体内转染之小鼠尾静脉注射技巧
1.小鼠的固定最好使用小鼠固定器，前部有气孔保证小鼠呼吸，后部可以将尾部拉出，不要让小鼠在固定器中有太多活动空间， 如空间较大，可加入一些填充物，防止小鼠在注射时乱动。2.尾静脉的准备可以将小鼠尾部在50℃左右温水浸浴2分钟，以扩张静脉。3.尾静脉的选择小鼠尾部有3条尾静脉。背部1天，两侧各1条。由于背部静脉较深，较细，一般选择侧面的2条。4.注射器的选择选择1-2ml注射器，针头采用4号或4.5号。 最好采用疫苗接种的一次性2ml注射器。注射器吸入药液后，应将空气推出，防止因空气进入静脉小鼠死亡。5.注射用75%酒精消毒鼠尾后，一般在尾部远端的1/3到1/2处进针，此处皮肤较薄，血管清晰，进针容易，而且一旦注射不成功，可以有更多近端注射的余地。将欲注射的鼠尾用左手紧紧压在桌面上，右手进针时针头与桌面平行，针尖稍稍朝下，一旦进入，将针头稍稍上挑进入，针头沿血管进入，肉眼可关察到针头前进。如果针头在血管中前进，可明显地感觉到针行通......阅读全文
体内转染之小鼠尾静脉注射技巧
1.小鼠的固定最好使用小鼠固定器，前部有气孔保证小鼠呼吸，后部可以将尾部拉出，不要让小鼠在固定器中有太多活动空间， 如空间较大，可加入一些填充物，防止小鼠在注射时乱动。2.尾静脉的准备可以将小鼠尾部在50℃左右温水浸浴2分钟，以扩张静脉。3.尾静脉的选择小鼠尾部有3条尾静脉。背部1天，两侧各1条。由
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧
1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些非凡
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得
关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定
小鼠尾静脉注射方法
实验材料 小鼠仪器、耗材 大培养皿注射器酒精棉实验步骤 在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.
小鼠尾静脉注射方法
实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.5ml
尾静脉注射快速入门技巧
动物实验当中，小鼠给药的方式有多重，常见的有灌胃，腹腔，皮下，尾静脉，饮食等。相比于灌胃、皮下，腹腔等给药方法，尾静脉注射可能是相对有难度的一种给药方式。对于新手来说，尾静脉难以操作成功。但是通过合适的方法，多加练习，也能轻松掌握！ 固定装置很重要 注意！尾静脉注射固定装置很重要，这是成功的首要条
大小鼠尾静脉注射难点指导
实验动物中采用的给药方法众多，根据药物性质和实验目的不同，需要采用不同的给药方式，如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药，在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大，却也是我们不可或缺的实验技能。今天，就和大家分享下尾静脉注射的技巧。本次文章内容丰富全面，主要分为2部分，尾静脉注射基本步骤和技术
如何解决大鼠尾静脉注射比小鼠还难的问题？
其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似，只是...... 因为大鼠，个体更大，难固定、易挣扎；尾巴颜色深，不易辨别血管；尾巴质地更粗糙，扎针力度要更大； 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴，可见大鼠尾巴的质地粗糙，难辨别血管的特点： 小鼠尾巴（左）和大鼠尾巴（右） 大鼠尾静
基本方案1－尾静脉注射传递重组腺病毒到小鼠肝脏
实验材料成年小鼠试剂、试剂盒乙醇重组腺病毒悬液仪器、耗材带铁丝盖的鼠笼加热灯小鼠限制器棉纱店注射器实验步骤1.一个鼠笼装 6 只小鼠，加热灯置铁丝盖上方 6~10in(15~25 cm) 给小鼠取暖。观察小鼠，约 5 min 后，它们会在角落里缩做一团，准备注射。不要在角落的位置照射小鼠。2.取一只
大小鼠静脉注射实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 注射器实验步骤 一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射前先将动物固定在鼠筒或玻璃罩内，使鼠尾露出，在45℃～50℃热水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管扩张。用拇指和食指捏住尾根部，再以无名指和小指夹住尾端部，用中指从
大小鼠静脉注射实验
静脉注射（Intravenous injection）是一种医疗方法，可以用于把血液、药液、营养液等液体物质直接注射到静脉中。实验方法原理鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将
ZL02B大鼠尾静脉注射显像仪
ZL-02B大鼠可视尾静脉注射仪是用于大鼠尾注射的一款仪器，以往给大鼠注射都是靠盲打，靠经验，对科研新手来说极其困难，有了大鼠尾静脉注射仪，可以大大提高注射效率，该仪器可以显示出尾部血管位置，可看到针头注射动作，装有自动压尾装置，实验人员一个人既可操作。详情介绍：1、注射仪尺寸：275*160*12
表皮细胞的转染实验技巧
表皮细胞广泛遍布于身体，正常的表皮细胞较难转染，尤其是使用基于脂质体技术的转染试剂。我们使用电转(Amaxa)方法转染正常人的结肠表皮细胞并得到了65%的GFP标记细胞。非常感谢SignaGen,现在我们使用GenJet Ver II可以成功转染正常人的结肠表皮细胞并且转染效率显著提高至75%。
Life－Tech推出新一代miRNA功能研究工具
Ambion(现在属于Life Technologies)，是提供microRNA调控研究工具产品的第一家公司。从那时起，Ambion® miRNA mimics与 inhibitors系列产品就成了人为调节miRNA表达水平的最常用研究工具。 如今，Life Technologies
直视小鼠体内癌症扩散
日本的研究人员开发了一种通过使用化学技术使整个小鼠身体和器官高度透明、能够在单细胞水平对癌症进行成像的方法。该方法与现有成像技术结合起来，使他们能够观察到器官（包括肺，肠和肝脏）内增殖的癌细胞，以及远处转移的新肿瘤。研究结果于7月5日发表在cell report杂志上。 来自东京大学和RIKE
静脉给药方法步骤介绍
在动物实验中，静脉给药是一种常见的给药方式，静脉注射的药物不经肠壁和肝脏，直接进入体内循环，其药物吸收速度远快于其他给药方式。 在所有常规给药途径中，静脉注射也是最困难的给药方式之一。对于初学者来说，在没有指导的情况下很难上手，成功率极低。今天小编就给大家讲一讲真正给力的静脉给药方法，
静脉给药方法步骤
在动物实验中，静脉给药是一种常见的给药方式，静脉注射的药物不经肠壁和肝脏，直接进入体内循环，其药物吸收速度远快于其他给药方式。 在所有常规给药途径中，静脉注射也是最困难的给药方式之一。对于初学者来说，在没有指导的情况下很难上手，成功率极低。今天小编就给大家讲一讲真正给力的静脉给药方法，让新手也可以轻
细胞转染技巧及常见问题分析
1. Freestyle™ 293-F细胞的培养：在37℃，125rpm，8% CO2的摇床培养箱中培养；转染当天Freestyle™ 293-F细胞密度达到1.5-2.5×106个/ml时可以进行转染，但细胞存活率需>95%；可以使用生产的台盼蓝染色细胞存活率检测试剂盒(C0011)进行细胞存活率
大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材注射器实验步骤先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 注射器实验步骤 先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
大鼠、小鼠剪尾尖取血实验
实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
大鼠、小鼠剪尾尖取血实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
有针对性的转染体内细胞/组织
实验概要在体内磁转™是一种快速，简单和高效的方法，特别是在体内靶细胞/组织的转染。这个原系统与磁性纳米粒子和核酸载体相结合。靶向这种方式，最大限度地减少全身分布，降低基因载体的失活，并降低毒性。此外，磁场力，提高靶组织的磁性纳米粒子吸收，从而提高转染效率。这可以减少所需的处理时间，这是改善体内的核酸
电转染小课堂之如何选择波形
欢迎大家订阅电转染小课堂，本期我们来分享如何选择电穿孔的波形，各波形需要设置的参数有哪些？以及两种波形之间的转换Part 1 方波方波脉冲是指电压瞬间升至预设电压，保持电压放电，然后瞬间终止放电。一般哺乳动物细胞电转染时选择方波脉冲，有较高的转染效率和细胞存活率。选择方波时，有以下参数要进行考虑：场
电转染小课堂之如何选择波形
欢迎大家订阅电转染小课堂，本期我们来分享如何选择电穿孔的波形，各波形需要设置的参数有哪些？以及两种波形之间的转换 Part 1 方波 方波脉冲是指电压瞬间升至预设电压，保持电压放电，然后瞬间终止放电。一般哺乳动物细胞电转染时选择方波脉冲，有较高的转染效率和细胞存活率。选择方波时，有以
脂质体载体用于直接体内基因转染实验
试剂、试剂盒氯仿DC-Chol 储存液DOPEDOTAP胆固醇储存液葡萄糖仪器、耗材透紫外灯玻璃离心管氮气桶真空干燥器水浴超声破碎仪水浴锅挤压机聚碳酸酯膜滤器实验步骤1.用氯仿将 30.0ml 的透紫外灯玻璃管漂洗 3 次。2.混匀用于准备脂质体的在透紫外灯玻璃管中的适当的脂质。（1）对于 DC-C
脂质体载体用于直接体内基因转染实验
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实验室小鼠繁育之如何提前预防小鼠食仔
动物实验中小鼠繁育是十分重要的环节，尤其是基因修饰小鼠，需要繁育很多的后代才能获得足够的实验组。可是好不容易等到孕鼠生产，小鼠仔竟然被它们的妈妈吃掉了，好崩溃，实验又要等等等。为了避免以上情况发生，一定要提前预防小鼠食仔！下面让我们一起看看小鼠食仔有哪些常见因素以及如何预防：小鼠居住环境笼位密度环境
从静脉注射至皮下注射胰岛素的转变技巧
德克萨斯州格雷普韦恩（EGMN）——根据明尼阿波利斯HealthPartners医疗集团的John MacIndoe博士在住院医学会年会上的发言，住院的糖尿病患者从静脉注射胰岛素转变至皮下注射胰岛素并没有通用的方法，通常采取基础联合餐时胰岛素+可调量性胰岛素（根据患者的血糖水平）的方法，尽管
基因导入的化学方法
即用化学方法构建非病毒载体系统，借之完成基因转导。主要包括以下两种。 1脂质体载体 脂质体载体方法具有安全、简单、低毒、无免疫原性等优点，适用于注射方法进行器官靶向性转移并有一定的转移效率。是除病毒载体转移方法之外的另一种有价值的体内基因转移方法。多用于体外转化细胞，或通过瘤组织内注射进行体