动物的注射方法实验_静脉注射法
实验材料家兔试剂、试剂盒灭菌生理盐水仪器、耗材注射器（1 ml）7 号针头剪刀消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花放家兔用特制木箱实验步骤1. 注射器的准备与消毒（同「皮下注射法」）。2. 静脉注射2.1 将家兔固定于特制木箱（木箱的一端有一圆洞，使头部露出）中，或由助手按在桌上，一手轻按其颈部，一手轻扶耳根，使其耳向前（如图 1）。图 1 家兔耳静脉注射法2.2 在耳翼边缘剪毛，用酒精棉花消毒，并用力摩擦使血管充血，或用二甲苯涂擦，效果更好。2.3 注射者以左手固定该耳，右手持注射器刺入血管（1 ml 注射器，7 号针头）平刺入血管内，慢慢注入 0.5 ml。如果注射正确，则针下阻力很小，并可见血管变色。如阻力较大或皮下隆起即停止注射，重新刺入血管，或另选部位。注入时应将针头与耳同时固定，以免针头退出血管。2.4 注射后，用消毒干棉花压住注射部位，拔出针头，并继续压数秒钟，以防止出血。3. 清洗注射器（同「皮下注射法」......阅读全文
动物的注射方法实验_静脉注射法
实验材料家兔试剂、试剂盒灭菌生理盐水仪器、耗材注射器（1 ml）7 号针头剪刀消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花放家兔用特制木箱实验步骤1. 注射器的准备与消毒（同「皮下注射法」）。2. 静脉注射2.1 将家兔固定于特制木箱（木箱的一端有一圆洞，使头部露出）中，或由助手按在桌上，一手轻按其
狗静脉注射实验
狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉(图1)或后肢小隐静脉（图2），注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。图1图2
狗静脉注射实验
实验材料狗仪器、耗材绳子注射器实验步骤狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉(图1)或后肢小隐静脉（图2），注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。图1图2 展开
动物的注射方法实验
实验方法原理 实验材料 小白鼠试剂、试剂盒 灭菌生理盐水仪器、耗材 注射器（1 ml）6 号针头消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花实验步骤 1. 注射器的准备与消毒注射器与针头一般用高压蒸气灭菌或干热灭菌比较彻底，而且可以预先准备好，但也可用煮沸消毒法，不过消毒后不能久放。此处主要介绍煮沸
大小鼠静脉注射实验
静脉注射（Intravenous injection）是一种医疗方法，可以用于把血液、药液、营养液等液体物质直接注射到静脉中。实验方法原理鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将
大小鼠静脉注射实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 注射器实验步骤 一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射前先将动物固定在鼠筒或玻璃罩内，使鼠尾露出，在45℃～50℃热水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管扩张。用拇指和食指捏住尾根部，再以无名指和小指夹住尾端部，用中指从
蛙类的静脉注射实验
将蛙脑脊髓破坏后仰卧位固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹肌翻转，可见腹静脉紧贴腹壁肌肉下行，将针刺入即可（图1）图1
蛙类的静脉注射实验
实验材料蛙实验步骤将蛙脑脊髓破坏后仰卧位固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹肌翻转，可见腹静脉紧贴腹壁肌肉下行，将针刺入即可（图1）图1展
实验动物注射给药法
常用的注射给药法包括（1）皮下注射（2）肌肉注射（3）静脉注射（4）动脉注射（5）腹腔注射等。实验动物的注射给药法是指由注射器将无菌药液或生物制剂注入组织、血管或体腔中，达到预防、治疗、协助检查、维持正常生理功能以及减轻痛苦不适的目的。皮下注射、肌肉注射、静脉注射、动脉注射实验方法原理在动物实验中，
小鼠尾静脉注射方法
实验材料 小鼠仪器、耗材 大培养皿注射器酒精棉实验步骤 在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.
小鼠尾静脉注射方法
实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.5ml
动物的注射方法实验——腹腔注射法
实验材料小鼠试剂、试剂盒灭菌生理盐水仪器、耗材注射器（1 ml）7 号针头消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花实验步骤1. 注射器的准备与消毒（同「皮下注射法」）。2.腹腔注射2.1 抓取与固定方法同小鼠皮下注射实验。2.2 消毒下腹部皮肤，使鼠头部稍向下，以免针头刺入内脏（图 1，B）。2
动物的注射方法实验——皮内注射法
实验材料豚鼠试剂、试剂盒灭菌生理盐水仪器、耗材注射器（1 ml）5 号针头剪刀消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉花实验步骤1. 注射器的准备与消毒（同「皮下注射法」）。2. 皮内注射2.1 助手用左手从背面夹持豚鼠颈部，将动物提起，并使大拇指钩住下颌部，其他几个手指将另一边的前腿固定，右手在
动物的注射方法实验——皮下注射法
很多微生物学与免疫学实验均需利用动物，例如各种抗体，包括单克隆抗体的制备、药物对免疫功能的影响，菌苗与疫苗的安全试验以及各免疫机理的研究等都要通过注射方式在动物体内进行。实验方法原理实验材料小白鼠试剂、试剂盒灭菌生理盐水仪器、耗材注射器（1 ml）6 号针头消毒煮沸器碘酒棉花75％ 酒精棉花消毒干棉
病毒的培养方法实验——动物接种法
实验方法原理注意选择动物种类，年龄。按病毒侵袭部位的不同，选择适宜的接种途径，例如脑炎病毒以注射脑内最敏感。接种后经一定潜伏期，动物发病或死亡即进行解剖。根据动物的症状表现，器官病理改变，受染脏器组织悬液能在同种动物进行连续传代，并排除其他微生物污染的可能性等，即可证明有病毒的增殖。实验材料小白鼠实
静脉注射钾的不良反应
氯化钾是临床上常用补充电解质的药物，此类药物不建议静脉注射治疗，而是稀释后静脉输液治疗。因为静脉注射治疗钾时，很容易引起血管疼痛发生，血管炎发生，高浓度给药对血管刺激很大，往往需要稀释治疗。而且静脉注射氯化钾，可以造成短期的高钾血症，引起心跳骤停的发生，以500g盐水稀释后缓慢滴注。氯化钾是严禁
尾静脉注射快速入门技巧
动物实验当中，小鼠给药的方式有多重，常见的有灌胃，腹腔，皮下，尾静脉，饮食等。相比于灌胃、皮下，腹腔等给药方法，尾静脉注射可能是相对有难度的一种给药方式。对于新手来说，尾静脉难以操作成功。但是通过合适的方法，多加练习，也能轻松掌握！ 固定装置很重要 注意！尾静脉注射固定装置很重要，这是成功的首要条
实验动物实验标本的采集实验——动物采血方法
实验材料实验动物试剂、试剂盒消毒液仪器、耗材注射器实验步骤(1) 大鼠、小鼠的采血方法：①剪尾采血：适用于少量采血，如制作血涂片、白细胞计数等。动物麻醉后，将尾尖剪去约 5 mm, 待血液流出采集。也可用刀割破尾动脉或尾静脉，让血液自行流出。小鼠可每次采血约 0. 1 ml, 大鼠约 0.4 ml。
实验动物经口给药法——实验动物经口给药法
实验材料小鼠大鼠豚鼠兔猫狗试剂、试剂盒水药液片剂胶囊剂仪器、耗材灌胃器注射器兽用针头鼠笼开口器导尿管镊子经口给药有口服和灌胃两种方法，口服法一般将药物掺入饲料或溶于水中，由动物自由摄取，但为了保证药物的剂量准确性，应使用灌胃法。可供选择的动物有小鼠、大鼠、豚鼠、兔、猫、狗等动物。灌胃法(1)小鼠灌胃
关于家兔静脉注射水杨酸钠的药动学实验
给药速度肯定会影响结果取血间隔也肯定影响结果
临床化学检查方法介绍静脉注射肾盂摄影检查介绍
静脉注射肾盂摄影检查介绍： 静脉注射肾盂摄影检查是一项用于检查肾脏是否正常的辅助诊断方法。是由静脉注射显影剂，显影剂会随血液循环流经肾脏，将肾脏、输尿管、膀胱整个显影出来，经由这个检查可以获知许多讯息，例如肾脏的大小、功能、输尿管蠕动的情形，膀胱功能、结石的位置及大小、肿瘤是否存在，同时也可以由余
关于静脉注射肾盂摄影检查的简介
静脉注射肾盂摄影检查是一项用于检查肾脏是否正常的辅助诊断方法。是由静脉注射显影剂，显影剂会随血液循环流经肾脏，将肾脏、输尿管、膀胱整个显影出来，经由这个检查可以获知许多讯息，例如肾脏的大小、功能、输尿管蠕动的情形，膀胱功能、结石的位置及大小、肿瘤是否存在，同时也可以由余尿的多少，膀胱底部是否有摄
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧
1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些非凡
大小鼠尾静脉注射难点指导
实验动物中采用的给药方法众多，根据药物性质和实验目的不同，需要采用不同的给药方式，如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药，在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大，却也是我们不可或缺的实验技能。今天，就和大家分享下尾静脉注射的技巧。本次文章内容丰富全面，主要分为2部分，尾静脉注射基本步骤和技术
实验动物骨髓的采集法
采集骨髓一般选择胸骨、肋骨、髁骨、胫骨和股骨等造血功能活跃的骨组织。猴、犬、羊等大动物的骨髓的采集用活体穿刺取骨髓的方法；大、小鼠等小动物骨头小难穿刺，只能剖杀后采胸骨、股骨的骨髓。（一）猴、犬、羊等的骨髓采集法1. 骨髓穿刺点定位（1）胸骨：穿刺部位在胸骨中线，胸骨体与胸骨柄连接处，或选胸骨上1/
实验动物组织标本的制备实验_解剖法
通常选用家兔、豚鼠、大白鼠或小白鼠等动物，禁食24 小时。击头致昏，以避免麻醉或失血对胃肠道机能的影响。立即打开腹腔，取出所需的胃、肠、胆囊等。去除附着的系膜或脂肪等组织。迅速放入充氧（或95%O2+5%CO2 ）保温（37 ℃）的营养液中，并以注射器用营养液将管腔内的食物残渣清洗干净。实验材料家兔
实验动物的麻醉方法
1．全身麻醉 （1）吸入法 用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用乙醚作麻药。麻醉时用几个棉球，将乙醚倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4-6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有乙醚的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时给套在鼻
实验动物的处死方法
实验动物的处死方法很多，应根据动物实验目的、实验动物品种（品系）、以及需要采集标本的部位等因素，选择不同的处死方法。无论采用哪一种方法，都应遵循安乐死的原则。安乐死是指在不影响动物实验结果的前提下，使实验动物短时间无痛苦地死亡。处死实验动物时应注意，首先要保证实验人员的安全；其次要确认实验动物已经死
实验动物的麻醉方法
实验动物的麻醉方法1．全身麻醉（1）吸入法 用一块圆玻璃板和一个钟罩或一个密闭的玻璃箱作为挥发性麻醉剂的容器，多选用*作麻药。麻醉时用几个棉球，将*倒可其中，迅速转入钟罩或箱内，让其挥发，然后把待麻醉动物投入，约隔4--6分钟即可麻醉，麻醉后应立即取出，并准备一个蘸有*的棉球小烧杯，在动物麻醚变浅时
动物实验的常用方法
在医学教学、科研和医学工作中，不论是从事基础医学的还是临床医学、预防医学，都需要用实验动物来进行各种实验。通过对动物的实验的观察和分析，来研究和解决医学上存在的许多问题，动物实验方法已成为医学科学研究和教学工作中必不可少的重要手段。动物实验方法是多种多样的，在医学的各个领域内都有其不同的应用，其中一