从RNA抽提到电泳鉴定3
3， 稍离心4， 100℃沸水浴1分钟5， 趁热加入Tag酶0.5ul（冰上操作）6， 再加入50ul液体石蜡封闭7， 10000rmp离心1分钟8， PCR条件94℃ 1min58℃ 50sec72℃ 1min30sec进行40个循环，然后72℃ 10min 完后4℃保温。9，10000rmp离心5min10，将下层水相转入新的0.65mlEP管中，-20℃保存。电泳鉴定一，准备工作1，实验器具与材料：（1）移液枪：10ul（2）吸头：20ul（3）吸头台：放置 200ul和20ul的吸头一个（4）三角烧瓶：50ml一个（5）琼脂糖2，实验器具的处理与准备(1) 塑料制品：（包括吸头等）送至高压3次，试验前将枪头放入吸头台。（2）电泳板及电泳槽：用自来水冲洗干净备用3, 试剂配制和准备：(1) 电泳缓冲液（TAE）：先配制0.5mol/L,PH8.0的EDTA溶液：将37.2g EDTA-Na加入160ml蒸馏水中，在搅拌器上......阅读全文
从RNA抽提到电泳鉴定3
3， 稍离心4， 100℃沸水浴1分钟5， 趁热加入Tag酶0.5ul（冰上操作）6， 再加入50ul液体石蜡封闭7， 10000rmp离心1分钟8， PCR条件94℃ 1min58℃ 50sec72℃ 1min30sec进行40个循环，然后72℃ 10min 完后4℃保温。9，10000rmp离心
从RNA抽提到电泳鉴定1
RNA抽提一，准备工作1， 实验器具与材料：（1） 移液枪：1ml、200ul、10ul（2） 吸头：1ml、200ul、20ul（3） 吸头台：放置1ml吸头的一个，放置200ul和20ul的吸头一个（4） EP管1.5ml、100ul（5） 玻璃研磨器（6） 容量瓶：1000ml（7） 盐水瓶：
从RNA抽提到电泳鉴定2
逆转录（RT）一，准备工作1， 实验器具与材料：（1）移液枪：200ul、10ul（2）吸头：200ul、20ul（3）EP 管1.5ml、100ul（4）水浴箱2，实验器具的处理与准备塑料制品：（包括吸头、EP管等）将塑料制品逐个浸泡于 1‰DEPC水中（必要时小枪头需要用吸管打入DEPC水）37
从RNA抽提到制成cDNA的全过程
一).构建cDNA文库：以生物细胞的总 mRNA 为模板，用反转录酶合成互补的双链 cDNA ，然后接到载体上，转入到宿主后建立的基因文库就是 cDNA 文库。1、mRNA的提取及其完整性的确定1） 总 RNA 的提取RNA 提取方法：APGC法或NP-40或应用试剂盒提取总RNA2）mRNA的分离
RNA电泳鉴定步骤
一，准备工作 1，实验器具与材料: (1)移液枪:10ul (2)吸头:20ul (3)吸头台:放置 200ul 和 20ul 的吸头一个 (4)三角烧瓶:50ml 一个 (5)琼脂糖 2，实验器具的处理与准备 (1) 塑料制品:(包括吸头等) 送至
RNA抽提注意事项和经验指南3
RNA 抽提的“三大纪律八项注意” 纪律一：杜绝外源酶的污染。注意一：严格戴好口罩，手套。注意二：实验所涉及的离心管，Tip 头，移液器杆，电泳槽，实验台面等要彻底处理。注意三：实验所涉及的试剂/溶液，尤其是水，必须确保 RNase-Free。纪律二：阻止内源酶的活性注意四：选择合适的匀浆方法。注意
RNA抽提经验
对大部分实验人员来说，RNA 抽提比基因组 DNA 抽提要困难得多。事实上，现有的 RNA 抽提方法/试剂，如果用于从培养细胞中抽提 RNA，比抽提基因组 DNA 更方便，成功率也更高。那为什么同样的方法用于组织 RNA 的抽提，总会碰到问题呢？ 组织 RNA 抽提失败的两大现象是： RNA 降
甲醛变性凝胶电泳鉴定RNA实验
实验方法原理 琼脂糖凝胶电泳作为鉴定大分子物质经常被使用, 但含有RNase 酶活性, 因此要使RNase 变性而不使RNA 变性的, 故采用甲醛变性凝胶电泳鉴定RNA。实验材料 RNA试剂、试剂盒 MOPS乙酸钠EDTA蔗糖EDTA溴酚蓝二甲苯青甲醛仪器、耗材 电泳槽电泳仪实验步骤 1. 制备凝
甲醛变性凝胶电泳鉴定RNA实验
凝胶电泳法 实验方法原理 琼脂糖凝胶电泳作为鉴定大分子物质经常被使用, 但含有RNase 酶活性, 因此要使RNase 变性而不使RNA 变性的, 故采用甲
甲醛变性凝胶电泳鉴定RNA实验_凝胶电泳法
本实验旨在学会甲醛变性凝胶电泳鉴定RNA 的方法。琼脂糖凝胶电泳作为鉴定大分子物质经常被使用, 但含有RNase 酶活性, 因此要使RNase 变性而不使RNA 变性的, 故采用甲醛变性凝胶电泳鉴定RNA。实验方法原理琼脂糖凝胶电泳作为鉴定大分子物质经常被使用, 但含有RNase 酶活性, 因此要使
RNA抽提过程介绍
一，准备工作 1， 实验器具与材料: RNA 抽提 (1) 移液枪:1ml、200ul、10ul (2) 吸头:1ml、200ul、20ul (3) 吸头台:放置1ml吸头的一个，放置200ul和20ul的吸头一个 (4) EP管1.5ml、100ul (5)
RNA电泳
RNA Gel (Crawford Lab)Gel Electrophoresis of RNA (Beverly Faulkner-Jones)great tips on RNA gel electrophoresis.Northern Gel and TransferUsing glyoxal
RNA电泳
· RNA Gel (Crawford Lab)· Gel Electrophoresis of RNA (Beverly Faulkner-Jones)great tips on RNA gel electrophoresis. · Northern
RNA－电泳
①电泳RNA 所用器械如制胶的模具、梳子、电泳槽等用肥皂粉洗干净后用双蒸水冲洗二遍后在室温晾干备用。②用新的1XTBE 配制1. 2 %琼脂糖凝胶,倒胶时溴化乙锭(E直接加入凝胶中。③制备好的琼脂糖凝胶板放入电泳槽后再加入经高压灭菌过的1XTBE ,液面只能刚好同胶面平齐,缓冲液不要淹过胶面。④点样
RTPCR实验方法大全(抽提RNA，RT，PCR)3
4. 配制的溶液应尽可能的用0.1% DEPC，在37℃处理12hr以上。然后用高压灭菌除去残留的DEPC。不能高压灭菌的试剂，应当用DEPC处理过的无菌双蒸水配制，然后经 0.22μm滤膜过滤除菌。5. 操作人员戴一次性口罩、帽子、手套，实验过程中手套要勤换。6. 设置RNA操作专用实验室，所有器
血与泪的RNA抽提抽提经验
对大部分实验人员来说，RNA 抽提比基因组 DNA 抽提要困难得多。事实上，现有的 RNA 抽提方法/试剂，如果用于从培养细胞中抽提 RNA，比抽提基因组 DNA 更方便，成功率也更高。那为什么同样的方法用于组织 RNA 的抽提，总会碰到问题呢？组织 RNA 抽提失败的两大现象是： RNA 降解和组
RNA抽提指南(TRIZOL法)
RNA抽提指南(TRIZOL法)注意事项：* 全程佩戴一次性手套。皮肤经常带有细菌和霉菌，可能污染RNA的抽提并成为RNA酶的来源。培养良好的微生物实验操作习惯预防微生物污染。* 使用灭菌的，一次性的塑料器皿和自动吸管抽提RNA，避免使用公共仪器所导致的RNA酶交叉污染。例如，使用RNA探针的实验室
核酸电泳（RNA电泳与DNA电泳）
（一）DNA的凝胶电泳：凝胶电泳是分子克隆的中心技术之一。琼脂糖凝胶用于分离大于200～1000bp的片段;操作简单、快速，且分离范围广，分辨率高。2.聚丙烯酰胺凝胶用于分离5－500bp的片段; 效果好、分辨率极高，相差1bp的DNA片断就能分开，能容纳相对大量的DNA ，用于核苷酸多态性的分析。
RNA抽提和标记实验
实验材料从组织培养收获的细胞在组织培养中的细胞冻存的整个组织试剂、试剂盒磷酸盐缓冲液（PBS）TRIzol 试剂乙醇乙酸钠EDTANaOHTris-ClTE 缓冲液固定化的 oligo-dT 引物仪器、耗材组织匀浆器热循环仪荧光扫描仪实验步骤实验所需「材料」、「试剂」、「耗材」具体见「其他」1a.
RNA抽提和标记实验
实验方法原理 实验材料 从组织培养收获的细胞在组织培养中的细胞冻存的整个组织试剂、试剂盒 磷酸盐缓冲液（PBS）TRIzol 试剂乙醇乙酸钠EDTA NaOHTris-ClTE 缓冲液固定化的 oligo-dT 引物仪器、耗材 组织匀浆器热循环仪荧光扫描仪实验步骤 实验所需「材料」、「试剂」、「耗材
RNA抽提和标记实验
实验方法原理 实验材料 从组织培养收获的细胞 在组织培养中的细胞 冻存的整个组织
RNA抽提－成功经验法则
本期专文要来跟大家讨论的话题是核糖核酸(RNA)的萃取，看到这里各位心中可能已经起了疑问: RNA 萃取不是很简单吗?只要照着标准步骤操作，加一加试剂就完成了，有必要大费周章特地开篇幅来谈这件事吗?其实越简单的东西遇到困难时就越难解，各位看倌就请耐着性子，听我们娓娓道来。Lab 的经验和客户
质粒DNA电泳鉴定
1．目的学会常用的DNA琼脂糖凝胶电泳。2．原理DNA双螺旋分子骨架两侧带有含负电荷的磷酸根，在电场中会向正极方向移动。不同长度的DNA由于受到凝胶介质的阻力不同，表现为不同的迁移率而被分开。3．器材电泳仪，水平凝胶电泳槽和梳子及其制胶模块，250ml三角瓶，微波炉，台式离心机，旋涡混合器，凝胶成像
RNA电泳操作步骤
试剂: 琼脂糖(Agarose)、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制(0.1 M MOPS pH7; 5mM EDTA; 10mM NaAc) 1、称量20.9g的MOPS,置于1L烧杯中。 2. 加700mL DEPC水溶解
电泳技术RNA电泳操作步骤
试剂： 琼脂糖（Agarose）、甲醛、甲酰胺、MOPS、EDTA、DEPC水。 步骤 一 、5 x MOPS-EDTA Buffer的配制（0.1 M MOPS pH7； 5mM EDTA； 10mM NaAc） 1. 称量20.9g的MOPS，置于1L烧杯中。 2. 加700mL
RNA质量检测与鉴定
方法一、检测RNA溶液的吸光度280、320、230、260nm下的吸光度分别代表了核酸、背景（溶液浑浊度）、盐浓度和蛋白等有机物的值。一般的，我们只看OD260/OD280（Ratio，R）。1.82.0时，我们认为RNA中蛋白或者时其他有机物的污染是可以容忍的，不过要注意，当你用Tris作为缓冲
RNA－提取策略及RT－PCR技术
第一部分RNA 提取策略1、RNA降解的原因内源性RNAase是造成RNA降解的最重要原因，因为人体细胞自身就是几十分钟（20min？）mRNA被降解一轮，所以不管是组织还是细胞还是液体状样本在离开其中细胞的最佳生活状态后都应该尽快的被妥善的方法保存起来。外源性RNA酶也是一个需要注意的因素，最常见
稳定转染:从G418浓度确定到单克隆化鉴定3
5、方法5.关于稳转的方法，好像园子里很多研究者都用的是有限稀释法来作，但是我们实验室基本上都不用九十六孔做有限稀释来作单克隆的，一般的做法都是这样：1.3.5cm皿铺细胞，长到大概80％以上的时候作转染。2.转染后一天消化，传到一个大皿（1：6）或者两个大皿（1：12）。3.再过一天后加入带G41
PCR产物的电泳鉴定
一、准备工作1、实验器具与材料：（1）移液枪：10ul（2）吸头：20ul（3）吸头台：放置200ul和20ul的吸头一个（4）三角烧瓶：50ml一个（5）琼脂糖2、实验器具的处理与准备（1） 塑料制品：（包括吸头等）送至高压3次，试验前将枪头放入吸头台。（2）电泳板及电泳槽：用自来水冲洗干净备用3
PCR产物的电泳鉴定
一、准备工作1、实验器具与材料：（1）移液枪：10ul（2）吸头：20ul（3）吸头台：放置200ul和20ul的吸头一个（4）三角烧瓶：50ml一个（5）琼脂糖2、实验器具的处理与准备（1） 塑料制品：（包括吸头等）送至高压3次，试验前将枪头放入吸头台。（2）电泳板及电泳槽：用自来水冲洗干净备用3