从患有利什曼病的狗的结肠中分离细胞并做流式细胞分析

实验概要犬感染寄生虫病时即使没有明显的病理变化,但对整个消化道的负担是显而易见的。本实验中,我们从患有利什曼病的犬肠道中分离固有层细胞,以进一步探讨肠道内的寄生虫与内脏感染发病是否密切相关。实验原理取狗的活检样本,用胶原酶II培养。向细胞悬液中加入细胞表面和细胞内标记物。这些标记物由以前对利什曼病肠系膜固有层细胞的研究所确定。标记物的确定依据是,在这些感染利什曼病的的组织,特别是持续感染的组织中,肠道感染不会引起病变。主要试剂1. 磷酸盐缓冲液(PBS -氯化钠; KH2PO4的Na2HPO4和蒸馏水)2. HBSS3. 不完整/完整的(小牛血清)RPMI培养基4. 肝素钠钠盐(HEPES,最低99.5%,Sigma -Aldrich公司)5. Ⅱ型胶原酶6. 皂素(Sigma公司,#S-7900)7. BSA(牛血清白蛋白)8. Azida(2mM)主要设备1. 剪刀2. 钳子3. 培养皿4. 1.5,2.0,15和50毫升管......阅读全文

悬浮细胞克隆的分离

经验交流(0)实验方法原理用加样枪或 Pasteur 吸管吸取集落,移至培养瓶或多孔板的培养孔中。仪器、耗材生长培养基                                                                  多孔板                      

悬浮细胞的分离方法

组织材料若来自血液、羊水、胸水或腹水的悬液材料,zui简单的方法是采用1000r/min的低速离心10分钟,若悬液量大,可适当延长离心时间,但速度不能太高,延时也不能太长,以避免挤压或机械损伤细胞,离心沉淀用无钙、镁PBS洗两次,用培养基洗一次后,调整适当细胞浓度后再分瓶培养,若选用悬液中某些细胞,

细胞分离(克隆)培养介绍

多孔塑料培养板单细胞克隆法: (1)消化:取健康待克隆细胞,吸出瓶内培养液,加消化液。 (2)低密度细胞悬液的制备:做克隆细胞时首先需先用消化法制备出分散成单个细胞悬液,然后稀释细胞,使之成为1~2细胞/毫升悬液,最适宜细胞密度为1~2细胞/ml培养液。 (3)接种:先

单核细胞分离技术

  (一)铁粉吸附法   1.材料及试剂   (1)铁粉或羰基铁粉(Atomergic chemetals)99%的纯度,颗粒小于60µm(Goodfellow Metals)。   (2)强磁铁(马蹄形)。   (3)一块小棒状磁铁(约1cm长)。   (4)毛细吸管等。   2.操作

单细胞分离技术介绍

单细胞测序日趋火爆的原因很大程度上得益于单细胞分离技术的不断完善。这一讲,我们将跟大家一起回顾传统的单细胞分离技术,并重点介绍单细胞分离技术的新宠微孔芯片技术及微流控技术。图1为目前常见单细胞分离设备。图1:目前常见单细胞分离设备传统单细胞分离技术相信许多实验人员,都见过下面我们要介绍的传统的单细胞

流式细胞术分离法分离T淋巴细胞和B淋巴细胞

一、试剂及配制1. RPMI-1640培养基:应选购不含酚红的,使用时加入5%的小牛血清。2. FITC-抗CD3单克隆抗体:FITC为异硫氰酸荧光素,CD3为T细胞表面特有的蛋白质分子(分化抗原)。二、操作方法1. 用聚蔗糖-泛影葡胺密度梯度离心法分离单个核细胞,用RPMI-1640培养基配成1×

细胞的离心分离基础和分离实例(六)

(三)用沉降速度法分离细胞:利用重力沉降(1g),或低速速率-区带密度梯度离心(<1000×g)也可以纯化各种细胞。下面举一些分离实例来说明这种方法。主要方法取自参考文献5,11,12,用沉降速度法分离细胞举例细胞样品被分离细胞类型梯度离心时间/RCF( × g)设备结果文献纯度产率活力白血球淋巴细

细胞的离心分离基础和分离实例(三)

4. 细胞离心分离过程中常常遇到的一些问题i. 细胞聚集:细胞聚集后在离心过程中的沉降行为与单个细胞完全不同,因此出现细胞聚集会影响分离纯度。避免的方法是添加一些防止粘结的成分如小牛血清白蛋白,脱氧核糖核酸酶(D Nase ,防止胶结)、蛋白酶(protease )、EDTA 等;(参考文献6)关于

细胞的离心分离基础和分离实例(七)

例7 鼠肝主质细胞的多倍体级浮选分离 l   设备及样品:同例(5)  l   转速1350rpm(~210g)  l   温度4℃  l   初始充样流速12ml/min,直至细胞充满离心室 l   分别用流速19,32,41(ml/min)收集I,II,III 细胞,收集量分别为100ml,15

细胞的离心分离基础和分离实例(二)

ⅰ. 差分离心:  在不存在密度梯度条件下分离细胞是这种方法的主要特点,差分离心可以是利用地球重力(1g),也可以是利用低速离心分离组织匀浆。在重力或离心力作用下一些比较大的细胞沉降速度较快,当它们已变成沉淀时,大部分比较小的的细胞由于沉降速度慢而仍留在上清液中。很明显在大的细胞变成沉淀时一部分接近

细胞的离心分离基础和分离实例(五)

例4:肝细胞的不连续密度梯度分离这种方法适用于从肝窦状细胞(Sinusoidal)中除去红细胞和主质细胞(parenchymal),离心结果是让红细胞沉淀,内皮细胞(Sinusoidal)浮上。实验需要的基本设备和溶剂:l  一台带甩平转头的低速、低温离心机;l  GBSS;l  在无NaCl的GB

细胞的离心分离基础和分离实例(八)

结果如下表:成份细胞主要类型细胞总量×106 活性%染色细胞比例%组成%PE1FLEK初始样品E.F13394898162758F1F148018878129/F2F68519453640/沉淀E108931997/8111 注:①E:endothelal Cell ②初始样品取12 月龄鼠肝,二步

细胞的离心分离基础和分离实例(四)

例2. 从人血中分离红细胞,单核(白)细胞,中性(白)细胞 i. 新鲜人血(3~5)ml 用抗凝剂处理。 ii.  15ml 离心管中先注入5ml 分离液Polymorphprep(Nycomed Pharma A/S 公司产品), 然后铺上用抗血凝剂处理过的人全血5ml 。 iii. 台式低速离心

细胞的离心分离基础和分离实例(一)

利用细胞的特性[尺寸、密度、电特性、表面(抗原)性质,光散射特性等等]可以用各种方法分离和纯化细胞。离心分离是利用不同尺寸和密度的细胞在离心场中沉降行为的不同,从组织匀浆或血液中分离纯化的技术。用离心技术分离和纯化细胞主要依赖的方法是差分离心、速率-区带密度梯度离心、等密度离心和利用特殊转头的细胞浮

单细胞分离用于单细胞基因扩增

 单细胞分离连接不同管径大小的毛细玻璃针,可分离捕获各种非贴壁状态的单细胞和微粒等,如细菌、酵母、藻类细胞、植物花粉、原生动物单细胞、悬浮细胞、血液细胞、免疫细胞、卵细胞、各种悬液中单细胞及特殊标记的单细胞等。  单细胞分离用于各种类型的细胞分离培养、纯化、检测;获得单克隆细胞;用于单细胞基因扩增,

从单个核细胞中分离T细胞

从单个核细胞中分离T细胞1)用玫瑰花结形成试验分离E+细胞1.制备AET-绵羊红细胞1)在刻度离心管中,用无菌的含5%小牛血清的Hanks液洗涤绵羊红细胞3次,每次离心500×g 10分钟。2)吸净上清液,测量红细胞比容。轻击试管分散红细胞,加入4倍红细胞比容量、新鲜制备的AET溶液,混匀。室温中反

细胞组分和细胞器——细胞器分离

Labeling Microtubules (Molecular Dynamics Inc.  )Microtubules are involved in many aspects of cell motion including propulsion, mitosis, growth, and o

分离和培养人角膜内皮细胞实验——分离人角膜内皮细胞

实验材料完整的人角膜试剂、试剂盒CMF-SalineG胰蛋白酶 EDTADMEM F-12 GASPDMEM F-12 2FB:DMEM:Ham’sF-12 1:1 含2%FBSCMF GASP仪器、耗材手术刀或单刃安全刀片弯虹膜剪 11cm(4-3 8 in.)Jeweler’s慑子 10cm(4

细胞分离纯化—Ficoll密度梯度离心法分离外周血单核细胞

实验方法原理常用来分离人外周血单个核细胞(PBMC)的分层液比重是 1.077±0.001 的 聚 蔗糖(Ficoll)-泛影葡胺(Urografin)(F/H)分层液。Ficoll是蔗糖的多聚体,呈中性,水性高,平均分子量为400000,当密度为1.2 g/ml仍未超出正常生理性渗透压,也不穿过生

血管内皮细胞的分离和培养_分离小鼠心脏内皮细胞

实验方法原理本方法是由 Marelli-Berg 等 [ 2000 ] 的方法改写的。实验材料小鼠心脏胶原蛋白酶A无关对照抗体大鼠抗小鼠内皮糖蛋白(endoglin)(CD105)抗体山羊抗大鼠IgG微珠试剂、试剂盒MCEC生长培养液非内皮细胞培养液HBSS PSHHSS FBCMF胰蛋白酶和EDT

单细胞分离和转移最新用法—单个细胞级别的分离和转移

在当代生物学与医学的研究中,对单个细胞的分离一直有着很高的需求。然而传统手段往往需要将大量细胞悬浮后进行分选接种。这类方法不仅费时费力,而且细胞活力也会受到影响。本篇报道中Guillaume使用FluidFM BOT建立了一种非常简易、快速的新手段。 单细胞分离有哪些优势?由于蛋白和基因的随机表达性

密度梯度分离法分离单个核细胞(MNCs)

试剂和材料:1. 合适的培养基或冷冻液;2. PBSA;3. Ficoll-Hypague;4. 巴氏吸管;5. 50ml离心管;实验方法:1. 将脐血样品用PBSA按1:1比例稀释;2. 将15ml Ficoll-Hypague吸入50ml离心管;3. 将30mlPBSA稀释的脐血样品缓慢地加到F

植物细胞的质壁分离与质壁分离复原

【原理】 生长的植物  细胞是一个渗透系统,活细胞的原生质及其表层具有分别透性,原生质层内部含有一个大液泡,具有一定的溶质势。当细胞与外界高渗溶液接触时,细胞内的水分外渗,原生质随着液泡一起收缩而发生质壁分离,其后,当与清水(或低渗溶液)接触,或当外面的溶质进入时,具有液泡的原生质体就又吸水

牙髓干细胞的分离培养——牙隨组织的分离

实验材料牙试剂、试剂盒灭菌无Ca2+和Mg2+的PBS(PBSA)MSC培养基消毒液(如聚维酮碘)仪器、耗材非灭菌使用高速牙科钻时的装备(如空气压缩机)培养皿精细镊(小号和大号)牙科碳化钻头牙挖器高速牙科钻实验步骤(a)用PBSA洗三遍,充分清洁牙齿表面。(b)用消毒液消毒,然后再用PBSA充分清洗

成纤维细胞的分离

成纤维细胞的分离实验方法原理下述的通用操作方案适用于小鼠、大鼠、仓鼠和鸡胚胎。选择大约一半足孕时间的胚胎最好,10~13天龄胚胎含有最大数量的未分化的间质细胞,成纤维细胞可从这些细胞衍生获得。图4.1显示了小鼠胚胎的取出和解剖,图4.2显示的是鸡胚胎的取出过程。                  

简述淋巴细胞的分离

  取肝素抗凝血1ml加Hanks 液1:1 稀释后,沿管壁徐徐滴流叠加盛有2ml淋巴细胞分离液的试管内(注意勿与分离液混合,然后2000r/min 水平离心20min,管内分为4 层,自上而下依次为血浆,单个核细胞,颗粒白细胞、红细胞(图2—1)。用毛细管伸至单个核细胞层中(位于细胞分离液与血浆的

淋巴细胞的分离技术

实验概要淋巴细胞的分离方法是免疫学研究的重要技术,稳定、高效地分离出高纯度且活性不受影响的T淋巴细胞是进行一系列免疫学研究的前提与基础,进而能够在体外对机体各种免疫细胞分别作鉴定、计数或功能测定。实验原理混合的单核细胞悬液在通过尼龙毛柱时,B细胞、浆细胞、单核细胞和一些辅助细胞被选择性粘附于尼龙毛上

成纤维细胞的分离

成纤维细胞的分离             实验方法原理 下述的通用操作方案适用于小鼠、大鼠、仓鼠和鸡胚胎。选择大约一半足孕时间的胚胎最好,10~13天龄

从脐静脉分离干细胞

试剂和材料:1. 培养基:完全LG-DMEM:含2mmol/L的左旋谷氨酰胺的低糖DMEM,添加10%热灭活胎牛血清,100U/ml青霉素和100μg/ml链霉素;2. PBSA;3. 胰蛋白酶,0.05%,含EDTA;4. 胶原酶A,0.1%用PBSA配制;5. 培养瓶;6. 导管;实验方法:1.

成纤维细胞的分离

实验方法原理 下述的通用操作方案适用于小鼠、大鼠、仓鼠和鸡胚胎。选择大约一半足孕时间的胚胎最好,10~13天龄胚胎含有最大数量的未分化的间质细胞,成纤维细胞可从这些细胞衍生获得。图4.1显示了小鼠胚胎的取出和解剖,图4.2显示的是鸡胚胎的取出过程。实验步骤 1) 胚胎的分离。适用哺乳动物(仓鼠、小鼠