小麦黄化苗总DNA的提取

实验概要学习和掌握DNA的微量提取法。实验原理小麦黄化苗经液氮研磨,可使细胞壁破裂,加入去污剂(如SDS),可使核蛋白体解析,然后使蛋白和多糖杂质沉淀,DNA进入水相,再用酚、氯仿抽提纯化。本实验采用SDS法,其主要作用是破膜。SDS属阴离子去污剂,要溶解膜蛋白与脂肪,也可解聚核蛋白。SDS在溶液中带负电荷,能与带正电荷的蛋白质侧链结合成复合物,当加入钾盐时,能与SDS-蛋白质生成溶解度很小的沉淀一同去除。酚/氯仿/异戊醇的作用是去除核酸制品中的蛋白质,并有利于水相与有机相的分开,而且可以消除泡沫。异丙醇或乙醇的作用是沉淀DNA。 处理DNA样品时,可在65℃保温30min,较之37℃处理有以下优点:RNA酶的最适作用温度为65℃;DNA酶最适作用温度为37℃,当用65℃处理时,这些酶往往处于活性极低的状态而不会降解DNA;RNA中的某些总分会形成发卡结构,65℃处理更有利于这些结构的松散,使RNA酶的作用更完全。主......阅读全文

CTAB法提取植物总DNA

实验概要CTAB法是一种快速简便的提取植物总DNA的方法,通过实验掌握CTAB法从植物叶片提取DNA的原理和方法。 实验原理CTAB  (hexadecyltrimethylammonium  bromide,十六烷基三甲基溴化铵),是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特

小麦黄化苗总DNA的提取

实验概要学习和掌握DNA的微量提取法。实验原理小麦黄化苗经液氮研磨,可使细胞壁破裂,加入去污剂(如SDS),可使核蛋白体解析,然后使蛋白和多糖杂质沉淀,DNA进入水相,再用酚、氯仿抽提纯化。本实验采用SDS法,其主要作用是破膜。SDS属阴离子去污剂,要溶解膜蛋白与脂肪,也可解聚核蛋白。SDS在溶液中

总DNA质量检测及酶切

实验目的:了解掌握检测 DNA 质量的方法以及 DNA 定量的方法;了解影响 DNA 在琼脂糖凝胶中泳动速率的因素;训练 DNA 的琼脂糖凝胶电泳操作及 DNA 的限制性内切酶操作。实验原理:限制性内切酶能特异地结合于一段被称为限制性酶识别序列的DNA序列之内或其附近的特异位点上,并切割双链DNA。

土壤总DNA的几种提取方法

SDS 高盐法(方案1)   具体步骤: 称取1 g 土壤,放入研钵中,倒入适量的液氮,立即研磨;再倒入适量的液氮,研磨,重复3 次,使土壤颗粒研成粉末; 将13.5 ml 提取缓冲液(0.1 mol/L磷酸盐[pH = 8.0 ] ,0.1 mol/L EDTA [pH 8.0 ] ,0.1 mo

植物总DNA提取方法和过程

植物总DNA提取植物总 DNA 的提取有多种方法,转基因食品检测中不同用途的 DNA 提取应该采用各自适宜的方法进行。下面介绍用于新鲜或干燥的植物性食品检测的常见 DNA 提取方法。1、可用于 PCR 的粗提液微量制备1)原理与特点利用搅拌破碎食品组织,碱液破坏细胞壁然后再用缓冲液进行提取。此法主要

细菌总DNA的提取和鉴定

【目的和要求】1.学会CTAB法提取细菌总DNA。2.掌握DNA的琼脂糖凝胶电泳法。【实验原理】DNA在生物体内是与蛋白质形成复合物的形式存在的,因此提取出脱氧核糖核蛋白复合物后,必须将其中蛋白质去除。CTAB(溴代十六烷基三甲胺)是一种去污剂,它能与核酸形成复合物,在高盐溶液中可溶并且稳定存在,若

总DNA质量检测及酶切实验

实验目的是了解掌握检测DNA 质量的方法以及DNA定量的方法;了解影响DNA在琼脂糖凝胶中泳动速率的因素;训练DNA的琼脂糖凝胶电泳操作及DNA的限制性内切酶操作。来源:《遗传学实验教程》实验方法原理在pH值为8.0~8.3时,核酸分子碱基几乎不解离,磷酸全部解离,核酸分子带负电,在电泳时向正极移动

总DNA质量检测及酶切实验

酶切法             实验方法原理 在pH值为8.0~8.3时,核酸分子碱基几乎不解离,磷酸全部解离,核酸分子带负电,在电泳时向正极移动。采用适当浓度的凝胶介质作为电泳支持

总DNA质量检测及酶切实验

实验方法原理 在pH值为8.0~8.3时,核酸分子碱基几乎不解离,磷酸全部解离,核酸分子带负电,在电泳时向正极移动。采用适当浓度的凝胶介质作为电泳支持物,在分子筛的作用下,使分子大小和构象不同的核酸分子泳动率出现较大的差异,从而达到分离核酸片段检测其大小的目的。核酸分子中嵌入荧光染料(如EB)后,在

植物总DNA的快速少量抽提实验

实验方法原理 CTAB法:该方法简便、快速,DNA产量高(纯度稍次,适用于一般分子生物学操作)。 CTAB是一种非离子去污剂,植物材料在CTAB的处理下,结合65 °C水浴使细胞裂解、蛋白质变性、DNA被释放出来。CTAB与核酸形成复合物,此复合物在高盐(>0.7 mM)浓度下可溶,并稳

植物总DNA的快速少量抽提实验

CTAB法             实验方法原理 CTAB法:该方法简便、快速,DNA产量高(纯度稍次,适用于一般分子生物学操作)。 CTAB是一种非离子去污剂,植物材料在CTAB的

采用改进的CTAB法提取细菌总DNA

实验概要通过改进的CTAB法可快速简便的提取细菌总DNA,通过本实验可掌握CTAB法从细菌提取DNA的原理和方法。 实验原理CTAB  (hexadecyltrimethylammonium  bromide,十六烷基三甲基溴化铵),是一种阳离子去污剂,具有从低离子强度溶液中沉淀核酸与酸性多聚糖的特

植物总DNA抽提方法和优缺点

1、植物DNA的CTAB提取法:经典方法。效果较好,污染少。多用于核基因组提取。2、SDS提取法:较为简易,提取的为全基因组,但有蛋白污染可能。3、简易“一管法”提取方法:4、PCR研究的快速提取法:以上两者方法简单,快速,但污染多,不适合做酶切等操作。5、酚类、多糖类物质较多的植物DNA提取法:多

从总-RNA-中除去基因组-DNA-实验

从总 RNA 中除去基因组 DNA 实验             试剂、试剂盒 变性(甲醛)琼脂糖凝胶 琼脂糖 蒸馏

从总-RNA-中除去基因组-DNA-实验

试剂、试剂盒 变性(甲醛)琼脂糖凝胶琼脂糖蒸馏水甲醛蒸馏水乙醇 甲醛MOPS 缓冲液乙二胺四乙酸MOPS乙酸钠酚 氯仿(3:1) 溶液氯仿液体酚Tris-HCl电泳缓冲液仪器、耗材 离心机和转头离心管配胶板微波炉实验步骤 一、材料1. 缓冲液、溶液和试剂变性(甲醛)琼脂糖凝胶(配制过程见第 18步)

植物基因组总DNA的分离———SDS法

实验方法原理SDS(十二烷基磺酸钠)是一种强去污剂,可使细胞膜及核膜破裂,因此被用来分离DNA。该分离过程的第一步是用热的去污剂(SDS)进行抽提,然后将抽提物置于0℃并加入高摩尔浓度的乙酸钾,离心去除不溶物,以去除蛋白和多糖类杂质。实验材料植物新鲜叶片试剂、试剂盒液氮提取缓冲液(用前加入)20%S

从总-RNA-中除去基因组-DNA-实验

为了进行 FDD 基因表达的分析,以及使用任何其他基于 RNA 的基因表达技术,在反转录合成单链 cDNA 和后续的 PCR 操作之前,必须除掉污染的基因组 DNA。本实验来源于 PCR 实验指南(第二版),作者:种康,瞿礼嘉。试剂、试剂盒变性(甲醛)琼脂糖凝胶琼脂糖蒸馏水甲醛蒸馏水乙醇甲醛MOPS

土壤微生物总DNA提取及纯化

实验概要从土壤微生物中提取总DNA并纯化,高质量的DNA可用于后续文库构建。主要试剂TENP缓冲液(50 mmol/L Tris, 20 mmol/L EDTA, 100 mmol/L NaCl, 1% PVP, pH 10.0)PBS缓冲液(137 mmol/L NaCl, 2.7 mmol/L

植物基因组总DNA的分离———SDS法

实验方法原理 SDS(十二烷基磺酸钠)是一种强去污剂,可使细胞膜及核膜破裂,因此被用来分离DNA。该分离过程的第一步是用热的去污剂(SDS)进行抽提,然后将抽提物置于0℃并加入高摩尔浓度的乙酸钾,离心去除不溶物,以去除蛋白和多糖类杂质。实验材料 植物新鲜叶片试剂、试剂盒 液氮提取缓冲液(用前加入)2

水稻总DNA的快速少量抽提CTAB法

DNA分子是分子生物学研究的基本材料,依不同的实验目的可采取不同的抽提方法获取数量和质量不等的 DNA 。 实验目的:了解植物  DNA 抽提的主要方法,掌握 CTAB 法快速抽提水稻 DNA 。 实验材料及试剂: 水稻  叶片,1.5 × CTAB ,氯仿 / 异戊醇 (24:1) ,

植物总DNA的快速少量抽提实验——CTAB法

DNA分子是分子生物学研究的基本材料,依不同的实验目的可采取不同的抽提方法获取数量和质量不等的DNA。实验目的是了解植物DNA抽提的主要方法,掌握CTAB法快速抽提水稻DNA。实验方法原理CTAB法:该方法简便、快速,DNA产量高(纯度稍次,适用于一般分子生物学操作)。 CTAB是一种非离子去污剂,

植物基因组DNA及总RNA提取技术2

(二)植物总RNA提取 (1)65°C水浴中预热15 mL CTAB提取液。 (2)液氮中研磨2~3 g新鲜或-70°C冷冻的材料。 (3)转移样品至有CTAB提取液的离心管中,立即激烈涡旋30s,短时放回 65°C水浴中(4~5 min)。 (4)加入等体积的氯仿/异戊醇并涡旋混合,10000 r

植物基因组DNA及总RNA提取技术1

幼嫩组织的细胞处于旺盛的分裂阶段,核较大而胞质较少,核酸浓度高,且内含物少、次生代谢产物少,蛋白质及多糖类物质相对较少,在SDS或 CTAB物质存在时,经机械研磨,使细胞破裂并释放出内含物,提取的DNA、RNA的产量高,纯度好。 提取DNA所用的提取液、吸头、离心管等需要高压灭菌以灭活DNase。R

海洋不同生境总基因组DNA的提取

实验概要本实验采用NaI/玻璃粉方法、溶菌酶与蛋白酶K/离心吸附柱方法以及试剂盒PowerSoil  DNA Isolation Kit (MO BIO  Laboratories,Inc.)三种方法对海洋岸边土壤、海水以及沉积物三种样品进行DNA抽提。为比较不同方法的抽提效果,采用分光光度计对DN

植物总DNA提取过程中应该注意哪些问题

取样的材料最要是新鲜的,而且取嫩叶,如果取老叶的话,含有较多的多糖和酚类物质等杂质,这样加大了纯化的难度。磨样时最好是加液氮,磨样速度要快。一般用酚和氯仿抽提两次,吸取上清时,一定要小心,不要把白色物质吸入。抽提时不要有太力振动,操作也要仔细,尽量避免DNA断裂。

土壤微生物总DNA的提取方法比较

实验概要通过对比不同DNA提取及纯化方法,选择和优化适合于土壤样品不同分子量DNA提取及纯化的技术路线。实验原理土壤是微生物最大的栖息地,20世纪80年代,微生物学家采用免培养(culture-in-dependent)方法,即直接从土壤中提取微生物总DNA的技术,使得在基因水平研究这些未培养微生物

从不同动物组织中提取总DNA的方法及步骤(二)

3. 从培养的动物细胞中抽提总DNAa.收集最多不超过500万的细胞,离心沉淀后重悬于200微升PBS中。PBS需自备。如果使用冻存的细胞沉淀,先把细胞沉淀解冻,并轻轻弹散,然后再加入PBS。对于基因组DNA含量较高的细胞,例如Hela细胞,应使用较少的细胞,例如100-200万Hela细胞。b.清

从不同动物组织中提取总DNA的方法及步骤(一)

1. 从动物组织中提取总DNAa.取不超过25mg的组织(脾不超过10mg),剪切成尽可能小的碎片,加入180微升样品裂解液A。请勿使用过多的样品,过多的样品会导致抽提效果下降。较小的组织碎片会使裂解速度加快,裂解效果提高。新鲜或冻存的组织均可,但固定过的组织请参考后续的其它步骤进行。b.加入20微

总磷总氮的标准限值

标准限值我国地表水环境质量标准(GB 3838-2002)规定总磷总氮允许值如下(单位mg/L):

水中总氮总磷的测定

水质监测—水中总氮总磷的测定一、意义目前,封闭性水域的富营养化问题已相当严重,引起人们的普遍重视。水中的总氮、总磷的含量在一定程度上能反映出水环境富营养化的情况,因此总氮总磷含量的测定已成为水研究中必不可少的内容。过硫酸盐氧化法可同时测定水中的总氮总磷,方法简便快速,效率高,已成为常规的测定方法。二