活化剂裂解方法制备细胞核实验

用活化剂裂解方法从悬浮培养的HeLa细胞中制备细胞核实验材料HeLa 细胞试剂、试剂盒TM-2 缓冲液仪器、耗材塑料离心瓶Corex 管实验步骤1. 转瓶培养 4 升 HeLa 细胞,便细胞浓度达到 1.0x106 细胞/ml。2. 细胞在 1 L 的塑料离心瓶中,用 Sorvall 的 RC-3B 离心机,H-600A 转头,3000 r/min 离心 5 分钟。3. 在 30 ml 的 Corex 管中,用 10 ml 冰预冷的 PBS 清洗各细胞沉淀。4. 细胞沉淀用 10 ml TM-2 缓冲液重悬浮,室温孵育 1 分钟。TM-2 缓冲液:0.01 mol/L Tris-HCl ( pH 7.4)0.002 mol/L MgCl20.0005 mol/L PMSF(临用前添加)5. 将装有 TM-2 悬浮液的试管放到一个含冰水的烧杯中冰浴 5 分钟。6. 加入 Tritron X-100 至终浓度为 0.5%,......阅读全文

活化剂裂解方法制备细胞核实验

用活化剂裂解方法从悬浮培养的HeLa细胞中制备细胞核 实验材料 HeLa 细胞 试剂、试剂盒 TM-2 缓冲液 仪器、耗材 塑料离心瓶Corex 管 实验步骤 1. 转瓶培养 4 升 HeLa 细胞,便细胞浓度达到 1.0x106 细胞/ml。

活化剂裂解方法制备细胞核实验

            实验材料 HeLa 细胞 试剂、试剂盒 TM-2 缓冲液 仪器、耗材

活化剂裂解方法制备细胞核实验

用活化剂裂解方法从悬浮培养的HeLa细胞中制备细胞核实验材料HeLa 细胞                                                          试剂、试剂盒TM-2 缓冲液                                        

活化剂裂解方法制备细胞核实验

实验材料 HeLa 细胞试剂、试剂盒 TM-2 缓冲液仪器、耗材 塑料离心瓶Corex 管实验步骤 1. 转瓶培养 4 升 HeLa 细胞,便细胞浓度达到 1.0x106 细胞/ml。2. 细胞在 1 L 的塑料离心瓶中,用 Sorvall 的 RC-3B 离心机,H-600A 转头,3000 r/

制备细胞裂解液

实验流程:1. 收集胰蛋白酶消化的细胞并离心,用PBS清洗。2. 用100μl 裂解缓冲液冰浴溶解沉淀10min(每500000个细胞20μl裂解缓冲液)。3. 10000rpm,4°C离心10min,取上清转移至新管。4. 用考马斯亮蓝法检测蛋白质浓度。5. 用裂解缓冲液将溶液浓度调到5mg/ml

细胞裂解液的制备

一、试剂准备1、新鲜配制冷的 RIPA 裂解缓冲液:      150 mM NaCL      1% NP-40 (去垢剂)          0.1% SDS (去垢剂)      2ug/ml Aprotinin (蛋白酶抑制剂) (使用前加入)      2ug/ml Leupeptin (

细胞/组织裂解液的制备

溶液准备 2×样品缓冲液:130mM Tris-HCl ( pH8.0 ) , 20% ( v/v ) 甘油 , 4.6% ( w/v ) SDS , 0.02% 溴酚蓝 , 2%DTT PBS ( pH7.4 ) :10mM Na2HPO4,1.8mM KH2PO4 ,50

渗透溶胀法制备细胞核实验

实验材料 HeLa 细胞 试剂、试剂盒 Earle’s 平衡盐溶液RSB 仪器、耗材 玻璃盖玻片 实验步骤 1. 悬浮培养出 HeLa 细胞,600 g 离心 5 分钟收集细胞。 2. 沉淀细胞用 5 倍体积 4℃ 预冷的 Earle’s 平衡盐溶液

从肝脏组织中制备细胞核实验

实验材料大鼠试剂、试剂盒裂解缓冲液浓蔗糖溶液仪器、耗材超速离心机组织研磨器实验步骤1. 配制裂解缓冲液和浓蔗糖溶液(PMSF 在使用前添加),冰上放置。裂解缓冲液:0.25 mol/L 蔗糖网织红细胞标准缓冲液(RSB)0.25 mol/L 蔗糖(超级纯)10 mmol/ Tris-HCl (pH7

从肝脏组织中制备细胞核实验

            实验材料 大鼠 试剂、试剂盒 裂解缓冲液 浓蔗糖溶液

渗透溶胀法制备细胞核实验

            实验材料 HeLa 细胞 试剂、试剂盒 Earle’s 平衡盐溶液 RSB

渗透溶胀法制备细胞核实验

用渗透溶胀法从HeLa细胞悬浮培养物中制备细胞核实验材料HeLa 细胞                                                          试剂、试剂盒Earle’s 平衡盐溶液                                      

渗透溶胀法制备细胞核实验

实验材料 HeLa 细胞试剂、试剂盒 Earle’s 平衡盐溶液RSB仪器、耗材 玻璃盖玻片实验步骤 1. 悬浮培养出 HeLa 细胞,600 g 离心 5 分钟收集细胞。2. 沉淀细胞用 5 倍体积 4℃ 预冷的 Earle’s 平衡盐溶液重新悬浮。3. 重悬浮的细胞在 4℃,600 g 离心 5

细胞裂解方法:化学裂解、酶裂解和机械裂解

裂解方法包括化学裂解、酶裂解和机械裂解。化学裂解和酶裂解通常是比较温和的方法,通常会很少使DNA 断裂。这两种方法(包括SDS 和溶菌酶处理等)提取纯化DNA中常用的方法。机械裂解可以更均一的裂解细胞,同化学裂解相比,机械处理具有更高的裂解效率和更低的选择性。机械处理可以更剧烈和全面的裂解细胞,

苯的制备方法介绍蒸汽裂解

蒸汽裂解是由乙烷、丙烷或丁烷等低分子烷烃以及石脑油、重柴油等石油组份生产烯烃的一种过程。其副产物之一裂解汽油富含苯,可以分馏出苯及其他各种成分。裂解汽油也可以与其他烃类混合作为汽油的添加剂。裂解汽油中苯大约有40-60%,同时还含有二烯烃以及苯乙烯等其他不饱和组份,这些杂质在贮存过程中易进一步反应生

培养细胞标记和裂解物的制备实验——温和去污裂解法

实验材料培养细胞试剂、试剂盒DMEMHClTBSTris仪器、耗材微量离心管Plexiglas盒吸头细胞刮子冷冻离心机实验步骤1.  培养待标记的细胞至适当的生长期。 对于贴壁细胞: 2a.  吸去培养液,用37℃的含血清不加标记物的标记培养液洗尽残存的含磷酸盐培养液,吸尽该培养液。 3a.  加入

培养细胞标记和裂解物的制备实验

温和去污裂解法 SDS煮沸法             实验材料 培养细胞 试剂、试剂盒

培养细胞标记和裂解物的制备实验

温和去污裂解法 SDS煮沸法             实验材料 培养细胞 试剂、试剂盒

培养细胞标记和裂解物的制备实验

实验材料 培养细胞试剂、试剂盒 DMEMHClTBSTris仪器、耗材 微量离心管Plexiglas盒吸头细胞刮子冷冻离心机实验步骤 1.  培养待标记的细胞至适当的生长期。 对于贴壁细胞: 2a.  吸去培养液,用37℃的含血清不加标记物的标记培养液洗尽残存的含磷酸盐培养液,吸尽该培养液。 3a.

煮沸裂解法制备质粒DNA实验——煮沸裂解法小量制备质粒DNA

这个方法 [ 根据 Holmes 和 Quigley 的方法(1981) 修订而成 ] 是将细菌悬浮于含有 Triton X-100 和能消化细胞壁的溶菌酶的缓冲液中,然后加热到 100℃ 使其裂解。本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等实验方法原理经 Triton X-100、溶菌酶和加热处

煮沸裂解法制备质粒DNA实验——煮沸裂解法大量制备质粒DNA

实验方法原理经 Triton X-100、溶菌酶和加热处理可从大量(500 ml ) 细菌培养物中分离质粒 DNA,所获得的质粒通过柱层析或 CsCl-溴化乙锭梯度离心可进一步纯化。试剂、试剂盒抗生素乙醇异丙醇乙酸钠STETTE溶菌酶仪器、耗材LB、YT 或 Terrific 培养液沸水浴实验步骤一

不用Trizol裂解细胞提取RNA的方法

1、方法一试剂:(1)变性液组成:25 g异硫氰酸胍溶于33 ml CSB中(42 mmol/L pH4.0乙酸钠、0.83%十二烷基肌氨酸钠、0.2 mmol/L β-巯基乙醇),65 ℃溶解,过滤灭菌,4 ℃预冷。(2)酸性酚配制:55 ℃时,500 g酚溶入500 ml 50 mmol/L,p

红细胞裂解的实验方法步骤

IntroductionPrior to using lymphoid tissue cell suspensions for flow cytometric analysis and/or for in vitro functional assays, it is recommended to r

菌体/细胞裂解的常用方法和配方

、反复冻融法:1.  将细胞在-20度以下冰冻,室温融解,反复几次,由于细胞内冰粒形成和剩余细胞液的盐浓度增高引起溶胀,使细胞结构破碎。2.  至少3次以上冻溶。3.  IFCC推荐法:收集细胞悬液,4℃低温离心(3000rpm,5min),弃上清,加入一定量PBS(200ul),轻轻吹打混匀,-2

菌体/细胞裂解的常用方法和配方

一、反复冻融法:1.  将细胞在-20度以下冰冻,室温融解,反复几次,由于细胞内冰粒形成和剩余细胞液的盐浓度增高引起溶胀,使细胞结构破碎。2.  至少3次以上冻溶。3.  IFCC推荐法:收集细胞悬液,4℃低温离心(3000rpm,5min),弃上清,加入一定量PBS(200ul),轻轻吹打混匀,-

SDS碱裂解法制备质粒DNA——中量制备

实验方法原理用碱和 SDS 处理可以从中度规模(20~50 ml)的细菌培养物中分离质粒 DNA,所获得的 DNA 产物可用于电泳分析或限制性内切核酸酶消化,经柱层析进一步纯化之后,还可用于转染哺乳动物细胞。试剂、试剂盒碱裂解液抗生素乙酵酚氯仿STETE仪器、耗材LB、YT 或 Terrific 培

SDS碱裂解法制备质粒DNA——小量制备

用碱和 SDS 处理可以从细菌培养物中分离质粒 DNA,所获得的质粒则可以用电泳或限制性核酸内切酶消化的方法鉴定;经聚乙二醇处理进一步纯化后,其可以用做 DNA 测序反应的模板。本实验来源「分子克隆实验指南第三版」黄培堂等译。实验方法原理用碱和 SDS 处理可以从小量 ( 1~2 ml)细菌培养物中

SDS碱裂解法制备质粒DNA——大量制备

实验方法原理用碱和 SDS 处理可以从大规模(500 ml)的细菌培养物中分离质粒 DNA,所获得的质粒则可通过柱层析或 CsCl-溴化乙锭梯度离心进一步纯化。试剂、试剂盒碱裂解液抗生素乙酵酚氯仿STETE仪器、耗材LB、YT 或 Terrific 培养液实验步骤一、材料1. 缓冲液和溶液(1) 碱

质粒的制备实验——碱裂解法

实验方法原理质粒是携带外源基因进入细菌中扩增或表达的主要载体,它在基因操作中具有重要作用。质粒的分离与提取是最常用、最基本的实验技术。质粒的提取方法很多,大多包括3个主要步骤:细菌的培养、细菌的收集和裂解、质粒DNA的分离和纯化。本实验以碱裂解法为例,介绍质粒的抽提过程。在pH 12.0 ~ 12.

SDS碱裂解法制备质粒DNA:大量制备实验

用碱和SDS处理可以从大规模(500ml)的细菌培养物中分离质粒DNA,所获得的质粒则可通过柱层析或CsCl-溴化乙锭梯度离心进一步纯化实验方法原理用碱和SDS处理可以从大规模(500ml)的细菌培养物中分离质粒DNA,所获得的质粒则可通过柱层析或CsCl-溴化乙锭梯度离心进一步纯化实验步骤材料:缓