从培养组织中分离单细胞的方法介绍
从培养组织中分离单细胞指将愈伤组织反复继代培养，再转移至液体培养基振荡培养。这是获得单细胞使用最广泛的一种方法。将表面消毒后的植物器官新鲜切片放置在培养基(固体)上，培养基含适当比例的生长素和细胞分裂素，以保证组织培养的顺利进行。外植体切口处形成愈伤组织，逐渐生长扩展到外植体组织的整个表面。将愈伤组织从外植体上分离，转移到成分相同的新鲜培养基上，促使愈伤组织生长。在琼脂培养基上反复继代培养，使愈伤组织结构疏松，为建立优质细胞悬浮系打下基础。液体培养基分装在经高压灭菌后的三角瓶或其他培养瓶中，转入未分化和疏松的愈伤组织块。然后，将三角瓶或培养瓶置于台式摇床或适宜设备上，持续振荡培养。振荡培养的培养基对愈伤组织块产生适度的压力，将愈伤组织分离成游离单细胞和小细胞团。此外，加强培养基和培养瓶内空气之问的气体交换，并使培养基中细胞和细胞团分布均匀。......阅读全文
从培养组织中分离单细胞的方法介绍
从培养组织中分离单细胞指将愈伤组织反复继代培养，再转移至液体培养基振荡培养。这是获得单细胞使用最广泛的一种方法。将表面消毒后的植物器官新鲜切片放置在培养基(固体)上，培养基含适当比例的生长素和细胞分裂素，以保证组织培养的顺利进行。外植体切口处形成愈伤组织，逐渐生长扩展到外植体组织的整个表面。将愈伤组
关于从培养组织中分离单细胞的介绍
从培养组织中分离单细胞指将愈伤组织反复继代培养，再转移至液体培养基振荡培养。这是获得单细胞使用最广泛的一种方法。将表面消毒后的植物器官新鲜切片放置在培养基(固体)上，培养基含适当比例的生长素和细胞分裂素，以保证组织培养的顺利进行。外植体切口处形成愈伤组织，逐渐生长扩展到外植体组织的整个表面。将愈
从植物器官分离单细胞的方法介绍
分离单细胞的最佳材料是叶组织，因为叶片中的细胞近似于一个同质细胞群体，较适合于特定和调控的大规模细胞培养。用机械法或酶解法可以从这种完整植物体器官(如叶细胞)分离出单细胞。1 机械法指通过机械磨碎、切割植物体从而获得游离的单细胞。用机械法可大规模地对薄壁组织细胞进行分离。2 酶解法指用专一的水解酶(
线粒体分离实验—从组织培养细胞中分离线粒体
实验材料细胞试剂、试剂盒RSBMS 缓冲液仪器、耗材Dounce 匀浆器实验步骤1. 用 11 ml 冰上预冷过的 RSB 重新悬浮细胞，转移到一个 15 ml 的 Dounce 匀浆器中RSB（使组织培养细胞膨胀的低渗缓冲液）10 mmol/L NaCl2.5 mol/L MgCl210 mmol
中间丝的分离方法实验——从组织中分离中间丝
实验材料牛舌试剂、试剂盒解聚缓冲液组装缓冲液匀浆缓冲液抽提缓冲液柱缓冲液PEM 缓冲液仪器、耗材离心机实验步骤一、从牛舌上皮分离角蛋白中间丝1. 从当地屠宰场拿到新鲜牛舌。一条舌头通常可以产出几十毫克纯化了的角蛋白中间丝。2. 用刀片切刮，把舌中的肌肉和黏膜分开。舌黏膜片（大约 1cmx1 cm )
从豌豆组织分离叶绿体实验_叶绿体分离
实验材料叶子组织试剂、试剂盒PBF-Percoll 溶液山梨醇BSAHEPES-KOHEDTA仪器、耗材聚碳酸酯离心管实验步骤1. 制备 Percoll 梯度(1) 两个 50 ml 的聚碳酸酯离心管中分别加入 25 ml 50% 的 PBF-Percoll 溶液。50% PBF-Percoll0.
从豌豆组织分离叶绿体实验
叶绿体分离实验材料叶子组织 试剂、试剂盒PBF-Percoll 溶液
从豌豆组织分离叶绿体实验
叶绿体分离 实验材料 叶子组织 试剂、试剂盒
从原代组织细胞和原培养容器分离细胞的技术
一、从原代组织中分离细胞 将组织块分离（散）成细胞悬液的方法有多种，最常用的是机械解离细胞法、酶学解离细胞法以及螯合剂解离细胞法。 从原代组织中获得单细胞悬液的一般方法是酶解聚。细胞暴露在酶中的时间要尽可能的短，以保持最大的活性。下列步骤可以解聚整个组织，获得较高产量的有活性细胞。
概述从植物器官分离单细胞的内容
分离单细胞的最佳材料是叶组织，因为叶片中的细胞近似于一个同质细胞群体，较适合于特定和调控的大规模细胞培养。用机械法或酶解法可以从这种完整植物体器官(如叶细胞)分离出单细胞。 1、机械法 指通过机械磨碎、切割植物体从而获得游离的单细胞。用机械法可大规模地对薄壁组织细胞进行分离。 2、酶解法
从组织和培养细胞中制备轻线粒体组分
试剂和器材： 1. 匀浆介质：0.25mol/L蔗糖溶液、1mmol/L乙二胺四乙酸、10mmol/L Hepes-NaOH，pH7.4；2. 按要求向溶液加入蛋白酶抑制剂；3. 磷酸盐缓冲液；4. 低速冷冻离心机，配有30—40ml离心管的吊桶式离心转子；5. 高速离心机，配有30—40ml离心管
线粒体分离实验—从组织中分离线粒体
实验材料肝脏试剂、试剂盒MS仪器、耗材匀浆器实验步骤1. 取出肝脏，注意不要弄破胆囊。放进一置于冰上的烧杯中，剪去任何结缔组织。称其质量后放回烧杯中。用锋利的剪刀、手术刀或剃须刀片将之切成 1~2 mmol/L 的薄片，用匀浆缓冲液（1x MS) 冲洗两次以去除大部分的血。转移至匀浆器中。加入足够的
单细胞培养培养方法介绍看护培养法
有些植物细胞，一旦分离出来，不仅不能分裂、增殖，还可能死亡。看护培养法是用一块愈伤组织来哺育单细胞，使其正常分裂和增殖的培养方法。用微量移液管或小勺，将来自悬浮培养物或愈伤组织的单细胞转移到漂浮的定量滤纸上，滤纸下是旺盛生长的愈伤组织。几天之后，在愈伤组织看护影响下，在一般培养基中沉寂的细胞开始分裂
单细胞培养培养方法介绍平板培养法
将制备好的单细胞悬浮液，按照一定的细胞密度，接种于适当厚度的薄层固体培养基上进行培养的方法，称为平板培养。等量的单细胞培养液与等量熔化(30～50℃)的琼脂培养基(0．6%～1%)混合，迅速铺板于培养皿中，琼脂冷却凝固后，细胞分布均匀地被固定在薄层(厚度大约1mm)培养基中。培养皿用石蜡膜封闭，在2
从组织分离粗制质膜组分的另一实验方法
从组织分离粗制质膜组分的另一实验方法 试剂、试剂盒 匀浆缓冲液
从组织分离粗制质膜组分的另一实验方法
Neville(1968) 所述的方法对分离鼠肝质膜的效果较好，但对分离其他组织的质膜不一定适用。这里，介绍一种从其他组织制备粗制质膜组分的方法。本实验来源于蛋白质纯化与鉴定实验指南，作者：朱厚础。试剂、试剂盒匀浆缓冲液仪器、耗材Dounce 氏玻璃匀浆器（15-ml)带 A 杵实验步骤设备Doun
从组织培养细胞中制备粗微体实验
实验材料细胞试剂、试剂盒环己酰亚胺匀浆缓冲液仪器、耗材培养皿实验步骤1. 培养基中加入环己酰亚胺（溶于蒸馏水，贮存液浓度 0.1 mol/L，-20℃ 保存。如果不溶，试着加热到 40℃ 以帮助溶解）（终浓度 10 μmol/L)，37℃ 保温 5~10 分钟。2. 培养皿从 37℃ 转移到冷室，立
从组织培养细胞中制备粗微体实验
实验材料 细胞 试剂、试剂盒 环己酰亚胺 匀浆缓冲液
从组织培养细胞中制备粗微体实验
实验材料细胞 试剂、试剂盒环己酰亚胺 匀浆缓冲液
Namocell单细胞分离仪应用介绍——藻类单细胞分离
Namocell单细胞分离仪最新应用：随着人们对环境研究的不断深入，研究人员逐渐将目光转向藻类的单细胞层面：有些需要对藻类进行单细胞级别的分析（如藻类单细胞测序等），也有需要对单细胞藻类进行培养。这样就面临一个棘手的问题，那就是如何获取藻类的单个细胞。通常实验室里的方式，是在显微镜下用毛细管吸取。这
单细胞培养培养方法介绍微室培养法
人工制造一个小室，将单细胞培养在小室中的少量培养基上，使其分裂、增殖形成细胞团的方法，称为微室培养法，亦称为双层盖玻片法。其操作是将携带1个细胞的1滴培养基置于无菌载玻片上，并用无菌矿物油包围培养基液滴。再分别在培养基液滴的两侧滴1滴矿物油，在每一矿物油滴上放一张盖玻片。然后，把第三张盖玻片放在培养
单细胞培养培养方法介绍细胞悬浮培养法
用液体培养基对保持良好的分散状态的单个细胞或小的细胞聚集体于摇床上进行培养的方法，称为细胞悬浮培养法(cell suspension culture)。依据培养目的不同，可分为浅层培养和深层培养。浅层培养是指使培养材料的一部分裸露于液体培养基表面，采用静止培养的方式，适用于各种器官和组织的培养。深层
中间丝的分离方法实验——从培养的细胞中分离Ⅰ~Ⅲ型中间丝
实验材料细胞试剂、试剂盒蛋白酶抑制剂裂解缓冲液解聚缓冲液组装缓冲液仪器、耗材匀浆器实验步骤1. 从培养皿或瓶中吸去培养基并用 5 ml 含蛋白酶抑制剂的冰冷的 PBS 洗细胞。2. 每 75cm2 瓶或培养皿用 1 ml 冰冷的裂解缓冲液 5 分钟裂解细胞。裂解缓冲液：在 PBS 中加入：1% Tr
特殊细胞培养实验_单细胞分离培养法
实验方法原理从理论上说各种培养细胞都可用以进行克隆培养。但实际上，初代培养细胞和有限细胞系（二倍体细胞）比较困难。无限细胞系、转化细胞系和肿瘤细胞等则比较容易。其原因是，当体内任何细胞被置于体外培养后，对培养环境都有一个适应过程。期间细胞对营养液具有同化作用，即从培养液中摄取营养的同时，也向培养液排
单细胞分离技术介绍
单细胞测序日趋火爆的原因很大程度上得益于单细胞分离技术的不断完善。这一讲，我们将跟大家一起回顾传统的单细胞分离技术，并重点介绍单细胞分离技术的新宠微孔芯片技术及微流控技术。图1为目前常见单细胞分离设备。图1：目前常见单细胞分离设备传统单细胞分离技术相信许多实验人员，都见过下面我们要介绍的传统的单细胞
从植物组织中分离高尔基体
实验材料新鲜组织试剂、试剂盒匀浆介质仪器、耗材研钵和杵离心机实验步骤1. 先用剪刀大致剪切叶片或茎杆，然后在少量的介质中用刀片切成碎片。2. 对于 1 g 新鲜组织，在 1 ml 介质中用研钵和杵捣碎使组织匀浆化。匀浆介质：50 mmol/L FiEPES10 mmol/L KCI1 mmol/L
关于组织培养技术的培养方法介绍
1、非试管微组织快繁 非试管微组织快繁技术是将外植体（一般要求带一叶一芽）放置在室内外普通沙子培养基上进行培养，利用植物腋芽自然倍增达到快速繁殖的目的。一般植物7～15天可以生长出根系。此技术投资低，操作环节少。 2、试管组织培养 试管组织培养是将外植体（即离体组织、器官或细胞）放置在组培
从细胞培养液中怎么分离蛋白质
把细胞离心下来后，用tca或(nh4)2so4沉淀下来就可以啦。再把沉淀溶解到适当的buffer里就可以做后面的实验。
从细胞培养液中怎么分离蛋白质
蛋白质分离纯化的一般程序可分为以下几个步骤：（一）材料的预处理及细胞破碎分离提纯某一种蛋白质时，首先要把蛋白质从组织或细胞中释放出来并保持原来的天然状态，不丧失活性。所以要采用适当的方法将组织和细胞破碎。常用的破碎组织细胞的方法有：1.机械破碎法这种方法是利用机械力的剪切作用，使细胞破碎。常用设备有
单细胞的分离方法有哪些
一、悬浮细胞的分离方法：利用离心方法对细胞进行分离。二、实体组织材料的细胞分离方法：对于实体组织材料，由于细胞间结合紧密，为了使组织中的细胞充分分散，形成细胞悬液，可采用机械分散法( 物理裂解)和消化分离法。