叶绿体亚分级实验——叶绿体亚分级
实验材料叶绿体试剂、试剂盒裂解缓冲液仪器、耗材微量离心管小型离心机实验步骤1. 将含 1 mg 叶绿素的叶绿体悬液吸至一微量离心管中。2. 在小型离心机中 14000 r/min 离心 30 秒钟，弃去上清。3. 加 1 ml 裂解缓冲液，振荡，冰浴 5 分钟。裂解缓冲液：10 mmol/L HEPES-KOH，pH 8.04. 在小型离心机中 14000 r/min 离心 2 分钟，弃去上清（富含基质组分）。5. 用 1x SH 清洗膜成分，至少洗两次（富含类囊体组分）。保存液：20 mmol/L HEPES-KOH，pH 8.020 mmol/L 山梨醇125 mmol/L KCl含 30% (v/v) DMSO 或 30% 乙二醇展......阅读全文
叶绿体亚分级实验——叶绿体亚分级
实验材料叶绿体试剂、试剂盒裂解缓冲液仪器、耗材微量离心管小型离心机实验步骤1. 将含 1 mg 叶绿素的叶绿体悬液吸至一微量离心管中。2. 在小型离心机中 14000 r/min 离心 30 秒钟，弃去上清。3. 加 1 ml 裂解缓冲液，振荡，冰浴 5 分钟。裂解缓冲液：10 mmol/L HEP
叶绿体亚分级实验
叶绿体亚分级 实验材料 叶绿体 试剂、试剂盒 裂解缓冲液
叶绿体亚分级实验
实验材料 叶绿体 试剂、试剂盒 裂解缓冲液
叶绿体亚分级实验
实验材料 叶绿体试剂、试剂盒 裂解缓冲液仪器、耗材 微量离心管小型离心机实验步骤 1. 将含 1 mg 叶绿素的叶绿体悬液吸至一微量离心管中。2. 在小型离心机中 14000 r/min 离心 30 秒钟，弃去上清。3. 加 1 ml 裂解缓冲液，振荡，冰浴 5 分钟。裂解缓冲液：10 mmol/L
植物线粒体制备及其亚结构分级分离实验
实验材料黄化苗试剂、试剂盒匀浆缓冲液清洗缓冲液Percoll 梯度溶液仪器、耗材分光光度计实验步骤在选好植物材料和匀浆缓冲液后，接下来关键的因素包括匀浆方法、缓冲液的 pH、使用的缓冲液与植物组织之间的比例、研磨时间及温度等（见注释 5) 。3.1 匀浆根据植物组织的不同可以采取不同的匀浆方法，或者
植物线粒体制备及其亚结构分级分离实验
实验材料黄化苗 试剂、试剂盒匀浆缓冲液 清洗缓冲液
植物线粒体制备及其亚结构分级分离实验（一）
实验材料 黄化苗试剂、试剂盒 匀浆缓冲液清洗缓冲液Percoll 梯度溶液仪器、耗材 分光光度计实验步骤 在选好植物材料和匀浆缓冲液后，接下来关键的因素包括匀浆方法、缓冲液的 pH、使用的缓冲液与植物组织之间的比例、研磨时间及温度等（见注释 5) 。3.1 匀浆根据植物组织的不同可以采取不同的匀浆方
植物线粒体制备及其亚结构分级分离实验（二）
3.5 纯度鉴定可以通过各种细胞器标志性酶的活性来确定线粒体的污染程度。过氧化物酶体可以鉴定过氧化氢酶、羟基丙酮酸还原酶或者乙二醇氧化酶的活性；叶绿体可以用叶绿素含量，白色体可以用类胡萝卜素的含量或碱性焦磷酸酶的活性；乙二醛循环体可以用异柠檬酸裂解酶的活性；内质网可以用对抗霉素 A 不敏感的细胞
从豌豆组织分离叶绿体实验_叶绿体分离
实验材料叶子组织试剂、试剂盒PBF-Percoll 溶液山梨醇BSAHEPES-KOHEDTA仪器、耗材聚碳酸酯离心管实验步骤1. 制备 Percoll 梯度(1) 两个 50 ml 的聚碳酸酯离心管中分别加入 25 ml 50% 的 PBF-Percoll 溶液。50% PBF-Percoll0.
从豌豆组织分离叶绿体实验
叶绿体分离 实验材料 叶子组织 试剂、试剂盒 PBF-Percoll 溶液
从豌豆组织分离叶绿体实验
叶绿体分离 实验材料 叶子组织 试剂、试剂盒
高速冷冻离心机在核膜的亚分级分离中的应用
核被膜（nuclear envelope）是包被核内含物的双层膜结构，作为界膜，它把细胞核与细胞质分开，有利于稳定基因的结构，外核膜与胞质中的粗面内质网相邻，外表亦有核糖体附着，内核膜附着有一层纤维状蛋白网，该结构对内膜具有支撑作用。核间隙与粗面内质网腔相通，内含多种蛋白质和酶，核膜还控制着细胞核与
叶绿体DNA分离
设备：Hitachi CS-150GXL或CS-120GXL微量超速离心机，S100AT6 转头，5PA 密封管（如果用4PC管，可接比例减少各层液量）溶液配制：A液：0.35Msorbitol（山梨醇），50mM Tris—Hcl (PH8.0) 25mM EDTA—Na2B液：5％（w/w）So
叶绿体（chloroplast）分离
设备：Hitachi CF—7D2离心机，T5SS或T4SS或T7A转头50ml PP 离心管CP—MX ，CP—WX超速离心机，R28S转头，40ml PA管。（或其他品牌离心机，同类转头）溶液配置：A液：0.35M Sorbitol，（山梨醇），50mM Tris—HCL (PH8.0) 5mM
叶绿体是什么
叶绿体是质体的一种, 是高等植物和一些藻类所特有的能量转换器。叶绿体是含有绿色色素(主要为叶绿素 a 、b)的质体，为绿色植物进行光合作用的场所，存在于高等植物叶肉、幼茎的一些细胞内，藻类细胞中也含有。叶绿体的形状、数目和大小随不同植物和不同细胞而异。
什么是叶绿体
叶绿体叶绿体（chloroplast）植物绿色细胞中存在的有色质体。其内含有叶绿素及类胡萝卜素，是进行光合作用的场所。在高等植物中一般呈椭圆形，长轴4～10微米，短轴2～4微米。它被双层膜（称为外被）包围着，内部为层膜系统和基质（或称间质）所组成。在电镜下观察，每一层膜是由双层膜组成扁平的囊，中间是
从拟南芥菜中分离叶绿体实验
实验材料叶组织 试剂、试剂盒研磨悬浮缓冲液 仪器、耗材烧杯
从拟南芥菜中分离叶绿体实验
实验材料 叶组织 试剂、试剂盒 研磨悬浮缓冲液 仪器、耗材
从拟南芥菜中分离叶绿体实验
实验材料叶组织试剂、试剂盒研磨悬浮缓冲液仪器、耗材烧杯Polytron 匀浆器实验步骤1. 组织匀浆(1) 收集 10 g 叶组织，放进一 400 ml 的烧杯中。(2) 加入 200 ml 冰冷的研磨悬浮缓冲液。在 4℃ 的房间中，用 Polytron 匀浆器进行 6~7 个 3 秒钟脉冲匀浆叶组
从拟南芥菜中分离叶绿体实验
实验材料 叶组织试剂、试剂盒 研磨悬浮缓冲液仪器、耗材 烧杯Polytron 匀浆器实验步骤 1. 组织匀浆(1) 收集 10 g 叶组织，放进一 400 ml 的烧杯中。(2) 加入 200 ml 冰冷的研磨悬浮缓冲液。在 4℃ 的房间中，用 Polytron 匀浆器进行 6~7 个 3 秒钟脉冲
叶绿体分离的实验原理是什么
分离叶绿体色素的原理是类胡萝卜素中，胡萝卜素是不饱和的碳氢化合物，β—胡萝卜素水解可生成2分子维生素A，叶黄素是由胡萝卜素衍生的二元醇，不能与碱发生皂化反应，根据这一点，可以将叶绿素和类胡萝卜素分开。提取光合色素过程中，关键是速度。提取光合色素过程中，因为光合色素都是脂溶性的，因此用丙酮这种有机溶剂
线粒体的分级分离实验
实验材料 线粒体仪器、耗材 离心机实验步骤 1. 将装有上清液的高速离心管，从装有冰块的烧杯中取出，配平后，以17 000 rpm 离心20分钟，弃上清，留取沉淀物。2. 加入0.25 mol/L 蔗糖-0．003 mol/L 氯化钙液1 ml，用吸管吹打成悬液，以17 000 rpm 离心20
线粒体的分级分离实验
高速离心法实验材料线粒体 仪器、耗材离心机 实验步骤 1. 将装有上清
合肥研究院等获得形貌和结构可控的新型分级结构亚微米球
近日，中国科学院合肥物质科学研究院应用技术研究所新能源中心研究员胡林华课题组和华北电力大学教授戴松元团队合作，在太阳电池用纳米材料研究中获得新进展，获得了宏量合成结构和形貌可控的分级结构亚微米球方法。该进展在willy旗下Materials Views网站作为重要进展重点推荐。 针对现阶段分级
叶绿体基因的定义
叶绿体基因：cpDNA，环状，可自主复制，也受核基因控制。
机械法分离叶绿体
一、原理研磨叶片得到的匀浆，经过滤、离心可制备叶绿体。叶绿体的被膜比较脆弱，分离叶绿体应在等渗的缓冲溶液中，0~4℃温度下进行。叶绿体活力会随着离体时间延长而不断下降，因此，分离工作尽可能在短时间内完成。二、仪器与用具冰箱；离心机；扭力天平；显微镜；pH计；研钵；量筒；移液管；离心管；脱脂纱布等。分
叶绿体的相关介绍
叶绿体（Chloroplast）是质体的一种，是高等植物和一些藻类所特有的能量转换器。其双层膜结构使其与胞质分开，内有片层膜，含叶绿素，故名为叶绿体。 叶绿体是含有绿色色素（主要为叶绿素 a 、b）的质体，为绿色植物进行光合作用的场所，存在于高等植物叶肉、幼茎的一些细胞内，藻类细胞中也含有。叶
叶绿体的功能简介
光合作用是叶绿素吸收光能，使之转变为化学能，同时利用二氧化碳和水制造有机物并释放氧的过程。这一过程可用下列化学方程式表示:6CO2+6H2O（ 光照、酶、 叶绿体）→C6H12O6（CH2O）+6O2。其中包括很多复杂的步骤，一般分为光反应和暗反应两大阶段。 光反应：这是叶绿素等色素分子吸收，
叶绿体基因组
叶绿体是地球上绿色植物把光能转化为化学能的重要细胞器，叶绿体中进行的光合作用是严格地受到遗传控制的。早在20世纪初，人们就已知叶绿体的某些性状是呈非孟德尔式遗传的，但直到60年代才发现了叶绿体DNA(chloroplast DNA，ctDNA)。叶绿体基因组是一个裸露的环状双链DNA分子，其大小在1
叶绿体和光合色素
一、叶绿体 叶片是光合作用的主要器官，而叶绿体（chloroplast,chlor）是光合作用最重要的细胞器。（一）叶绿体的发育、形态及分布1.发育 高等植物的叶绿体由前质体(proplastid)发育而来，前质体是近乎无色的质体，它存在于茎端分生组织中。当茎端分生组织形成叶原基时，前质体的双层膜中