ZL02B大鼠尾静脉注射显像仪
ZL-02B大鼠可视尾静脉注射仪是用于大鼠尾注射的一款仪器，以往给大鼠注射都是靠盲打，靠经验，对科研新手来说极其困难，有了大鼠尾静脉注射仪，可以大大提高注射效率，该仪器可以显示出尾部血管位置，可看到针头注射动作，装有自动压尾装置，实验人员一个人既可操作。详情介绍：1、注射仪尺寸：275*160*120mm2、快装鼠筒可盛装170-300g的大鼠（可定制）3、1W透射光源4、透射光强度无级可调5、自动压尾，无需人工手按6、压尾器可手控和脚控两种方式7、光源0~35mm行程调节，可注射不同位置8、电源适配器：输出12v 2A9、电源适配器：输入：AC100-220V 50Hz10、功率:<10W11、整机尺寸：275*160*120mm12、整机重量：2Kg......阅读全文
ZL02B大鼠尾静脉注射显像仪
ZL-02B大鼠可视尾静脉注射仪是用于大鼠尾注射的一款仪器，以往给大鼠注射都是靠盲打，靠经验，对科研新手来说极其困难，有了大鼠尾静脉注射仪，可以大大提高注射效率，该仪器可以显示出尾部血管位置，可看到针头注射动作，装有自动压尾装置，实验人员一个人既可操作。详情介绍：1、注射仪尺寸：275*160*12
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧
1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较轻易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定。在一些非凡
大鼠和小鼠尾静脉注射技巧与心得
关键步骤是:1. 将小鼠固定好,将尾巴拉直，绷紧，这是成功的第一步。小鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将小鼠置于左手掌心、无名指和小指夹其背部皮肤和尾部，即可将小鼠完全固定
如何解决大鼠尾静脉注射比小鼠还难的问题？
其实大鼠尾静脉注射步骤和小鼠基本类似，只是...... 因为大鼠，个体更大，难固定、易挣扎；尾巴颜色深，不易辨别血管；尾巴质地更粗糙，扎针力度要更大； 因此大鼠尾静脉注射操作难度更大。如下图分别为小鼠和大鼠的尾巴，可见大鼠尾巴的质地粗糙，难辨别血管的特点： 小鼠尾巴（左）和大鼠尾巴（右） 大鼠尾静
小鼠尾静脉注射方法
实验材料 小鼠仪器、耗材 大培养皿注射器酒精棉实验步骤 在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.
小鼠尾静脉注射方法
实验材料小鼠仪器、耗材大培养皿注射器酒精棉实验步骤在靠近实验台边缘处, 用大培养皿扣住小鼠, 左手抓住小鼠尾巴, 用酒精棉球擦尾巴, 可见到两侧静脉; 注射前应确认针管内无气泡, 注射时由尾尖开始,顺向刺入。失败后再逐渐移向根部重刺, 若准确刺入静脉内, 推进时无阻力, 一般可注入0.1—0.5ml
尾静脉注射快速入门技巧
动物实验当中，小鼠给药的方式有多重，常见的有灌胃，腹腔，皮下，尾静脉，饮食等。相比于灌胃、皮下，腹腔等给药方法，尾静脉注射可能是相对有难度的一种给药方式。对于新手来说，尾静脉难以操作成功。但是通过合适的方法，多加练习，也能轻松掌握！ 固定装置很重要 注意！尾静脉注射固定装置很重要，这是成功的首要条
大小鼠尾静脉注射难点指导
实验动物中采用的给药方法众多，根据药物性质和实验目的不同，需要采用不同的给药方式，如上一期介绍的灌胃、腹腔、皮下注射及静脉注射给药，在这几种给药方式中尾静脉给药难度最大，却也是我们不可或缺的实验技能。今天，就和大家分享下尾静脉注射的技巧。本次文章内容丰富全面，主要分为2部分，尾静脉注射基本步骤和技术
体内转染之小鼠尾静脉注射技巧
1.小鼠的固定最好使用小鼠固定器，前部有气孔保证小鼠呼吸，后部可以将尾部拉出，不要让小鼠在固定器中有太多活动空间， 如空间较大，可加入一些填充物，防止小鼠在注射时乱动。2.尾静脉的准备可以将小鼠尾部在50℃左右温水浸浴2分钟，以扩张静脉。3.尾静脉的选择小鼠尾部有3条尾静脉。背部1天，两侧各1条。由
大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验
实验材料大鼠小鼠试剂、试剂盒酒精棉球仪器、耗材注射器实验步骤先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
大鼠、小鼠剪尾尖取血实验
实验材料大鼠小鼠仪器、耗材小动物实验台注射器酒精实验步骤将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
大鼠、小鼠剪尾尖取血实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 小动物实验台注射器酒精实验步骤 将动物固定或麻醉后，露出鼠尾，将尾巴置于45℃～50℃热水中浸泡数分钟，使血管扩张。擦干鼠尾后，将尾尖剪去1～2mm（小鼠）或5mm（大鼠）。从尾根部向尾尖部按摩，血即从断端流出。
大鼠、小鼠针刺尾静脉取血实验
实验材料 大鼠 小鼠试剂、试剂盒 酒精棉球仪器、耗材 注射器实验步骤 先固定动物，用酒精棉球消毒尾部，然后对准尾尖部向上数厘米处的静脉用注射针刺入后立即拔出。采血后用局部压迫、烧烙等方法进行止血。
小动物PET/CT在肺、胃、肠道方面研究的应用
前言肿瘤学是小动物PET/CT分子影像技术的应用热点之一，主要在评估肿瘤模型的建立、进行肿瘤模型筛选、肿瘤检测及药效评价方面发挥着重要作用。除了在肿瘤方面的应用外，PET还在大鼠的肠道方面有重要应用。 案例一、小鼠肺部肿瘤本案例选用的是20g肺部肿瘤小鼠，尾静脉注射FDG260μci,代谢60分钟，
基本方案1－尾静脉注射传递重组腺病毒到小鼠肝脏
实验材料成年小鼠试剂、试剂盒乙醇重组腺病毒悬液仪器、耗材带铁丝盖的鼠笼加热灯小鼠限制器棉纱店注射器实验步骤1.一个鼠笼装 6 只小鼠，加热灯置铁丝盖上方 6~10in(15~25 cm) 给小鼠取暖。观察小鼠，约 5 min 后，它们会在角落里缩做一团，准备注射。不要在角落的位置照射小鼠。2.取一只
大鼠尾加压素II(Urotensin－II)ELISA检测法
大鼠尾加压素II(Urotensin II)ELISA试剂盒 (用于血清、血浆、细胞培养上清液和其它生物体液内) 原理本实验采用双抗体夹心 ABC-ELISA法。用抗大鼠 Urotensin II 单抗包被于酶标板上，标准品和样品中的 Urotensin II与单抗结合，加入生物素化的抗大鼠Urot
大小鼠的注射技术指导
尾静脉注射是大鼠最常用的给药方式之一，然而有时候如药代动力学实验我们需要在尾静脉进行多次血液样品的采集，那么若进行尾静脉给药便不可取；另外有时候不少同学经常把尾巴都快打烂了，却依然没成功，此时我们就得寻找新的静脉继续注射了。往期我们已介绍了大鼠的尾静脉注射方法，本期就为大家介绍一条新的又很实用的静脉
实验动物接种途径和接种方法试验——静脉接种
实验材料实验动物试剂、试剂盒病毒试剂仪器、耗材注射器实验步骤静脉接种。可造成病毒全身性感染，可观察病毒的致病性或机体对病毒的清除机制。(1) 小鼠、大鼠的静脉注射：常采用尾静脉注射。鼠尾静脉共有 3 根，左右两侧和背侧各 1根．两侧尾静脉比较容易固定，常被采用。(2) 豚鼠的静脉注射：一般采用前肢皮
实验动物的编号、抓取和固定方法
1、实验动物的编号实验时，为了分组和辨别的方便，常需事先为实验动物进行编号。常用的编号方法如下：1）染料标记法：常用染料——红色染料：5％中性红或品红液；黄色染料：3%～5％苦味酸溶液；咖啡色染料：2％硝酸银溶液；黑色染料：煤焦油的乙醇溶液。标记规则——根据实验动物被毛颜色的不同选择不同化学药品涂染
狗静脉注射实验
实验材料狗仪器、耗材绳子注射器实验步骤狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉(图1)或后肢小隐静脉（图2），注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。图1图2 展开
狗静脉注射实验
狗静脉注射多选用前肢内侧头静脉(图1)或后肢小隐静脉（图2），注射前应先剪去注射部位的被毛，用胶带扎紧静脉近心端，使血管充盈，针尖自远心端刺入血管，有回血后，固定针头，徐徐注入药液。图1图2
肝胆动态显像的正常显像
正常：肝胆动态显像的正常值显示为正常。 显像：静脉注入后，99m-Tc-IDA与血清蛋白相结合并被运到肝脏，再进入肝细胞，这一机制与血清胆红素相似。肝脏处理99m-Tc-IDA可分为三时期：摄入期、分泌期和排泄期。 注射显像剂5分钟，肝脏即可清晰显影，10～20分钟能清楚显示左右肝内胆管。胆
肝胆动态显像的显像原理
静脉注射能被肝细胞摄取并经胆道进行排泄的放射性药物，通过近似于处理胆红素的过程，将其分泌入胆汁，继而经由胆道系统排泄至肠道。动态显像可观察药物被肝脏摄取、分泌、排出至胆道和肠道的过程，了解肝胆系的形态结构和功能。 结合了直观的影像学方法和定量分析手段，来观察正常人的胆汁排泄过程，旨在讨论空腹状
大鼠（Rat）尾加压素II（Urotensin－II）ELISA检测试剂盒使用..
本试剂盒只能用于科学研究，不得用于医学诊断大鼠（Rat）尾加压素II（Urotensin II）ELISA检测试剂盒使用说明书检测原理试剂盒采用双抗体一步夹心法酶联免疫吸附试验（ELISA）。往预先包被尾加压素II（Urotensin II）抗体的包被微孔中，依次加入标本、标准品、HRP标记的检
实验动物染毒途径和技术3
经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：①硫
实验动物染毒途径和技术4
（三)经皮肤染毒> 经皮肤染毒的目的有两种。一种是经皮染毒毒性试验，如经皮Lao测定常用大鼠，皮肤致癌试验常用小鼠‘另一种是皮肤刺激和致敏试验，皮肤刺激试验常用兔和豚鼠，皮肤致敏试验用豚鼠。 被毛的去除：试验前用机械法(剪剃毛)或化学法(硫化胸或硫化钡)脱毛。对兔和啮6类常用的脱毛剂处方为：
大小鼠静脉注射实验
实验材料 大鼠 小鼠仪器、耗材 注射器实验步骤 一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有3根，两侧及背侧各一根，左右两侧尾静脉较易固定，应优先选择。注射前先将动物固定在鼠筒或玻璃罩内，使鼠尾露出，在45℃～50℃热水中浸泡，或用酒精擦拭，使血管扩张。用拇指和食指捏住尾根部，再以无名指和小指夹住尾端部，用中指从
大小鼠静脉注射实验
静脉注射（Intravenous injection）是一种医疗方法，可以用于把血液、药液、营养液等液体物质直接注射到静脉中。实验方法原理鼠性情较温顺，一般不会咬人，比较容易抓取固定。通常用右手提起小鼠尾巴将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上，在小鼠向前挣扎爬行时，用左手拇指和食指捏住其双耳及颈部皮肤，将
大鼠抓取与固定实验
大白鼠牙齿锋利，捕捉时要提防被咬伤。从笼内抓取周龄较小的大白鼠时，需抓住大白鼠尾巴的根部，不要让大白鼠悬在空中的时间过长，否则易激怒大白鼠并易致尾部皮肤脱落，抓取大的时，用左手从背部中央到胸部捏住，但用力不宜过大，最好戴防护手套，但手套不宜过厚。如若是灌胃、腹腔注射、肌肉或皮下注射，可采用抓取小鼠的
简介显像管的显像原理
在电视接收机中，由视放末级把经过放大的视频图像信号送到显像管阴极，用以控制电子束电流的强弱，从而重显图像。如果图像信号是与静态电压同时加在显像管的G、K之间的。下面利用线性化后的显像管调制曲线来分析加入图像信号后束电流的变化，以及显像管显示图像与调制曲线的工作关系。