克隆位点、终止序列、筛选标记等。表达载体都是穿梭质粒，先在大肠杆菌复制扩增，然后被导入宿主酵母细胞。为使产物分泌胞外，表达载体还需带有
毕赤酵母表达系统的特点
自从1987年Cregg等首次用巴斯德毕赤酵母（Pichia pastoris）作为宿主表达外源蛋白以来,作为一种新的高效的表达系统，毕赤酵母越来越引起人们的重视，到1995年，已有四十多种外源蛋白在该宿主菌中获得表达。而最近几年每年报道的在毕赤酵母中表达的外源基因就有几十种，且一年比一年多，与其它
LiCl法转化毕赤酵母菌
实验概要本实验介绍了用LiCl法将重组质粒导入毕赤酵母菌X-33的转化方法。主要试剂甘油，YPD培养基，50% PEG，1 mol/L LiCl，Sac I主要设备摇床，高速离心机，1.5 ml微量离心管，水浴锅实验材料重组质粒pPIC6αA-APC，毕赤酵母菌X-33实验步骤1. 取毕赤酵母甘油种
毕赤酵母高效转化实验方案
毕赤酵母高效转化实验方案1.收集菌体取1mlGS115过夜培养物(OD约6-10) 分装到1.5ml EP管中，4℃、10000g 离心1min，弃上清，沉淀用无菌水(4℃)洗涤，同样条件下离心，弃上清。2.菌体处理加入1ml处理液，室温下放置20min。处理液：10mM LiAc10mM DTT0
巴斯德毕赤酵母－对人体有害吗
十年代巴斯德毕赤酵母曾被用于生产单细胞蛋白（SCP），有很好的发酵基础，菌体密度可达100g/L干重。其生长培养液的组分包括无机盐、微量元素、生物素、氮源和碳源，廉价而无毒。它能在以甲醇为唯一碳源的培养基中快速生长，其中醇氧化酶AOX——甲醇代谢途径的关键酶可达细胞可溶性蛋白的30%。而在葡萄糖、甘
毕赤酵母表达系统能在酿酒酵母里表达么
不太可能，Invitrogen的商业化毕赤酵母表达系统属于甲醇酵母表达系统，用的是毕赤酵母独有的AOX1启动子，由甲醇诱导；酿酒酵母用的启动子大多用的是GAPDH或Gal启动子等，由葡萄糖和半乳糖诱导。虽然两种菌株有很多基因具有较高的同源性，但不能通用。建议使用毕赤酵母表达系统，酿酒酵母表达量低，诱
毕赤酵母原生质细胞的制作
实验概要本实验介绍了毕赤酵母原生质细胞的制作方法，以备转化。实验原理毕赤酵母细胞壁阻止摄入DNA，有必要去除部分细胞壁以吸收DNA。藤黄节杆菌酶是一种葡聚糖酶，可在细胞壁水解葡聚糖的β－1，3接头，还可部分地消化细胞壁。该方法的关键在于不能过度消化细胞壁，否则会导致细胞死亡。藤黄节杆菌酶消化能力受细
毕赤酵母发酵液浓度低怎么办
利用该反应原理建立毕赤酵母发酵。甲醇经高锰酸钾氧化生成的甲醛，在硫酸介质中与变色酸生成紫色化合物，于574nm处有特征吸收峰.利用该反应原理建立毕赤酵母发酵过程中检测甲醇含量的变色酸分光光度法。该法测定甲醇浓度（0.05%~0.5%（m/V））线性关系良好（R2=0.999），回收率为99.4%~1
毕赤酵母PEG1000转化方法
实验概要本文介绍了毕赤酵母PEG1000转化方法。据称PEG比LiCl 方法好，但不如去壁细胞及电转化法，但对没有电转装置的人来说，更方便，效率为102-103/ugDNA。主要试剂Buffer A：1M山梨醇，10mM bicine(N－二(羟乙基)甘氨酸)pH8.35，3%(v/v)乙二醇Buf
毕赤酵母表达（pichia－pastoris－expression－）实验手册（4）
三．主要试验环节的操作3.1 酵母菌株的分离纯化接种GS115于5ml YPD液体培养基，30℃，200rpm振荡过夜，涂布 YPD平板，30℃培养48 小时，用 YNB基本培养基和含His的补充培养基作点种分离纯化，挑选在补充培养基生上生长而在基本培养基上不生长的单菌落划YPD平板，4℃保存。3.
毕赤酵母表达（pichia－pastoris－expression－）实验手册（3）
液体YPD培养基可常温保存；琼脂YPD平板在4℃可保存几个月。加入Zeocin 100ug / ml，成为YPDZ培养基，可以4℃条件下保存1～2周。2.4 YPDS + Zeocin 培养基（Yeast Extract Peptone Dextrose Medium）：yeast extract
毕赤酵母表达（pichia－pastoris－expression－）实验手册（2）
一．毕赤酵母表达常用溶液及缓冲液的配制1．1 各种母液的配制10*YNB （含有硫酸铵、无氨基酸的13.4%酵母基础氮源培养基） 4℃保存。34g酵母基础氮源培养基（无硫酸铵）+100g硫酸铵，溶于1000ml水中，过滤除菌。500*B （0.02%生物素 Biotin） 4℃保存 保存期为1年。2
毕赤酵母遗传霉素抗性转化子的筛选
实验概要本实验介绍了毕赤酵母遗传霉素抗性转化子的3种筛选方法。实验步骤1. (去壁细胞)方法：从含HIS 转化子的平板开始 1) 用灭菌刮片将含有HIS 转化子的顶层琼脂最上层刮下，放入无菌的50ml 离心管中。 2) 加入10-20ml灭菌水，量应为琼脂的两倍，剧烈振荡1-2min。
毕赤酵母表达（pichia－pastoris－expression－）实验手册（5）
3.5 Pichia酵母表达直接PCR鉴定重组子的方法3.5.1 模板的处理：1. 平板上的菌落长到肉眼可见时（约12小时）；2. 将除了模板之外的其它PCR反应液的组分准备好，并分装。引物最好使用Kit中已有的检测专用的引物，或者或者一条使用载体上的引物，一条使用基因的特异性引物（这样做可以鉴定非
毕赤酵母表达（pichia－pastoris－expression－）实验手册（6）
随着PCR技术的不断发展成熟（扩增长度、保证性、产量和特异性等），质粒构建过程的大多数细胞内的DNA复制将被PCR这一细胞外的DNA复制所代替，质粒构建效率将有质的飞跃。4.4密码子的偏好性的原则酵母菌对外源基因的表达也和外源基因密码子的选用有关。了解表达系统宿主在密码子使用上的偏爱性对从翻译水平分
毕赤酵母表达（pichia－pastoris－expression－）实验手册（1）
大肠杆菌表达系统最突出的优点是工艺简单、产量高、周期短、生产成本低。然而，许多蛋白质在翻译后，需经过翻译后的修饰加工，如磷酸化、糖基化、酰胺化及蛋白酶水解等过程才能转化成活性形式。大肠杆菌缺少上述加工机制，不适合用于表达结构复杂的蛋白质。另外，蛋白质的活性还依赖于形成正确的二硫键并折叠成高级结构，在
毕赤酵母活化不出来是什么原因
活化不出来具体是什么意思，长的不好，还是根本就不长？一般情况下，活化的培养基通常是YPD，筛选或诱导表达时才用BMG的？另外你的菌种是野生菌还是工程菌，BMG里有否添加抗生素？如果有抗生素的话，很可能是质粒丢失了。那还要看是什么保存方法啊？如果你指的是短期保藏，两者都可以，如果是长期保藏，最好是不要
毕赤酵母必须要用YPD培养基活化
因为毕赤酵母刚从超低温冰箱或者冷藏柜取出后，活性很低，如果保存时间过长甚至可能已经死亡，此时如果不经过活化就直接用会造成适应期长，生长缓慢甚至没有生长现象，进而影响实验的进程和准确性。YPD 或YEPD作为酵母菌常用的培养基，可以使处在低温的毕赤酵母生长繁殖，并且恢复保持到较高的活性。在日常实验过程
毕赤酵母发酵过程中产生热量峰值多少
毕赤酵母发酵液湿菌重达400g/L，现用板框进行预处理，直接用硅藻土做助滤剂，可是发现板框压力上升快，容易从板之间喷出。考虑在预处理加部分絮凝剂，请问一般加什么样的絮凝剂，谢谢现在一般毕赤酵母发酵液预处理的工艺是咋样的，考虑过用蝶式离心机，但渣水分比较高
毕氏酵母氯化锂转化法
试剂1M LiCl 50% PEG3350 (氯化锂转化法只能PEG3350,不能用PEG8000,PEG3350在北京莱博生物有售,80元/100克)2mg/ml salmon sperm DNA / TE（10mM Tris-Cl, pH8.0, 1.0mM EDTA）-20℃保存注：醋酸锂对毕
大连化物所周雍进团队实现甲醇酵母的高效代谢改造
近日，中国科学院大连化学物理研究所合成生物学与生物催化创新特区研究组研究员周雍进团队在甲醇酵母合成生物学研究中取得进展，实现了甲醇酵母的高效代谢改造。科研人员在甲醇酵母代表菌株毕赤酵母中，构建了基因编辑工具，强化了同源重组从而实现了精确基因编辑，鉴定了染色体基因整合位点并表征了系列不同表达强度的
设计出新型酵母表达平台
近日，华东理工大学生物工程学院教授蔡孟浩课题组在新型酵母表达设计方面取得重要进展，开发了可响应用户自定义信号的高效酵母蛋白表达平台。相关成果已在线发表于《科学进展》。高水平、可调控的基因表达，对于生物医药和生物制造产业中的蛋白高效率、高质量生产极为重要。酵母作为人们熟知的一种真核微生物，在食药方面的
甲醇酵母基因表达系统
1 甲醇酵母表达系统的特点 1.1 宿主 七十年代巴斯德毕赤酵母曾被用于生产单细胞蛋白（SCP），有很好的发酵基础，菌体密度可达100g/L干重。其生长培养液的组分包括无机盐、微量元素、生物素、氮源和碳源，廉价而无毒。它能在以甲醇为唯一碳源的培养基中快速生长，其中醇氧化酶AOX——甲醇代谢途径
异养菌转化自养菌获突破，这种菌将以CO2作为唯一碳源
巴斯德毕赤酵母广泛用于工业酶和药物的生产。像大多数生物技术生产宿主一样，巴斯德毕赤酵母是异养的，生长在有机原料上，这些原料在食品和动物饲料的生产中具有竞争性用途。如果将二氧化碳用作碳原料，生物技术制造业将变得更具可持续性，因为它不会消耗有机原料，并且会消耗大气中的二氧化碳。 2019年12月1
CHO细胞表达系统与酵母细胞表达系统比较
CHO细胞表达系统与毕赤酵母表达系统是当前发展前景看好的两个表达系统，为了能够更加直观地对两个表达系统有一定的认识，特意在此篇中对两个表达系统作一定的比较，从而能够更进一步的对两个表达系统有更深的了解1．CHO细胞表达系统 （1）优点 CHO细胞属于成纤维细胞，既可以贴壁生
菌种中英文对照（全部）（八）
Neisseria subflava 微黄奈瑟球菌 Nocardia spp 奴卡菌属某些种 Ochrobactrum anthropi 人苍白杆菌 Oerskovia spp 厄氏菌属某些种 Oerskovia xanthineolytica 溶黄嘌呤厄菌 Oligella ur