DNA亲和介质的制备实验(二)

寡核苷酸的连接1) 取 10ul 10X 接头-激酶缓冲液加入 65ul 水中,将 DNA 震荡溶解于此溶液。2) 加 20ul 20 mmol/L ATP(pH7.0) 及 5ulT4 DNA 连接酶(30Weiss 单位),得最终反应体积为 100ul。3) 在室温下孵育≥2 h。若 AP-1 寡核苷酸的连接反应不进行,可试着将温度升至 30℃。注:根据所用寒核苷酸的不同,连接反应的最适温度可在 4℃ 至 30℃ 之间变化。短的寡核苷酸(≤十五聚体)在较低温度下(4~15℃) 连接较好,而具有中等程度回文结构的寡核苷酸有自身退火的倾向,最好在较髙的温度下(15—30℃) 进行连接。4)用琼脂糖凝胶电泳监视连接反应的进程 (每道用 0.5ul 连接反应物,连接好的寡核苷酸平均长度一般至少为十一聚体。注:①5'-磷酸化的寡核苷酸开始时常常不能连接。因此,如果连接反应不发生,DNA 可用 1:1 酚/氯仿抽提一次,再用......阅读全文

DNA-亲和介质的制备实验(二)

寡核苷酸的连接1) 取 10ul 10X 接头-激酶缓冲液加入 65ul 水中,将 DNA 震荡溶解于此溶液。2) 加 20ul 20 mmol/L ATP(pH7.0) 及 5ulT4 DNA 连接酶(30Weiss 单位),得最终反应体积为 100ul。3) 在室温下孵育≥2 h。若 AP-1

DNA-亲和介质的制备实验

DNA 亲和介质的制备实验             试剂、试剂盒 ATP [y-32P]ATP T4多核苷酸激酶

DNA-亲和介质的制备实验

试剂、试剂盒ATP[y-32P]ATPT4多核苷酸激酶乙酸铵乙醇酚 氯仿氯仿 异戊醇NaOAcT4 DNA连接酶酚异丙醇重蒸水Sepharose CL-2B溴化氰NN-二甲基甲酰胺NaOH磷酸钾KClCNBr-活化的Sepharose*.4BHClT4 多核苷酸激酶缓冲液TE接头-激酶缓冲液乙醇胺-

DNA-亲和介质的制备实验(一)

试剂、试剂盒 ATP[y-32P]ATPT4多核苷酸激酶乙酸铵乙醇酚 氯仿氯仿 异戊醇NaOAcT4 DNA连接酶酚异丙醇重蒸水Sepharose CL-2B溴化氰NN-二甲基甲酰胺NaOH磷酸钾KClCNBr-活化的Sepharose*.4BHClT4 多核苷酸激酶缓冲液TE接头-激酶

序列特异性DNA结合蛋白亲和层析纯化实验DNA亲和介质制备

实验材料两种带有结合位点的合成寡核苷酸各440μg试剂、试剂盒TE缓冲液 pH 7.810×T4噬菌体多核苷酸激酶缓冲液20 mmol L ATP (钠盐) pH 7.0150 m Ci mL [γ-32P] ATP (6000 Ci mmol)10 U μL T4噬菌体多核苷酸激酶(New Eng

亲和柱的制备实验

配基固相化技术             实验方法原理 溴化氰活化的琼脂糖凝胶用于配体固相化是实验室最常用的固相化技术之一。其原理是溴化氰活化的介质与配体主要的氮基反应形成异脲键。但是

亲和柱的制备实验

实验方法原理 溴化氰活化的琼脂糖凝胶用于配体固相化是实验室最常用的固相化技术之一。其原理是溴化氰活化的介质与配体主要的氮基反应形成异脲键。但是这样偶联的亲和柱多次重复使用时,将会有少量配体脱落,所以反复使用的亲和柱应考虑选择其他活化的介质。异脲键的形成伴有荷电基团的增加,将会影响离子交换作用。为了克

蛋白质与免疫亲和介质结合实验

仪器、耗材 SDS-PAGE 电泳装置 聚丙烯酰胺小胶实验步骤 材料与设备SDS-PAGE 电泳装置聚丙烯酰胺小胶(10%)操作程序1) 将溶解、稀释的 AMS 沉淀物和洗过的免疫亲和介质混合后,于 0、5、15 和 30 min 各取样 100-ul。2) 立即离心样品,留上清,供 SDS-PAG

蛋白质与免疫亲和介质结合实验

材料与设备SDS-PAGE 电泳装置聚丙烯酰胺小胶(10%)操作程序1) 将溶解、稀释的 AMS 沉淀物和洗过的免疫亲和介质混合后,于 0、5、15 和 30 min 各取样 100-ul。2) 立即离心样品,留上清,供 SDS-PAGE 电泳分析,测

磷酸交联AFFIGEL-10-亲和介质实验

实验方法原理 本方案描述了将磷酸肽链或非磷酸肽链交联到 Affi-Gel 10 亲和介质上以利用亲和柱层析法纯化抗体的方法。这里所详述的无水交联法是最有效的肽链交联方法。按此法的步骤最终能产生 3 ml 柱床体积的亲和树脂;每毫升Affi-Gel 10上能交联 3 μl 肽。实验材料 寡聚肽

蛋白质与免疫亲和介质结合实验

仪器、耗材SDS-PAGE 电泳装置 聚丙烯酰胺小胶实验步骤材料与设备SDS-PAGE 电泳装置聚丙烯酰胺小胶(10%)操作程序1) 将溶解、稀释的 AMS 沉淀物和洗过的免疫亲和介质混合后,于 0、5、15 和 30 min 各取样 100-ul。2) 立即离心样品,留上清,供 SDS-PAGE

磷酸交联AFFIGEL-10-亲和介质实验——肽链交联

本实验描述了将磷酸肽链/非磷酸肽链和磷酸酪氨酸交联到 Affi-Gel 10 亲和介质上以利用亲和柱层析法纯化抗体的方法。实验方法原理本方案描述了将磷酸肽链或非磷酸肽链交联到 Affi-Gel 10 亲和介质上以利用亲和柱层析法纯化抗体的方法。这里所详述的无水交联法是最有效的肽链交联方法。按此法的步

亲和色谱的介质应具备的条件

① 具有多孔网络结构 ② 非特异吸附小,基质化学性质应是惰性,表面电荷尽 可能低; ③ 理化性质稳定,不因共价偶联反应的条件及吸附条件 的变化而发生变化; ④ 基质必须能够活化或功能

亲和色谱的介质应具备的条件

① 具有多孔网络结构 ② 非特异吸附小,基质化学性质应是惰性,表面电荷尽 可能低; ③ 理化性质稳定,不因共价偶联反应的条件及吸附条件 的变化而发生变化; ④ 基质必须能够活化或功能

序列特异性DNA结合蛋白亲和层析纯化实验_DNA亲和层析法

实验材料制备性的DNA亲和层析树脂试剂、试剂盒缓冲液Z或其他柱缓冲液(如缓冲液Ze或TM)配制时含不同的KCl浓度(从缓冲液 Z 0.1 mol L KCl 至缓冲液 Z 1 mol L KCl对缓冲液Z 0. 1 mol L KCl透析的部分纯化的蛋白质组分非特异性的竞争DNA柱再生缓冲液柱储存缓

亲和层析实验:常规方法(二)

二、配基的选择选择合适的配基,需要对配基和靶分子之间的天然相互作用有一定的认知及理解。靶分子与配基的相互作用必须是特异性结合,并且在不同的结合和洗脱条件下均应该稳定。此外,制订亲和纯化的方案时,需着重考虑能否购买到商品化配基,还是需要从头研制配基和介质。后者的成功在很大程度上取决于对蛋白质结构和相互

质粒DNA的小量制备实验

实验方法原理 碱裂解法是最常用的小量制备质粒DNA的方法。实验材料 培养基试剂、试剂盒 EDTASDS乙醇VTE仪器、耗材 平板实验步骤 1.  接种一个单菌落于5 ml无菌LB培养液中,在37°C培养至饱和状态(过夜)。2.  取1.5 ml培养液以最大转速离心20 S。弃上清。3.  沉淀用10

质粒DNA的大量制备实验

碱裂解法 氯化铯/溴化乙锭平衡离心法 层析法             实验方法原理 大量碱裂解方法不仅相当快捷可靠,而且可获得相当纯净的粗制DNA。煮沸法的大量制

质粒DNA的小量制备实验——

实验采用国产的质粒小量抽提试剂盒。它是一种新型的离子交换柱,在特定的条件下,使质粒能在离心过柱的瞬间,结合到质粒纯化柱上,在一定条件下又能将质粒充分洗脱,从而实现质粒的快速纯化。实验材料DNA试剂、试剂盒LB培养基卵清溶菌酶异丙醇TE仪器、耗材离心机漩涡混合器水浴锅实验步骤一、实验步骤1.  接种一

质粒DNA的小量制备实验

实验方法原理 当菌体在NaOH和 SDS溶液中裂解时,蛋白质与DNA发生变性,当加入中和液后,质粒DNA分子能够迅速复性,呈溶解状态,离心时留在上清中;蛋白质与染色体DNA不变性而呈絮状,离心时可沉淀下来。碱裂解法是最常用的小量制备质粒DNA的方法。实验材料 细菌克隆试剂、试剂盒 LB培养基抗生素葡

质粒DNA的大量制备实验

实验方法原理 大量碱裂解方法不仅相当快捷可靠,而且可获得相当纯净的粗制DNA。煮沸法的大量制备也简单易行,但得到的DNA比较粗制。高纯度的质粒DNA可通过氯化铯/溴化乙锭平衡离心法或层析法进一步纯化粗制DNA得到。实验材料 培养基菌株试剂、试剂盒 EDTASDS乙醇乙酸钾异丙醇仪器、耗材 离心管实验

质粒DNA的小量制备实验

碱裂解小量制备法 煮沸法             实验材料 DNA 试剂、试剂盒

质粒DNA大量制备实验

实验方法原理 这一方案科能是最常用的质粒制备方法,该法不仅相当决捷可靠,而且可获得相当纯净的粗制DNA。实验材料 大肠杆菌试剂、试剂盒 葡萄糖TrisEDTATENaOHSDS异丙醇乙醇乙酸甲仪器、耗材 离心机漩涡混合器水浴锅实验步骤 1.  往2 ml 烧瓶中加入500 ml ,含有适当抗生素的L

质粒DNA大量制备实验

碱裂解法 平衡离心法             实验方法原理 这一方案科能是最常用的质粒制备方法,该法不仅相当决捷可靠,而且可获得相当纯净的粗制DNA。

亲和色谱的介质应具备的条件介绍

① 具有多孔网络结构 ;② 非特异吸附小,基质化学性质应是惰性,表面电荷尽 可能低; ③ 理化性质稳定,不因共价偶联反应的条件及吸附条件 的变化而发生变化; ④ 基质必须能够活化或功能

哺乳动物中制备基因组DNA实验——制备DNA

在DNA提取过程中应尽量避免使DNA断裂和降解的各种因素,以保证DNA的完整性,为后续的实验打下基础。一般真核细胞基因组DNA有107-9bp,可以从新鲜组织、培养细胞或低温保存的组织细胞中提取,常是采用在EDTA以及SDS等试剂存在下用蛋白酶K消化细胞,随后用酚抽提而实现的。实验材料动物组织试剂、

亲和柱的制备实验_配基固相化技术

实验方法原理溴化氰活化的琼脂糖凝胶用于配体固相化是实验室最常用的固相化技术之一。其原理是溴化氰活化的介质与配体主要的氮基反应形成异脲键。但是这样偶联的亲和柱多次重复使用时,将会有少量配体脱落,所以反复使用的亲和柱应考虑选择其他活化的介质。异脲键的形成伴有荷电基团的增加,将会影响离子交换作用。为了克服

金属螯合亲和层析实验(二)

实验材料蛋白质试剂、试剂盒GuMCAC-EDTA缓冲液盐酸胍仪器、耗材转子离心机实验步骤1.  制备表达带组氨酸尾的融合蛋白的大肠杆菌菌体沉淀。2.  准备NTA介质层析柱,但柱子最后以GuMCAC-0缓冲液洗涤.3.  在冰浴中冻融菌体沉淀。加5 ml GuMCAC-0缓冲液,用吸管抽吸重悬,超声

用于-PCR-的模板-DNA-制备实验

酚-氯仿法提取石蜡组织中 DNA 改进的石蜡切片 DNA 提取方法 直接法(DNA 免提法) 冰冻片 含血标本 胸腹水或尿液            

用于-PCR-的模板-DNA-制备实验

实验方法原理 实验步骤 1. 10 mm 厚石蜡切片 10~15 张,置入消毒后的 1.5 ml Eppendorf 管中。2. 脱蜡 二甲苯 1200 μl,9000 r/min,8 min×3。3. 脱水无水乙醇 1200 μl,9000 r/min,5 min×3。4. 打开 Eppendor